- •Государственная фармакопея республики беларусь первое издание
- •Республики Беларусь
- •1. Общие сведения
- •1.1. Общие положения
- •1.2. Другие положения, распространяющиеся на общие и частные фармакопейные статьи
- •Условия хранения лекарственного средства
- •Пределы, указываемые на упаковке
- •1.5. Сокращения и обозначения
- •1.6. Единицы международной системы (си), используемые в фармакопейных статьях, и их соответствие другим единицам
- •2. Методы анализа
- •2.1. Оборудование
- •2.1.1. Каплемер
- •2.1.2. Сравнительная таблица пористости стеклянных фильтров
- •Пористость фильтра (ф.Евр.) (1)
- •Максимальный диаметр пор в микрометрах
- •2.1.3. Лампы с ультрафиолетовым излучением для аналитических целей
- •2.1.4. Сита
- •2.2. Физические и физико-химические методы
- •2.2.1. Определение прозрачности и степени мутности жидкостей
- •2.2.2. Определение степени окрашивания жидкостей
- •2.2.3. Потенциометрическое определение рН
- •2.2.4. Зависимость между реакцией раствора, приблизительным значением рН и цветом индикаторов
- •Изменение цвета
- •2.2.5. Относительная плотность
- •2.2.6. Показатель преломления (индекс рефракции)
- •2.2.7. Оптическое вращение
- •2.2.8. Вязкость
- •1/Прив 1
- •2.2.9. Метод капиллярной вискозиметрии
- •2.2.10. Метод ротационной вискозиметрии
- •2.2.11. Температурные пределы перегонки
- •2.2.14. Температура плавления - капиллярный метод
- •2.2.17. Температура каплепадения
- •2.2.18. Температура затвердевания
- •2.2.21. Флуориметрия
- •2.2.22. Атомно-эмиссионная спектрометрия
- •2.2.23. Атомно-абсорбционная спектрометрия
- •2.2.24. Абсорбционная спектрофотометрия в инфракрасной
- •2.2.25. Абсорбционная спектрофотометрия в ультрафиолетовой видимой областях
- •2. Многокомпонентный спектрофотометрический анализ.
- •2.2.26. Бумажная хроматография
- •2.2.27. Тонкослойная хроматография
- •2.2.28. Газовая хроматография
- •2.2.29. Жидкостная хроматография
- •2.2.30. Эксклюзионная хроматография
- •2.2.31. Электрофорез
- •2.2.32. Потеря в массе при высушивании
- •2.2.33. Спектрометрия ядерного магнитного резонанса
- •2.2.34. Термогравиметрия
- •2.2.35. Осмоляльность
- •2.2.36. Потенциометрическое определение концентрации ионов с использованием ионселективных электродов
- •2.2.37. Рентгенофлуоресцентная спектрометрия
- •2.2.38. Удельная электропроводность
- •2.2.39. Молекулярно-массовое распределение декстранов
- •2.2.40. Спектрофотометрия ближнего ик-диапазона
- •2.2.41. Круговой дихроизм
- •2.2.42. Плотность твердых тел
- •2.2.43. Масс-спектрометрия
- •2.2.44. Определение содержания общего органического углерода в воде для фармацевтического применения
- •2.2.45. Сверхкритическая флюидная хроматография
- •2.2.46. Хроматографические методы разделения
- •2.2.47. Капиллярный электрофорез
- •2.2.48. Рамановская спектрометрия (# спектрометрия комбинационного рассеяния)
- •2.2.54. Изоэлектрическое фокусирование
- •2.3.1. Реакции подлинности (идентификации) на ионы и функциональные группы
- •2.3.2. Идентификация жирных масел методом тонкослойной хроматографии
- •2.3.3. Идентификация фенотиазинов методом тонкослойной хроматографии
- •2.3.4. Определение запаха
- •2.4. Испытания на предельное содержание примесей
- •2.4.1. Аммония соли
- •2.4.2. Мышьяк
- •2.4.3. Кальций
- •2.4.6. Магний
- •2.4.7. Магний и щелочноземельные металлы
- •2.4.8. Тяжелые металлы
- •2.4.15. Никель в полиолах
- •2.4.1.6. Общая зола
- •2.4.21. Посторонние масла в жирных маслах методом тонкослойной хроматографии
- •2.4.22. Посторонние жирные кислоты в маслах методом газовой хроматографии
- •2.4.23. Стерины в жирных маслах
- •2.4.24. Идентификация остаточных растворителей и их количественное определение
- •2.4.25. Остаточные количества этиленоксида и диоксана
- •2.4.27. Никель в гидрогенизированных растительных маслах
- •2.5. Методы количественного определения 2.5.1. Кислотное число
- •2.5.3. Гидроксильное число
- •2.5.4. Йодное число
- •2.5.5. Перекисное (пероксидное) число
- •2.5.6. Число омыления
- •2.5.7. Неомыляемые вещества
- •2.5.8. Определение аминного азота в соединениях, которые содержат первичную ароматическую аминогруппу
- •2.5.9. Определение азота после минерализации серной кислотой
- •2.5.10. Метод сжигания в колбе с кислородом
- •2.5.11. Комплексометрическое титрование
- •2.5.12. Вода: полумикрометод (#Метод к.Фишера)
- •2.5.13. Алюминий в адсорбированных вакцинах
- •2.5.14. Кальций в адсорбированных вакцинах
- •2.5.20. Гексозамины в полисахаридных вакцинах
- •2.5.21. Метилпентозы в полисахаридных вакцинах
- •2.5.24. Диоксид углерода в газах
- •2.5.25. Оксид углерода в газах
- •2.5.26. Оксид азота и диоксид азота в газах
- •2.5.27. Кислород в газах
- •2.5.30. Окисляющие вещества
- •2.5.33. Общий белок
- •2.5.34. Уксусная кислота в синтетических пептидах
- •2.6. Биологические испытания
- •2.6.1. Стерильность
- •2.6.2. Микобактерии
- •2.6.3. Испытания на посторонние вирусы с использованием куриных эмбрионов
- •2.6.4. Испытание на вирусы лейкоза
- •2.6.5. Испытание на посторонние вирусы с использованием клеточных культур
- •2.6.6. Испытание на посторонние агенты с использованием цыплят.
- •2.6.7. Микоплазмы
- •2.6.8 Пирогенность
- •2.6.9. Аномальная токсичность
- •2.6.10. Гистамин
- •2.6.11. Депрессорные вещества
- •2.6.12. Микробиологические испытания нестерильной продукции (суммарное количество жизнеспособных аэробов)
- •2.6.13. Микробилогические испытания нестерильной продукции (испытания на наличие специфических микроорганизмов)
- •0,9 % Раствор натрия хлорида
- •1 % Раствор фенолового красного
- •0,5 % Раствор малахитового зеленого
- •2.6.14. Бактериальные эндотоксины
- •1. Предварительные испытания
- •2. Предельное испытание (метод а) (I) Методика
- •2. Полуколичественное испытание (метод в)
- •1. Турбидиметрический принцип (методы с и f)
- •2.6.15. Активатор прекалликреина
- •2.6.16. Испытания на посторонние агенты в вирусных вакцинах для медицинского применения
- •2.6.17. Испытание на антикомплементарную активность иммуноглобулина
- •2.6.18. Испытание живых вирусных вакцин на нейровирулентность
- •2.6.19. Испытание пероральной вакцины полиомиелита на нейровирулентность
- •5.1. Предотвращение загрязнения
- •5.4 Детектирование
- •7.1 Валидация системы для количественного определения методом
- •7.2. Контроль качества реагентов.
- •7.3. Контроль хода испытания.
- •7.4. Внешняя оценка качества
- •2.6.22. Активированные факторы свертывания крови
- •2.7 Биологические методы количественного определения
- •2.7.1. Иммунохимические методы
- •2.7.2. Количественное определение антибиотиков микробиологическим методом
- •2.7.3. Количественное определение кортикотропина
- •2.7.4. Количественное определение фактора свертывания крови VIII
- •2.7.5. Количественное определение гепарина
- •2.7.6. Количественное определение вакцины дифтерии (адсорбированной)
- •2.7.7. Количественное определение вакцины коклюша
- •2.7.8. Количественное определение вакцины столбняка (адсорбированной)
- •2.7.9. Определение функционального состояния Fc-фрагмента иммуноглобулина
- •2.7.10. Количественное определение фактора свертывания крови человека VII
- •2.7.11. Количественное определение фактора свертывания крови человека IX
- •2.7.12. Количественное определение гепарина в концентратах
- •2.7.13. Количественное определение человеческого анти-d-иммуноглобулина
- •2.7.14. Количественное определение антигенной (иммуногенной) активности вакцины гепатита а
- •2.7.15. Количественное определение вакцины гепатита в (rdna)
- •2.7.16. Количественное определение вакцины коклюша (бесклеточной)
- •2.7.17. Количественное определение антитромбина III человека
- •2.7.18. Количественное определение фактора свертывания крови II
- •2.7.19. Количественное определение фактора свертывания крови х
- •2.7.20. Количественное определение инактивированной вакцины полиомиелита in vivo
- •2.7.22. Количественное определение фактора свертывания крови человека XI
- •2.8. Методы анализа лекарственного растительного сырья и лекарственных средств из него
- •2.8.1. Зола, нерастворимая в хлористоводородной кислоте
- •2.8.4. Коэффициент набухания
- •2.8.5. Определение воды в эфирных маслах
- •2.8.10. Растворимость эфирных масел в спирте
- •2.8.11. Определение 1,8-цинеола в эфирных маслах
- •2.8.12. Определение эфирного масла
- •2.8.13. Остаточное количество пестицидов
- •1. Экстракция
- •2. Очистка
- •3. Количественный анализ
- •Относительные времена удерживания инсектицидов
- •2.8.15. Определение показателя горечи
- •2.8.16. Сухой остаток экстрактов
- •2.8.17. Потеря в массе при высушивании экстракта
- •2.9. Фармацевтико-технологические испытания
- •2.9.1. Распадаемость таблеток и капсул
- •2.9.2. Распадаемость суппозиториев и пессариев
- •2.9.3. Тест «растворение» для твердых дозированных форм
- •2.9.4. Тест «растворение» для трансдермальных пластырей
- •2.9.5. Однородность массы для единицы дозированного лекарственного средства
- •2.9.6. Однородность содержания действующего вещества в
- •2.9.7. Прочность таблеток без оболочки на истирание
- •2.9.8. Прочность таблеток на сжатие
- •2.9.9. Измерение консистенции методом пенетрометрии
- •2.9.10 Содержание этанола
- •2.9.11. Испытание на содержание метанола и 2-пропанола
- •2.9.12. Ситовой анализ
- •2.9.15. Насыпной объем
- •2.9.16. Сыпучесть
- •2.9.17. Определение извлекаемого объема парентеральных лекарственных средств
- •Масса действующего вещества высвобожденного при опорожнении
- •Фракция действующего вещества (%)
- •2.9.19. Загрязнение механическими включениями: невидимые частицы.
- •2.9.20. Загрязнение механическими включениями: видимые частицы
- •2.9.21. Загрязнение механическими включениями: метод микроскопии
- •2.9.22. Опредление времени деформации липофильных суппозиториев
- •2.9.23. Определение плотности твердых частиц при помощи пикнометра
- •2.9.24. Устойчивость суппозиториев и пессариев к разрушению
- •2.9.26. Опредедение удельной площади поверхности методом газовой адсорбции
- •III.1.3. Количество образца
- •III.2.1. Метод 1: метод динамического потока
- •III.2.2. Метод 2: метод объёмного анализа
- •2.9.27. Однородность массы одной дозы высвобожденной из многодозового контейнера
- •2.9.28. Определение массы или объема содержимого контейнера для жидких и мягких лекарственных средств
- •3.1. Материалы, используемые для производства контейнеров
- •3.1.1. Материалы, используемые для производства контейнеров для человеческой крови и компонентов
- •3.1.1.1. Материалы на основе пластифицированного поливинилхлорида, используемые для производства
- •3.1.1.2. Материалы на основе пластифицированного поливинилхлорида для трубок, используемых в комплектах для переливания крови и компонентов крови
- •3.1.3. Полиолефины
- •3.1.4. Полиэтилен без добавок для контейнеров для парентеральных и офтальмологических лекарственных средств
- •3.1.5. Полиэтилен с добавками для контейнеров для
- •3.1.6. Полипропилен для контейнеров и укупорочных материалов для парентеральных и офтальмологических лекарственных средств
- •3.1.7. Полиэтиленвинилацетат для контейнеров и трубок для лекарственных средств для парентерального питания
- •3.1.8. Силиконовое масло, используемое в качестве смазывающей добавки
- •3.1.9. Силиконовые эластомеры для укупорочных
- •3.1.10. Материалы на основе непластифицированного поливинилхлорида для контейнеров для неинъекционных водных растворов
- •3.1.11. Материалы на основе непластифицированного поливинилхлорида для контейнеров для твердых лекарственных форм для перорального применения
- •3.1.13. Добавки к пластмассе
- •3.1.14. Материалы на основе пластифицированного поливинилхлорида для контейнеров для водных растворов для внутривенного применения
- •3.1.15. Полиэтилентерефталат для контейнеров для лекарственных средств для непарентерального применения
- •3.2. Контейнеры
- •3.2.1. Стеклянные контейнеры для фармацевтического использования
- •3.2.2. Пластмассовые контейнеры и укупорочные средства для фармацевтического использования
- •3.2.2.1. Пластмассовые контейнеры для водных растворов для парентерального применения
- •3.2.3. Стерильные пластмассовые контейнеры для человеческой крови и ее компонентов
- •3.2.4. Пустые стерильные контейнеры из пластифицированного поливинилхлорида для человеческой крови и ее компонентов
- •3.2.5. Стерильные контейнеры из пластифицированного поливинилхлорида для человеческой крови, содержащие раствор антикоагулянта
- •3.2.6. Комплекты для переливания крови и компонентов крови
- •3.2.8. Стерильные одноразовые пластмассовые шприцы
- •3.2.9. Резиновые укупорочные средства для контейнеров, предназначенных для водных лекарственных средств для парентерального применения, порошков и лиофилизированных порошков
- •4. Реактивы
- •4.1. Реактивы, эталонные растворы, буферные растворы
- •4.1.1. Реактивы
- •4.1.2. Эталонные растворы для испытаний на предельное содержание примесей
- •0,1 М фосфатный буферный раствор рН 8,0. 4008400.
- •4.2. Реактивы, титрованные растворы для объемного нализа
- •1 М щелочной раствор меди-этилендиамина. 3008700
- •5.1 Общие тексты по стерилизации
- •5.1.1. Методы приготовления стерильных продуктов
- •5.1.2. Биологические индикаторы стерилизации
- •5.1.3. Эффективность антимикробных консервантов
- •24 Часа
- •5.1.4. Микробиологическая чистота лекарственных средств
- •5.1.5 .Применение f0 концепции при стерилизации паром водных растворов.
- •5.2. Общая информация о вакцинах
- •5.2.1. Общепринятая терминология
- •5.2.2. Стаи кур, не имеющих конкретных патогенов и используемые для производства вакцин и контроля их качества
- •5.2.3. Субстраты клеток для производства вакцин, используемых людьми
- •5.2.6. Оценка безопасности вакцин
- •5.2.7. Оценка эффективности вакцин
- •5.2.8. Снижение риска передачи возбудителей губчатой энцефалопатии через лекарственные средства
- •1. Общие замечания
- •2. Область применения общей главы
- •3.1. Животные как источник материала
- •3.2. Части тел животных, жидкости и выделения в качестве исходных материалов
- •3.3. Проверка процесса
- •5.3. Статистические методы обработки результатов анализа
- •5.3.1. Статистический анализ результатов биологических исследований и количественных определений
- •1.1. Общие положения и точность
- •2. Рандомизация и независимость конкретных исследований
- •3. Количественные определения, основанные на количественных эффектах
- •3.1. Статистические модели
- •3.2. Модель параллельных линий
- •3.2.2.1 Схема полной рандомизации
- •3.2.2.2 Схема рандомизированных блоков
- •3.3. Модель угловых коэффициентов
- •3.3.5.2 (/7С/)-схема
- •4. Тесты с альтернативным типом эффекта 4.1. Введение
- •4.2. Метод пробит-анализа
- •5.1. Модель параллельных линий.
- •5.2. Модель угловых коэффициентов
- •5.3. Альтернативные эффекты
- •6 Объединение результатов количественного определения 6.1. Введение
- •6.2. Взвешенное объединение результатов количественного определения
- •6.3. Невзвешенное объединение результатов количественного опре- деления
- •6.4. Пример определения взешенной средней активности с доверительн1м интервалом
- •7. Дополнение
- •7.1. Общие линейные модели
- •7.4. Ошибки корреляции
- •8. Таблицы и процедуры генерирования
- •8.5. Случайные размещения
- •8.6. Латинские квадраты
- •9. Принятые обозначения
- •1. Выборка
- •1.1. Среднее зна чение и дисперсия
- •1.3. Доверительные интервалы и оценка их величины.
- •1.4. Односторонние и двусторонние доверительные интервалы.
- •2. Метрологические характеристики методики анализа
- •2.1.1. Объединенная дисперсия и объединенное среднее
- •2.1.2. Критерий Бартлетта.
- •2.1.3. Критерий Кохрейна.
- •2.2. Проверка наличия значимой систематической погрешности.
- •3. Сравнение двух методик анализа по воспроизводимости
- •4. Метрологическая характеристика среднего результата.
- •5. Сравнение средних результатов двух выборок
- •5.3. Известно точное значение величины а.
- •6. Интерпретация результатов анализа, полученных с помощью метрологически аттестованной методики.
- •6.1. Оценка сходимости результатов параллельных определений.
- •6.2. Определение необходимого числа параллельных определений.
- •6.3. Гарантия качества продукции.
- •7. Расчет и статистическая оценка параметров линейной зависимости
- •8. Последовательная схема статистического анализа результатов химических измерений
- •9. Примеры
- •9.1 Вычисление среднего значения и дисперсии.
- •9.2 Проверка однородности выборки малого объема
- •9.3. Вычисление доверительных интервалов и неопределенностей измерений.
- •9.4. Проверка гипотезы равенства дисперсий.
- •9.4.1. Объединение результатов выборок разного объема.
- •9.4.2. Объединение результатов выборок одинакового объема.
- •9.5. Сравнение двух методик анализа по воспроизводимости.
- •9.6. Сравнение средних результатов двух выборок.
- •9.7. Оценка качества продукции.
- •9.8. Контроль содержания салициловой кислоты в салициловом спирте посредством секвенционального анализа.
- •10. Расчет неопределенности функции нескольких случайных переменных
- •10.1. Линейная модель
- •10.1.1. Взвешенное среднее
- •10.2. Подход Уэлча-Сатертуэйта
- •10.3. Примеры расчетов неопределенности функции нескольких переменных
- •10.3.1. Расчет неопределенности вэжх-анализа готового лекарственного средства
- •10.3.1.1. Конечная аналитическая операция
- •10.3.1.2. Суммарная неопределенность пробоподготовки asp,r.
- •10.3.1.3. Расчет суммарной неопределенности анализа aAs,r
- •10.3.2. Прогноз неопределенности спектрофотометрического анализа готового лекарственного средства
- •10.3.3. Расчет среднего значения нескольких неравноточных выборок
- •1. Введение
- •2. Аналитические испытания и методики, подлежащие валидации
- •3. Валидационные характеристики и требования
- •4. Словарь
- •2. Специфичность
- •5. Правильность
- •5.1. Количественное определение
- •5.2. Примеси (количественное содержание).
- •7. Предел обнаружения
- •8. Предел количественного определения
- •8.3. Использование калибровочной прямой и стандартного отклонения сигнала
- •9. Робастность
- •10. Проверка пригодности хроматографической системы
- •3. Неинструментальные испытания на чистоту и предельное содержание примесей
- •5. Разделительные методы
- •6.1. Метод добавок
- •6.2. Сравнение с арбитражным методом
- •5.4. Остаточные количества органических растворителей
- •5.4.1. Введение
- •5.4.2. Область применения
- •5.4.3. Общие положения
- •5.4.4. Предельные содержания остаточных растворителей
- •5.5. Алкоголеметрические таблицы
- •5.6. Отчет об исследовании интерферонов
- •3.3. Процедура исследования
- •3.3.1. Определение уровня доза-ответ
- •5.7. Таблица физических упоминаемых в фармакопеи
- •Вероятность эмиссии
- •Энергия (мЭв)
- •Энергия (мЭв)
- •Вероят ность эмиссии (на
- •Энергия (мЭв)
- •Вероятность эмиссии
- •5.8. Биодоступность и биоэквивалентность генерических лекарственных средств
- •3. Регистрационная оценка взаимозаменяемых лекарственных
- •4. Исследования эквивалентности, необходимые для
- •4.2.1. Исследования биоэквивалентности/биодоступности (исследования на человеке)
- •4.2.2. Общие методические подходы к выполнению исследований биоэк- вивалентности/биодоступности
- •4.2.3. Исследования сравнительной кинетики растворения (исследования вне живого организма)
- •4.3. Отсутствие необходимости в исследованиях биоэквивалентности или биодоступности
- •5. Дизайн и проведение исследований биологической эквивалентности и биодоступности на людях 5.1. Общие требования.
- •5.2. Испытуемые
- •6. Регламент фармакокинетического исследования
- •7. Аналитический метод
- •8. Анализ фармакокинетических данных
- •8.1. Параметры, подлежащие оценке
- •8.1.1. Однократное введение лекарственного средства
- •8.1.2. Многократное введение лекарственного средства
- •9. Исключение резко выделяющихся наблюдений
- •12. Фармакодинамические исследования
- •13. Клинические испытания
- •14. Тест сравнительной кинетики растворения in vitro
- •15. Клинически значимые колебания биодоступности, обуславливающие отказ в регистрации лекарственного средства
- •Лабораторных животных
- •Участие в испытаниях биоэквивалентности/биодоступности
- •Номограмма для определения достаточного числа добровольцев по результатам проведенного исследования.
- •Хорошо растворимые лекарственные средства
- •Средства с высокой степенью абсорбции
- •Перечень терапевтических (лечебных) доз средств на основе лекарственного растительного сырья
- •Основная литература
- •6. Общие статьи на лекарственные формы и субстанции
3.2.9. Резиновые укупорочные средства для контейнеров, предназначенных для водных лекарственных средств для парентерального применения, порошков и лиофилизированных порошков
Резиновые укупорочные средства для контейнеров, предназначенных для водных лекарственных средств для парентерального применения, порошков и лиофилизированных порошков производят из материалов, полученных методом вулканизации (поперечным сшиванием) макромолекулярных органических веществ (эластомеров) с соответствующими добавками. Требования данной статьи распространяются также на укупорочные средства для контейнеров, предназначенных для лиофилизированных порошков и продуктов, которые растворяют в воде непосредственно перед использованием. Требования данной статьи не распространяются на укупорочные средства, изготовленные из силиконового эластомера (который должен отвечать требованиям раздела 3.1.9. Силиконовый эластомер для укупорочных материалов и трубок), на ламинированные или лакированные укупорочные средства. Эластомеры получают из природных или синтетических веществ, используя полимеризацию, аддитивную полимеризацию или поликонденсацию. Природа основных веществ и используемых добавок (например, вулканизаторов, катализаторов, стабилизаторов, красителей) зависит от требований, предъявляемых к конечному продукту.
Резиновые укупорочные средства можно классифицировать на два типа: тип I - пробки, которые соответствуют более строгим требованиям и являются предпочтительными для использования; тип II - пробки, которые имеют механические свойства для специальных целей (например, для многоразового прокалывания) и не отвечают строгим требованиям, предъявляемым к пробкам типа I из-за своего химического состава.
К средствам, используемым для укупоривания конкретного лекарственного средства, предъявляют следующие требования:
компоненты лекарственного средства, находящиеся в контакте с пробкой, не должны адсорбироваться на поверхности пробки, а также проникать в пробку или через ее поверхность в таком количестве, которое отрицательно влияет на качество лекарственного средства,
пробка не должна выделять в лекарственное средство какие-либо вещества в количествах, способных повлиять на его стабильность или повышающих его токсичность.
Пробка должна быть совместима с лекарственным средством в течение всего периода его хранения и применения.
Производитель лекарственного средства должен получить гарантии от поставщика укупорочных средств в том, что состав укупорочного средства не изменяется и является идентичным тем, что подвергались испытаниям на совместимость. В том случае, если поставщик информирует производителя лекарственного средства об изменении в составе, испытания на совместимость следует проводить повторно в полном объеме или частично, в зависимости от характера изменений.
Пробки перед использованием моют и, если необходимо, стерилизуют. СВОЙСТВА
Резиновые укупорочные средства эластичны, полупрозрачны или непрозрачны, не имеют характерного окрашивания, которое зависит от вида используемых добавок. Практически не растворимы в тетрагидрофуране, в котором, однако, может наблюдаться значительное обратимое набухание. Гомогенны и практически не содержат посторонних включений (например, волокон, механических частиц, отходов резины).
Идентификация типа резины, используемой для производства укупорочных средств, не ограничивается требованиями данной статьи. Идентификационные испытания, приведенные ниже, различают эластомерные и неэласто-мерные укупорочные средства, но не дифференцируют разные виды резины. С целью выявления различий в сериях по сравнению с пробками, используемыми в испытаниях на совместимость, выполняют другие идентификационные испытания. Для этого могут использоваться один или несколько аналитических методов: определение относительной плотности, определение сульфатной золы, определение содержания серы, тонкослойная хроматография экстракта, ультрафиолетовая абсорбционная спектрофотометрия экстракта, инфракрасная абсорбционная спектрофотометрия продуктов пиролиза.
ИДЕНТИФИКАЦИЯ
Эластичность материала должна быть такой, чтобы ленту с поперечной шириной от 1 мм2 до 5 мм2 можно было растянуть вручную в 2 раза по сравнению с исходной длиной. Будучи растянутой в 2 раза в течение 1 мин, она должна сжиматься до первоначального размера, или не менее чем в 1,2 раза в течение 30 с.
От 1 г до 2 г материала нагревают в термостойкой пробирке над открытым пламенем до высушивания образца, продолжают нагревание до конденсации паров продуктов пиролиза у верхнего края пробирки. Осаждают несколько капель продуктов пиролиза на диске с калия бромидом. Инфракрасный спектр (2.2.24) полученного диска должен быть идентичен спектру типового образца.
Содержание общей золы (2.4.16) должно быть в пределах (±10) % от результата, полученного для типового образца.
ИСПЫТАНИЯ
Анализируемые образцы моют и стерилизуют перед использованием.
Раствор S. Неразрезанные пробки в количестве, соответствующем общей площади поверхности около 100 см2, помещают в подходящую стеклянную емкость, заливают водой для инъекций Р, кипятят в течение 5 мин и промывают пять раз холодной водой для инъекций Р. Промытые пробки переносят в широкогорлую колбу (стекло класса I, 3.2.1), прибавляют 200 мл воды для инъекций Р и взвешивают. Закрывают отверстие колбы лабораторным стаканом из боросиликатного стекла. Нагревают в автоклаве таким образом, чтобы за 20-30 мин температура достигла (121±2)0С и выдерживают при данной температуре в течение 30 мин. Охлаждают до комнатной температуры в течение 30 мин и доводят до первоначальной массы водой для инъекций Р. Встряхивают и немедленно отделяют раствор от пробок декантацией. Перед началом каждого испытания встряхивают раствор S.
Контрольный раствор. Готовится аналогично раствору S с использованием 200 мл воды для инъекций Р.
Внешний вид раствора. Мутность раствора S не должна превышать мутность суспензии сравнения II для пробок типа I и мутность суспензии сравнения III для пробок типа II (2.2.1). Раствор S должен быть окрашен не более интенсивно, чем раствор сравнения GY5 (2.2.1, Метод II).
Кислотность или щелочность. К 20 мл раствора S прибавляют 0,1 мл раствора бромтимолового синего Р1 . Для изменения окраски раствора на синюю или желтую должно потребоваться не более 0,3 мл 0,01 М раствора натрия гид-роксида или не более 0,8 мл 0,01 М раствора кислоты хлористоводородной соответственно.
Оптическая плотность. Испытание выполняют в течение не более 5 ч после приготовления раствора S. Раствор S фильтруют через мембранный фильтр с размером пор около 0,45 мкм, отбрасывая первые порции фильтрата. Измеряют оптическую плотность (2.2.25) фильтрата в области длин волн от 220 нм до 360 нм, используя в качестве раствора сравнения контрольный раствор (см. Раствор S). Оптическая плотность в данном диапазоне длин волн не должна превышать 0,2 для пробок типа I и 0,4 для пробок типа II. Если необходимо, разбавляют фильтрат перед измерением и корректируют результат с учетом разведения.
Восстановители. Испытание выполняют в течение не более 5 ч после приготовления раствора S. К 20,0 мл раствора S прибавляют 2 мл кислоты серной разведенной Р и 20,0 мл 0,002 М раствора калия перманганата. Кипятят в течение 3 мин и охлаждают. Прибавляют 1 г калия иодида Р и немедленно титруют 0,01 М раствором натрия тиосульфата, используя в качестве индикатора 0,25 мл раствора крахмала Р. Параллельно проводят контрольный опыт, используя 20,0 мл контрольного раствора. Разность между объемами титранта не должна превышать 3,0 мл для пробок типа I и 7,0 мл для пробок типа II.
Аммоний (2.4.1): Не более 2 ppm.
5 мл раствора S доводят водой Р до 14 мл. Полученный раствор должен выдерживать испытание А на предельное содержание аммония.
Экстрагируемый цинк: не более 5 мкг в 1 мл раствора S.
Испытание проводят методом атомно-абсорбционной спектрометрии (2.2.23, Метод I).
Испытуемый раствор. 10,0 мл раствора S доводят 0,1 М раствором кислоты хлористоводородной до 100 мл.
Растворы сравнения. Растворы сравнения готовят разбавлением эталонного раствора цинка (10 ppm Zn) Р 0,1 М раствором кислоты хлористоводородной.
Источник излучения: лампа с полым цинковым катодом.
Длина волны: 213,9 нм.
Пламя: воздушно-ацетиленовое.
Экстрагируемые тяжелые металлы (2.4.8): не более 2 ppm.
Раствор S должен выдерживать испытание А на предельное содержание тяжелых металлов. Стандартный раствор готовят, используя эталонный раствор свинца (2 ppm Pb) Р.
Сухой остаток. 50,0 мл раствора S выпаривают досуха на водяной бане и высушивают до постоянной массы в сушильном шкафу при температуре (100-105)0С. Масса полученного остатка не должна превышать 2,0 мг для пробок типа I и 4,0 мг для пробок типа II.
Летучие сульфиды. Пробки, если необходимо, предварительно разрезанные, с общей площадью поверхности (20±2) см2 помещают в коническую колбу вместимостью 100 мл, прибавляют 50 мл раствора 20 г/л кислоты лимонной Р. Над горлом колбы помещают кусочек свинцово-ацетатной бумаги Р и удерживают бумагу в таком положении, помещая сверху перевернутый флакон для взвешивания. Нагревают в автоклаве при температуре (121±2)0С в течение 30 мин. Появившееся черное пятно на бумаге должно быть окрашено не более интенсивно, чем пятно в контрольном испытании, выполненном с использованием 0,154 мг натрия сульфата Р и 50 мл раствора 20 г/л кислоты лимонной Р.
Для испытаний на проницаемость, расщепление и самогерметизацию используют пробки, обработанные, как указано при приготовлении раствора S и высушенные.
Проницаемость. Для пробок, вскрываемых с помощью гиподермальной иглы, проводят следующее испытание. 10 флаконов наполняют до номинального объема водой Р, закрывают испытуемыми пробками и укупоривают колпачками. Прокалывают каждую пробку перпендикулярно поверхности пробки, используя для каждой пробки новую смазанную гиподермальную иглу с длинным скосом(1) (угол скоса 12±20) и наружным диаметром 0,8 мм. Требуемое для прокалывания усилие, измеренное с точностью до ± 0,25 Н (25 гс), не должно превышать 10 Н (1 кгс) для каждой пробки.
Фрагментация. Для пробок, вскрываемых с помощью гиподермальной иглы, проводят следующее испытание. Если пробки предназначены для укупоривания водных лекарственных средств, в 12 чистых флаконов помещают объем воды Р меньше номинального объема на 4 мл, закрывают флаконы испытуемыми пробками, укупоривают колпачками и оставляют на 16 ч. Если пробки предназначены для укупоривания сухих лекарственных средств, 12 чистых флаконов закрывают испытуемыми пробками. С помощью чистого шприца, снабженного смазанной ги-подермальной иглой с длинным скосом(1) (угол скоса 12±20) и наружным диаметром 0,8 мм, используя для каждой пробки новую иглу, вводят во флакон 1 мл воды Р и удаляют 1 мл воздуха. Операцию повторяют 4 раза для каждого флакона, прокалывая его каждый раз в новом месте. Для каждой пробки используют новую иглу и контролируют, чтобы игла не затупилась в ходе испытания. Жидкость во флаконах фильтруют через фильтр с размером отверстий 0,5 мкм. Считают количество кусочков резины, видимых невооруженным глазом. Общее их количество не должно превышать 5. Предполагается, что частицы диаметром 50 мкм и более видны невооруженным глазом, в сомнительных случаях частицы просматривают под микроскопом для проверки их природы и размера.
Самогерметизация. Для пробок, предназначенных для использования с мультидозовыми контейнерами, проводят следующее испытание. 10 флаконов наполняют водой Р до номинального объема, закрывают испытуемыми пробками и укупоривают колпачками. Прокалывают каждую пробку 10 раз, каждый раз в новом месте с помощью гиподермальной иглы с длинным скосом(1) (угол скоса 12±20) и наружным диаметром 0,8 мм. Для каждой пробки используют новую иглу. Помещают флаконы вертикально в раствор 1 г/л метиленового синего Р и понижают внешнее давление до 27 кПа в течение 10 мин. Затем восстанавливают давление до атмосферного и оставляют в течение 30 мин. Промывают флаконы снаружи. Ни один из флаконов не должен иметь каких-либо следов окрашенного раствора.