- •ПРЕДИСЛОВИЕ ПЕРЕВОДЧИКА
- •ПРЕДИСЛОВИЕ
- •СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
- •1. Введение
- •1.1. Освещение по Кёлеру
- •1.1.1. Принципы метода
- •1.1.2. Предварительная проверка оборудования
- •1.2. Установка света по Кёлеру
- •2.1. Преломление
- •2.1.1. Числовая апертура
- •2.2. Отражение, поглощение и пропускание
- •2.3. Флуоресценция/фосфоресценция
- •2.4. Поляризация
- •2.5. Дифракция
- •2.5.1. Тестовые пластинки Аббе
- •2.5.2. Формирование первичного изображения
- •2.5.3. Разрешающая способность
- •2.5.4. Роль конденсора в разрешении микроскопа
- •2.5.5. Увеличение
- •2.5.6. Увеличение и разрешение
- •4. Поле зрения
- •5. Резюме
- •6. Литература для дальнейшего чтения
- •1. Введение
- •1.1. Определение контраста
- •2. Светлопольная микроскопия
- •3. Фазовый контраст
- •3.2. Дифрагированный свет в фазовом контрасте
- •4. Темнопольная микроскопия
- •4.1. Освещение по Рейнбергу
- •4.2. Темнопольные конденсоры высокого разрешения
- •4.3. Темнопольное изображение
- •5. Поляризованный свет
- •5.1. Использование одиночного поляризатора
- •5.2. Использование скрещенных поляризаторов
- •5.2.2. Направление двулучепреломления
- •6.3. Интерференционная отражательная микроскопия
- •6.3.2. Физические основы метода
- •6.3.3. Интерпретация результатов
- •7.1. Красители
- •7.2. Использование светофильтров
- •7.3. Срезы
- •7.4. Качество препарата
- •8. Другие методы
- •8.1. Дисперсионное окрашивание
- •10. Благодарности
- •11. Литература
- •ФИКСИРОВАНИЕ ИЗОБРАЖЕНИЯ
- •1. Введение
- •2. Рисование
- •3. Фотомикрография
- •4.1. Разрешение
- •4.2. Разрешающая способность и размер отпечатка
- •4.4. Освещение
- •5. Микроскоп для фотомикрографии
- •5.1. Штатив микроскопа
- •5.2. Оптика
- •5.2.1. Числовая апертура и увеличение объективов
- •5.2.2. Исправление аберраций
- •5.2.4. Иммерсионные объективы
- •5.2.5. Глубина резкости
- •5.2.6. Кривизна поля зрения
- •5.2.7. Типы конденсоров
- •5.2.8. Чистка линз
- •6. Камера для фотомикрографии
- •6.1. Выбор размера пленки
- •6.3. Специальная фотомикрографическая камера
- •6.4. Микроскопы со встроенными фотосистемами
- •6.5. Камера с мехами
- •7. Наведение на фокус и определение экспозиции
- •7.1. Наведение на фокус
- •7.2. Определение экспозиции
- •7.3. Контроль экспозиции
- •8. Выбор условий для фотомикрографии
- •8.1. Фотографический процесс
- •8.1.1. Чувствительность пленки
- •8.1.2. Зернистость
- •8.1.3. Контрастность
- •8.2. Черно-белая фотомикрография
- •8.3. Цветная фотомикрография
- •8.3.1. Цветные отпечатки или слайды
- •8.3.2. Печать со слайдов
- •8.3.3. Цветовая температура
- •8.3.4. Коррекция цветовых искажений
- •8.3.6. Выбор чувствительности пленки
- •8.4. Поляроидные клетки
- •8.4.2. Камера Поляроид SX70
- •8.4.3. Поляроидные слайды
- •8.5. Хранение неэкспонированной пленки
- •9. Фотомакрография
- •9.1.1. Стереомикроскопы для фотомикрографии
- •9.1.2. Макроскопы
- •9.1.3. Фотомакрографические объективы
- •9.2. Освещение для фотомакрографии
- •9.3. Определение экспозиции при фотомакрографии
- •10. Завершение процесса фотомикрографии
- •10.1. Содержание записей
- •10.2. Хранение негативов
- •10.3. Хранение слайдов
- •10.4. Монтаж слайдов
- •10.5. Хранение отпечатков
- •10.6. Определение и указание увеличения
- •11. Практическое руководство
- •11.2. Начальная калибровка экспонометра
- •12. Литература для дальнейшего чтения
- •ИММУНОГИСТОХИМИЯ
- •1. Введение
- •2. Антитела
- •2.1. Структура иммуноглобулинов
- •2.2. Поликлональная антисыворотка
- •2.3. Моноклональные антитела
- •2.4. Очистка антител
- •2.5. Специфичность реакций антител
- •2.6. Хранение антител
- •3.1. Выбор условий обработки ткани
- •3.2. Выявление скрытых антигенов
- •4. Выбор способа мечения
- •4.1. Флуоресцентные метки
- •4.2. Ферментные метки
- •4.2.1. Пероксидаза хрена
- •4.2.2. Щелочная фосфатаза
- •4.2.3. Глюкозооксидаза
- •4.2.4. Галактозидаза
- •4.3. Коллоидное золото
- •4.4. Выбор метки
- •5. Методы окраски
- •5.1. Прямой метод
- •5.2. Непрямой метод
- •5.4. Системы с использованием биотин — авидина
- •5.5. Другие методы
- •6. Экспериментальные методы
- •6.1. Общее описание метода
- •6.2. Выбор правильного разведения антител
- •6.3. Флуоресцентные метки
- •6.4. Пероксидаза
- •6.4.1. Ингибирование эндогенного фермента
- •6.5. Щелочная фосфатаза
- •6.5.1. Блокирование эндогенного фермента
- •6.5.2. Мера предосторожности
- •6.6. Глюкозооксидаза
- •6.7. Галактозидаза
- •6.9. Некоторые общие процедуры
- •6.9.1. Покрытие предметных стекол
- •6.9.2. Дополнительное окрашивание
- •7.1. Контрольные препараты
- •7.2. Решение проблем
- •9. ДНК-зонды для гибридизации in situ
- •9.1. Принцип метода гибридизации
- •9.2. Экспериментальная процедура
- •9.2.1. Выявление Y-хромосомы
- •9.2.2. Выявление цитомегаловируса
- •10. Цитологические препараты
- •11. Количественная оценка
- •12. Оборудование
- •13. Благодарности
- •14. Литература
- •ГИСТОХИМИЯ И СВЕТОВАЯ МИКРОСКОПИЯ
- •1. Введение
- •1.1. Объекты для гистохимического окрашивания
- •1.1.1. Что такое окрашивание?
- •2. Приготовление и хранение срезов препаратов
- •2.1. Необходимые характеристики препарата
- •2.2. Методы приготовления и хранения препаратов
- •2.2.1. Получение тонких слоев
- •3. Что можно выявлять? Некоторые примеры
- •3.1. Выявление химических свойств
- •3.1.1. Химические фрагменты
- •3.1.2. Специфические вещества
- •3.1.3. Классы веществ
- •3.2. Выявление биологических объектов
- •3.2.1. Биологические объекты
- •3.2.2. Биологические процессы
- •3.3. Морфологические исследования
- •4. Выбор методов
- •5.1. Оценка селективности методов
- •5.2. Оценка локализации окрашивания
- •5.4. Оценка чистоты реагентов
- •5.5. Номенклатура реагентов
- •6. Что необходимо для гистохимической работы
- •6.1. Оборудование и материалы
- •6.2. Как научиться работать?
- •7. Почему используются гистохимические методы
- •8. Благодарности
- •ФЛУОРЕСЦЕНТНАЯ МИКРОСКОПИЯ
- •1. Введение
- •2. Флуорохромы
- •3. Флуоресцентный микроскоп
- •3.1. Способы освещения
- •3.1.1. Освещение проходящим светом
- •3.1.2. Освещение падающим светом
- •3.2. Источники света
- •3.3. Домики для ламп
- •3.4. Фильтры
- •3.4.1. Возбуждающие фильтры
- •3.4.2. Запирающие фильтры
- •3.4.3. Цветные светоделительные зеркала
- •3.5. Объективы и окуляры
- •4. Применение флуоресцентных красителей
- •4.1. Нуклеиновые кислоты
- •4.1.1. Прижизненное окрашивание флуорохромами
- •4.2. Иммунофлуоресценция
- •4.3. Флуоресценция нейромедиаторов
- •4.4. Двойное окрашивание
- •5. Микрофлуориметрия
- •5.1. Введение
- •5.2. Стандарты флуоресценции
- •5.3. Оборудование
- •5.3.1. Инвертированные микрофлуориметры
- •5.3.2. Сканирующие микрофлуориметры
- •5.4. Измерения содержания ДНК
- •5.4.1. Оборудование
- •5.4.2. Подготовка материала
- •5.4.3. Процедура окрашивания
- •5.4.4. Проведение измерений
- •6. Анализ изображения при флуоресценции
- •7. Сканирующая лазерная микроскопия
- •8. Литература
- •МИКРОМЕТРИЯ И АНАЛИЗ ИЗОБРАЖЕНИЯ
- •1. Введение
- •2. Простая микрометрия
- •2.1. Измерения длины
- •2.1.3. Окуляр-микрометр сдвига
- •2.1.4. Другие методы измерения длины
- •2.2 Измерения углов
- •2.3. Измерение толщины
- •2.4. Счетные камеры
- •2.4.2. Техника работы с гемоцитометром
- •3.1.1. Определение АA в двухфазном препарате
- •3.2. Принципы измерения площади поверхности
- •4. Измерения с использованием дигитайзера
- •5.2. Измерения с помощью компьютера
- •6. Приборы и математическое обеспечение работ
- •7. Литература
- •ВИДЕОМИКРОСКОПИЯ
- •1. Видеомикроскопия и оборудование для нее
- •1.1. Введение
- •1.1.1. Видеоусиление
- •1.1.2. Видеоинтенсификация
- •1.1.3. Цифровая обработка изображения
- •1.2.1. Условия ограниченного числа фотонов
- •1.3. Различные методы видеомикроскопии
- •1.3.1. Видеомикроскопия с усилением
- •1.3.2. Аналоговое усиление контраста
- •1.3.3. Цифровая обработка изображения
- •1.4.1. Камеры и контроллеры камер
- •1.4.5. Видеопроцессорные платы
- •1.4.6. Монофункциональные процессоры
- •1.4.7. Взгляд в будущее
- •1.5. Условия, налагаемые на микроскоп
- •1.6. Как соединить телекамеру с микроскопом
- •2.1. Различные виды VEC-микроскопии
- •2.2. Приготовление препаратов
- •2.3. Получение изображения
- •2.4. Интерпретация изображений
- •2.5. Типичные применения и ограничения метода
- •2.5.1. Светлопольная микроскопия
- •2.5.2. Темнопольная микроскопия
- •2.5.4. Фазовый контраст
- •2.5.5. Поляризационная микроскопия
- •2.5.7. Отражательная контрастная микроскопия
- •2.5.8. Флуоресцентная микроскопия
- •2.5.9. Примеры применения в биологии и биохимии
- •3.1. Введение
- •3.2. Процесс формирования изображения
- •3.2.1. Условия, касающиеся микроскопа
- •3.2.2. Получение статических изображений
- •3.2.3. Получение изображений подвижных объектов
- •3.3. Типичные приложения
- •3.3.2. Картирование отношений
- •3.3.4. Визуализация молекул
- •3.3.6. Люминесценция
- •3.3.7. Нейробиология
- •4.1. Пространственные измерения
- •4.2. Измерения по интенсивности
- •5.1. Видеозапись и редактирование
- •5.1.1. Стандарты видеотехники
- •5.1.2. Форматы видеопленок
- •5.1.3. Качество видеопленок
- •5.1.4. Видеомагнитофоны
- •5.1.5. Видеомагнитофоны с цейтраферной записью
- •5.1.6. Запись при видеомикроскопии
- •5.1.8. Копирование и редактирование видеозаписей
- •5.2.1. Оборудование
- •5.3. Перенос видеозаписей в видеофильм
- •5.4. Рисование с монитора
- •6. Благодарности
- •7. Литература
- •1. Введение
- •2. Классификация сегментов хромосом
- •2.1. Гетерохроматиновые сегменты
- •2.2. Эухроматиновые сегменты
- •2.3. Ядрышковые организаторы
- •2.4. Кинетохоры
- •4.2. G-окрашивание
- •4.2.1. ASG-метод
- •4.2.3. Метод Галлимора и Ричардсона
- •4.3. R-окрашивание
- •4.4. Q-окрашивание
- •4.4.1. Q-окрашивание с помощью акрихина
- •4.5.2. Процедура окраски
- •5.1. Окрашивание ДАФИ/дистамицином
- •5.2.1. Метод культивирования клеток
- •5.2.2. Методика окраски
- •5.3.2. Синхронизация с помощью БУДР [39]
- •5.3.3. Синхронизация с помощью ФУДР [13, 40]
- •6. Наблюдение и регистрация сегментов хромосом
- •6.3. Фотографирование сегментированных хромосом
- •6.4.1. Получение профилей сегментов
- •6.4.2. Отражательная микроскопия
- •6.4.3. Измерение полиморфизма хромосом
- •7. Благодарности
- •8. Литература
- •9. Литература для дальнейшего чтения
Ксеноновая 450 |
35000 |
|
2000 |
Ксеноновая 150 |
15000 |
|
1200 |
Галогеновая |
|
Интенсивность свечения |
50 |
|
|
возрастает с увеличением |
|
|
|
длины волны |
|
Галогеновые лампы с вольфрамовой нитью (12 В, 50 и 100 Вт) представляют собой удобный и недорогой источник света при обычных исследованиях в тех случаях, когда препараты дают достаточно высокую интенсивность флуоресценции. Эти источники могут использоваться для освещения препаратов как проходящим, так и падающим светом, их можно легко и часто включать и выключать, не опасаясь повредить лампу [13].
В спектре испускания ртутной лампы есть характерные лишний, например 366, 405, 436, 546 и 578 нм, и, кроме того, имеется сильное свечение между линиями. В области синего света, например, свечение у ртутной лампы значительно ярче, чем у галогеновой. Ртутные лампы рекомендуется применять, если нужен УФ-свет или интенсивное возбуждение [14]. Выпускаются ртутные лампы мощностью 50, 100 и 200 Вт. Следует отметить, что лампа мощностью 100 Вт имеет меньшую дугу,, чем лампы 50 и 200 Вт. Ртутные лампы имеют ограниченный срок эксплуатации (около 200 часов горения) и используются с источниками питания переменного тока, а 100-ваттные лампы могут использоваться с источниками постоянного тока (для измерений).
Для ксеноновых ламп характерен спектр испускания с относительно постоянной интенсивностью от УФ до красного света [13]. Поставляются лампы мощностью 75, 150 и 450 Вт с гарантированной продолжительностью эксплуатации соответственно 400, 1200 и 2000 часов горения. Обращаться с ксеноновыми лампами следует с осторожностью, так как даже холодные лампы находятся под давлением и поэтому при замене и установке лампы надо пользоваться защитными очками. Эти лампы работают с источниками постоянного тока.
И ртутные, и ксеноновые лампы стоят дорого. Их следует поджигать в условиях, когда мало механических вибраций, например ночью, и использовать стабилизатор напряжения для компенсации больших колебаний напряжения в электрической сети. Это позволяет получить более стабильную точку поджига и значительно стабилизировать световой поток для измерений флуоресценции, которые следует производить с использованием источников постоянного тока.
Лазеры позволяют получить монохроматическое излучение очень большой интенсивности и могут, таким образом, служить источником света при флуоресцентной микроскопии в особых случаях [15, 16]. Использование их в обычных исследованиях лимитируется высокой стоимостью и сравнительно коротким периодом эксплуатации. Лазеры могут быть источниками непрерывного или импульсного света; при использовании коротких импульсов возбуждения (от 1 мкс до 1 не) часто можно избежать выцветания флуоресценции. Лазеры применяются в сканирующей флуоресцентной микроскопии [17]—новом типе флуоресцентной микроскопии, который будет обсуждаться в разд. 6.
3.3. Домики для ламп
Лампы высокого давления должны размещаться в прочных: защитных домиках, снабженных отверстиями для охлаждения. Домики должны иметь приспособления для юстировки лампы в двух направлениях и фокусировки коллекторной линзы. В домиках для ламп часто есть держатели для установки поглощающих тепло или красный свет фильтров или отражающих, фильтров. Вместо теплопоглощающих фильтров лучше использовать отражающие тепло или инфракрасный свет зеркала, поскольку последние реже бьются. Эти фильтры всегда должны располагаться ближе к лампе, чем цветные светофильтры, чтобы предотвратить интенсивное поглощение тепла последними. Для того чтобы получить правильное освещение, при их установке совершенно необходимо следовать инструкциям изготовителя.
3.4. Фильтры
Очень важной частью флуоресцентного микроскопа являются фильтры. Их необходимо тщательно подбирать для каждой задачи. Выбор фильтров основывается на спектральных характеристиках и величине Q используемых флуорохромов, а также зависит от применяемого источника света. Фильтры нужны для того, чтобы выделить определенную часть спектра возбуждения или испускания. Характер их действия виден по кривой пропускания.
Выпускаются фильтры разных типов: окрашенные стекла, интерференционные фильтры с полосой пропускания (ВР), интерференционные фильтры, пропускающие свет, длина волны которого меньше, чем указанная на фильтре, или наоборот больше (соответственно SP или LP), а также СДЗ (рис. 6.5).
120
Рис. 6.5. Кривые пропускания (Т) светофильтров типов SP (A); LP (Б) (интерференционных) (В) и светоделительных зеркал (CBS) (Г).
Окрашенные стекла пропускают в большей или меньшей степени свет, соответствующий их собственному цвету, и поглощают дополнительные цвета. Интерференционные фильтры представляют собой стеклянные подложки, на которые нанесены тонкие слои солей металлов. Фильтры обозначаются значками/буквами и цифрами. Значки и буквы обозначают тип фильтра в соответствии с его функциями или характеристиками, а цифры относятся к длине волны; в случае ВР-фильтров цифры обозначают длину волны, соответствующую максимуму пропускания; в случаях LPили SP-фильтров — длину волны, где их пропускание составляет 50% от максимального. Кроме того, для некоторых фильтров ВР-типа указывается ширина полосы пропускания (в нм). Кроме того, фильтры могут обозначаться в соответствии со своим положением в микроскопе (со стороны возбуждения или испускания), так что используемая различными фирмами-изготовителями терминология весьма запутана.
3.4.1. Возбуждающие фильтры
Полосные фильтры пропускают свет только определенной части (полосы) спектра. В качестве полосных все еще используются стеклянные фильтры марки BG (синее стекло) и марки UG (ультрафиолетовое стекло). Они имеют относительно широкие полосы пропускания. Полосные интерференционные фильтры являются более избирательными. Недостатком этих фильтров в прошлом было их небольшое светопропускание (30— 60%). Теперь проблема решена: в настоящее время фильтры ВР-типа имеют пропускание до 90% и очень узкую полосу, которая может использоваться для селективного возбуждения флуорохромов (линейные фильтры). Соответственно фильтры ВР-типа в основном используются в качестве возбуждающих, особенно когда в качестве источника света применяются дуговые ртутные лампы. В зависимости от качества фильтры различаются по цене.
Фильтры SP-типа пропускают более короткие длины волн и эффективно отсекают более длинные волны [18—20]. Эти свойства делают их пригодными для использования в качестве возбуждающих фильтров, особенно в комбинации с фильтрами LP-типа. В таком сочетании они предпочтительнее стеклянных фильтров (например, марки BG), хотя, как правило, не предотвращают проникновения нежелательного возбуждающего света. Фильтры SP-типа, как и все интерференционные фильтры, стоят дорого, но по сравнению с более старыми типами интерференционных ВР-фильтров они имеют очень большое светопропускание.
Стеклянные фильтры, используемые для возбуждения, имеют сравнительно широкую полосу пропускания и идентифицируются по цвету, который они пропускают.
3.4.2. Запирающие фильтры
Фильтры LP-типа пропускают много света в области длинных волн (90% или даже больше) и эффективно отсекают свет тех длин, которые короче указанной на оправе фильтра. В комбинации с SP-фильтром фильтр LP-типа служит эффективным избирательным фильтром для пропускания флуоресценции. Такая комбинация особенно полезна для последовательного наблюдения двухцветной флуоресценции с минимальным перекрыванием. Хотя фильтры LP-типа используются в основном как запирающие, однако в комбинации с SPфильтрами они могут успешно применяться и в качестве возбуждающих. До недавнего времени все LPфильтры были стеклянными, в настоящее время изготавливаются интерференционные фильтры данного типа. Некоторые стеклянные LP-фильтры при очень высоких интенсивностях обнаруживают аутофлуоресценцию, однако при использовании их в качестве запирающих фильтров при обычной флуоресцентной микроскопии данной проблемы не возникает.
3.4.3. Цветные светоделительные зеркала
СДЗ отражает свет тех длин волн, которые короче указанной на зеркале, и пропускает свет с большими длинами волн. Оно располагается под углом 45° к оптической оси и отражает возбуждающий свет в объектив для эпиосвещения, при котором объектив служит конденсором. Вертикальные многоволновые осветители выпускаются со скользящими или вращающимися гнездами для фильтров, позволяющими проводить эпиосвещение при различных полосах длин волн. В табл. 6.2 приведены разнообразные комбинации фильтров
121