- •Генная инженерия теория
- •1. Основные открытия современной биологии, послужившие фундаментом для возникновения генетической инженерии
- •2. Предмет и задачи генной инженерии и ее связь с другими биологическими дисциплинами
- •3. Рестрикцирующие эндонуклеазы I, II и III класса
- •4. Особенности ферментов рестрикции II класса
- •5. Другие ферменты нуклеазного действия (s1-нуклеаза, Bal31-нуклеаза, нуклеаза из микрококка, днк-аза)
- •10. Векторы на основе репликонов бактериальных плазмид (pBr322, puc18)
- •11. Векторы на основе бактериофагов (м13, λ)
- •12. Векторы на основе вирусов животных
- •13. Векторы на основе Тi-плазмид
- •14. Основные подходы к получению библиотек днк прокариотических и эукариотических организмов
- •15. Скрининг рекомбинантных днк библиотек
- •16. Получение библиотеки днк с помощью вирусных или плазмидных векторов
- •17. Получение библиотеки днк из отобранных популяций молекул мРнк
- •18. Выявление нужных клонов в генной библиотеке путем гибридизации с радиоактивным днк-зондом
- •19. Выделение перекрывающихся клонов днк («прогулка по хромомсоме») с целью идентификации соседних генов
- •20. Выделение и очистка рекомбинантных клонов
- •21. Секвенирование днк
- •22. Полимеразная цепная реакция (пцр)
- •23. Виды пцр
- •24. Мутагенез клонированной днк
- •25. Методы секвенирования днк
- •26. Использование нерадиоактивных меток при секвенировании. Конструирование делеций для секвенирования.
- •27. Приготовление матриц для секвенирования днк
- •28. Использование для анализа баз данных днк и белковых последовательностей (GenBank, embl, fasta, pir и т.П.)
- •29. Амплификация днк с помощью пцр
- •30. Амплификация рнк с помощью пцр
- •31. Сайт-специфический мутагенез
- •32. Направленный мутагенез с помощью олигонуклеотидов
- •33. Мутагенез с использованием пцр
- •34. Экспрессия белков в e.Coli
- •35. Экспрессия белков с использованием векторов с регулируемыми элементами фага лямбда
- •36. Экспрессия белков с использованием специальных экспрессирующих векторов
- •37. Повышение эффективности систем экспрессии эукариотических белков в клетках e.Coli
- •38. Генно-инженерные системы для получения бав
- •39. Анализ белков
- •40. Генно-инженерная система бактерий рода Bacillus
- •41. Генно-инженерные системы грам-положительных микроорганизмов родов Streptomyces
- •42. Генно-инженерные системы коринеформных бактерий
- •43. Генно-инженерная система дрожжей Saccharomyces
- •44. Системы экспрессии на основе бакуловирусов
- •45. Продукция больших количеств белков в клетках насекомых
- •46. Системы для экспрессии белков в животных клетках
- •47. Векторы экспрессии на основе вирусов животных
- •48. Электрофоретический анализ белков
- •49. Электрофоретический анализ нуклеиновых кислот
- •50. Иммуноблоттинг и иммунодетекция
- •51. Введение днк в клетки животных, растений, бактерий, дрожжей
- •52. Конструирование линий клеток, суперпродуцирующих бав
- •53. Получение трансгенных растений и животных с полезными свойствами
- •54. Генная тераия болезней человека и животных, являющихся следствиями дефектов генетического аппарата и его функций
16. Получение библиотеки днк с помощью вирусных или плазмидных векторов
Ответ. Для создания банка генов, следует клонировать как можно более крупные фрагменты ДНК. Однако чем длиннее фрагменты, тем труднее с ними манипулировать и сложнее их анализировать. Достаточно рутинны процедуры с молекулами ДНК размером до 50 т.п.н. Работа с молекулами ДНК длиной свыше 100 т.п.н. требует специальных методов и приборов. Выбор вектора определяется необходимым размером вставки, который в свою очередь зависит от цели создания банка. Наиболее распространенная задача молекулярных биологов – поиск и анализ каких-либо конкретных генов. В большинстве случаев для этого достаточно иметь геномные библиотеки, созданные с помощью фаговых векторов AEMBL3, AORF8 и AFIX, а также с помощью фазмид типа ApMYF131. Размер вставки при этом не превышает 22 т.п.н. В некоторых случаях (сложная регуляторная система, много интронов) используют космиды, имеющие повышенную емкость (45 т.п.н.), в частности, космиды c2RB и Lorist. Однако приходится учитывать трудности, в частности: космиды более чувствительны к качеству ДНК, взятой для клонирования; упаковка в головки in vitro рекомбинантных космид менее эффективна, чем фаговой ДНК; процесс селекции трансформантов, содержащих рекомбинантные космиды, более затруднен, чем прямой отбор рекомбинантных фагов; банк в виде бактериальных клонов труднее хранить, чем фаговый; скрининг легче проводить с фаговыми клонами, чем с бактериальными. Поэтому космиды применяют только в случаях, когда указанный размер вставки действительно необходим. Отдельная задача – полный анализ генома, его физическое картирование и секвенирование. Здесь приходится начинать с клонирования как можно более крупных фрагментов с тем, чтобы облегчить процесс составления карты. Для этого используют дрожжевые векторы YAC. Они незаменимы также при анализе гигантских генов, таких как ген дистрофина, размер которого 1800 т.п.н. Перспективны векторы BAC, основанные на использовании ori-сайта плазмиды F и позволяющие клонировать фрагменты ДНК длиной до 300 т.п.н. Промежуточное положение занимают векторы, основанные на репликоне и системе упаковки фага P1. ДНК млекопитающих обычно выделяют обработкой клеток протеиназой К в присутствии ЭДТА и SDS с последующей экстракцией фенолом. Молекулы ДНК длиной более 200 т.п.н. получают формамидным методом. Разработаны методы выделения ДНК со средним размером несколько миллионов пар нуклеотидов. В этих случаях лизис клеток и выделение ДНК ведут в агарозном геле. Для получения геномных библиотек млекопитающих требуется около 200 мкг ДНК. Необходимость случайного дробления ДНК понятна. При этом, во-первых, нет опасности, что какой-нибудь ген не будет представлен в банке из-за его систематического расщепления. Во-вторых, обеспечивается перекрывание клонируемых фрагментов, что важно для проведения "прогулки" по хромосоме, т.е. для перехода от одного фрагмента к соседнему с ним. Однако эффективность клонирования фрагментов ДНК, полученных механическим дроблением, оказалась недостаточной для конструирования представительных библиотек из-за необходимости проведения дополнительных ферментативных обработок для их лигирования.