- •Векторные системы теория
- •1. Принципы и понятия технологии рекомбинантных молекул. Основные открытия молекулярной биологии, обосновавшие возможность конструирования рекомбинантных молекул.
- •2. Матричные процессы. Репликон и типы репликации днк. Стабильность наследования генетических структур.
- •3. Механизмы реализации генетической информации.
- •4. Молекулярное клонирование как способ исследования структурной организации генетических элементов и систем экспрессии чужеродной генетической информации.
- •5. Понятие вектора. Характеристика основных генетических элементов про- и эукариотических клеток, претендующих на роль векторов.
- •6. Общие свойства клонирующих векторов. Принципы клонирования днк in vivo и in vitro.
- •7. Рестрикционные нуклеазы и их характеристика.
- •8. Способы объединения фрагментов днк. Днк-лигазы. Днк-полимераза
- •12. Концевая трансфераза и ее применение при создании рекомбинантных молекул.
- •13. Векторные молекулы днк. Развитие представлений о векторных молекулах.
- •14. Введение молекул днк в клетки.
- •15. Требования к клеткам-хозяевам рекомбинантных молекул.
- •16. Структурно-генетическая организация полового фактора.
- •17. Плазмиды бактерий и их общие свойства.
- •18. Сегрегационная и структурная нестабильность плазмид.
- •19. Классификация плазмид.
- •20. Плазмиды бактериоциногенности и векторы на их основе.
- •21. Плазмиды лекарственной устойчивости бактерий.
- •22. Конструирование и структура «искусственных» векторов (плазмиды pRsf2124 и рМв9).
- •23. Принцип модульной организации плазмид.
- •24. Мигрирующие элементы и конструирование векторов для клонирования хромосомных генов бактерий in vivo.
- •25. Трансдуцирующие бактериофаги.
- •26. Организация генома бактериофага лямбда.
- •27. Общая и генерализованная трансдукция.
- •28. Характеристики pBr322, ее преимущества и недостатки.
- •29. Векторы на основе репликонов бактериальной плазмиды puc18, puc19.
- •30. Свойства бактериофага лямбда как универсальной системы для клонирования in vivo и in vitro.
- •31. Молекулярные векторы на основе генома бактериофага лямбда.
- •32. Космиды.
- •33. Фазмиды.
- •34. Искусственные хромосомы (рас, вас, yac)
- •35. Конструирование библиотек и клонотек.
- •36. Нитевидные фаги в качестве клонирующих векторов.
- •37. Конструкция и использование векторов на основе нитевидных фагов.
- •38. Векторы, предназначенные для изучения регуляции экспрессии генов.
- •39. Векторы для Bacillus.
- •40. Проблемы плазмидных векторов.
- •41. Челночные векторы.
- •42. Генетическая организация дрожжей.
- •43. Внехромосомные элементы сахаромицетов.
- •44. Введение днк в дрожжевые клетки.
- •45. Векторы для дрожжевых клеток. Требования к вектору.
- •46. Селективные маркеры дрожжей. Принципы клонирования.
- •47. Введение молекул днк в клетки млекопитающих.
- •48. Организация генома вируса sv40. Векторы на основе вируса sv40.
- •49. Основные проблемы при конструировании векторов млекопитающих.
- •50. Векторы для клонирования в растениях.
- •51. Молекулярная биология Ti-плазмиды Agrobacterium tumefaciens.
- •52. Структура т-днк. Использование Ti-плазмиды в качестве векторов для создания трансгенных растений.
- •53. Бинарные системы.
- •54. Вирусы как векторы для растений.
37. Конструкция и использование векторов на основе нитевидных фагов.
Ответ. Наличие в фаговом геноме области, несущественной для его жизнедеятельности, является важным условием использования этого фага для конструирования гибридных молекул ДНК. У нитевидных фагов существует лишь межгенная область размером 500 нуклеотидов, в которой могут быть произведены изменения (делеции, вставки) без нарушения жизнеспособности фага. Репликативная форма фаговой ДНК не имеет участков узнавания многих рестриктаз, образующих при гидролизе липкие концы, а кроме того, фаговый геном не содержит генетических маркеров, которые позволили бы легко выявлять гибридные фаги. Поэтому конструирование векторных нитевидных фагов включает в себя прежде всего введение в геном селективных маркеров и уникальных участков расщепления определенными рестриктазами. Использование векторов на основе фага М13 имеет ряд положительных моментов. Так, одно клонирование дает два вида фагов с однонитевым ДНК-геномом. Каждый вид фага содержит только одну из нитей вставки ДНК, которые могут находиться в разных ориентациях. В связи с этим, клонирование с использованием фага М13 удобно для создания однонитевых ДНК-зондов и секвенирования ДНК. При первой попытке использовать дикий фаг М13 в качестве вектора для молекулярного клонирования был проведен эксперимент, направленный на выявление области фага M13, в которую можно было внедрять фрагменты чужеродной ДНК без ущерба для жизнедеятельности фага. В качестве маркерной молекулы был выбран HindII-фрагмент β-галактозидазы, который, как было известно, в условиях α-комплементации с аналогичным геном LacZΔM15, несущим мутацию и расположенным на хромосоме E.coli, мог формировать функциональный фермент и при добавлении соответствующего хромогенного субстрата и индуктора давать голубое окрашивание. Было осуществлено недорасщепление фага М13 рестрикционной эндонуклеазой BsuI, имеющей в этом векторе 10 сайтов узнавания, и с помощью гель-электрофореза отобраны линейные формы с единичными разрывами цепи. В результате клонирования HindII-фрагмента β-галактозидазы был отобран фаг, стабильно наследующий данный признак, обозначенный как M13mpl. Местом клонирования вставки оказалась межгенная область между II и IV генами фага. Следующим этапом совершенствования данного вектора для молекулярного клонирования было добавление во фрагмент гена β-галактозидазы, обозначаемого как LacZ', уникального сайта рестрикционной эндонуклеазы EcoRI, осуществленное с помощью химического мутагенеза, в результате чего образовались вектора М13тр2 и М13трЗ. Дальнейшие улучшения векторов на основе одноцепочечного фага М13 привели к последовательному добавлению уникальных сайтов узнавания для рестрикционных эндонуклеаз HindIII и ВатHI. Однако это был еще не настоящий полилинкер, а, скорее, его прообраз. Настоящая революция в создании векторов произошла после помещения в маркерный β-галактозидазный ген химически синтезированного участка ДНК, содержащего расположенные друг за другом уникальные сайты узнавания для целого ряда гексануклеотидных рестрикционных эндонуклеаз, пригодные для их использования в клонировании. Первые сконструированные полилинкеры представляли собой симметричные последовательности, несущие по два сайта узнавания некоторых рестрикционных эндонуклеаз, как, например, EcoRI-ВатHI-SalI-PstI-SalI-BamHI-EcoRI. Создание впоследствии асимметричных полилинкеров в векторе М13mp9 или ему подобных, привело к возможности использования для выделения вставки одновременно двух разных ферментов, узнающих отличающиеся последовательности и образующих как 5', так и 3'-выступающие концы, что было необходимо или для мечения только одного из них, или переклонирования в другом векторе в заранее заданной ориентации. Последовательности полилинкеров были сконструированы таким образом, что не нарушали рамку считывания NH2-терминального фрагмента β-галактозидазы, но при клонировании какого-либо фрагмента ДНК функциональная целостность фермента нарушалась и при использовании специального хромогенного субстрата 5-бромо-4-хлоро-галактозида (x-gal) и индуктора изопропил-(3-тиогалактозида (ИПТГ) легко выявлялись рекомбинантные бактериофаги, несущие вставки. Отдельные случаи сохранения голубого окрашивания рекомбинантными фаговыми бляшками, равно как плазмидами и фагмидами, происходят вследствие клонирования небольших вставок с количеством нуклеотидов кратным 3, что не приводит к нарушению рамки считывания гена β-галактозидазы (конечно, при условии отсутствия терминирующих кодонов во вставке). В течение ряда лет была сконструирована целая серия одноцепочечных векторов М13тр, отличающихся только своими полилинкерами (М13тр6, М13тр7, М13тр8, М13тр9 и др.). Следует отметить, что до недавнего времени продолжались работы по улучшению векторов данного семейства и им подобных. Все это было вызвано тем, что одноцепочечные вектора на основе фага М13 оказались крайне удобными при выполнении проектов по секвенированию фрагментов ДНК ферментативным методом Сэнгера.