- •Векторные системы теория
- •1. Принципы и понятия технологии рекомбинантных молекул. Основные открытия молекулярной биологии, обосновавшие возможность конструирования рекомбинантных молекул.
- •2. Матричные процессы. Репликон и типы репликации днк. Стабильность наследования генетических структур.
- •3. Механизмы реализации генетической информации.
- •4. Молекулярное клонирование как способ исследования структурной организации генетических элементов и систем экспрессии чужеродной генетической информации.
- •5. Понятие вектора. Характеристика основных генетических элементов про- и эукариотических клеток, претендующих на роль векторов.
- •6. Общие свойства клонирующих векторов. Принципы клонирования днк in vivo и in vitro.
- •7. Рестрикционные нуклеазы и их характеристика.
- •8. Способы объединения фрагментов днк. Днк-лигазы. Днк-полимераза
- •12. Концевая трансфераза и ее применение при создании рекомбинантных молекул.
- •13. Векторные молекулы днк. Развитие представлений о векторных молекулах.
- •14. Введение молекул днк в клетки.
- •15. Требования к клеткам-хозяевам рекомбинантных молекул.
- •16. Структурно-генетическая организация полового фактора.
- •17. Плазмиды бактерий и их общие свойства.
- •18. Сегрегационная и структурная нестабильность плазмид.
- •19. Классификация плазмид.
- •20. Плазмиды бактериоциногенности и векторы на их основе.
- •21. Плазмиды лекарственной устойчивости бактерий.
- •22. Конструирование и структура «искусственных» векторов (плазмиды pRsf2124 и рМв9).
- •23. Принцип модульной организации плазмид.
- •24. Мигрирующие элементы и конструирование векторов для клонирования хромосомных генов бактерий in vivo.
- •25. Трансдуцирующие бактериофаги.
- •26. Организация генома бактериофага лямбда.
- •27. Общая и генерализованная трансдукция.
- •28. Характеристики pBr322, ее преимущества и недостатки.
- •29. Векторы на основе репликонов бактериальной плазмиды puc18, puc19.
- •30. Свойства бактериофага лямбда как универсальной системы для клонирования in vivo и in vitro.
- •31. Молекулярные векторы на основе генома бактериофага лямбда.
- •32. Космиды.
- •33. Фазмиды.
- •34. Искусственные хромосомы (рас, вас, yac)
- •35. Конструирование библиотек и клонотек.
- •36. Нитевидные фаги в качестве клонирующих векторов.
- •37. Конструкция и использование векторов на основе нитевидных фагов.
- •38. Векторы, предназначенные для изучения регуляции экспрессии генов.
- •39. Векторы для Bacillus.
- •40. Проблемы плазмидных векторов.
- •41. Челночные векторы.
- •42. Генетическая организация дрожжей.
- •43. Внехромосомные элементы сахаромицетов.
- •44. Введение днк в дрожжевые клетки.
- •45. Векторы для дрожжевых клеток. Требования к вектору.
- •46. Селективные маркеры дрожжей. Принципы клонирования.
- •47. Введение молекул днк в клетки млекопитающих.
- •48. Организация генома вируса sv40. Векторы на основе вируса sv40.
- •49. Основные проблемы при конструировании векторов млекопитающих.
- •50. Векторы для клонирования в растениях.
- •51. Молекулярная биология Ti-плазмиды Agrobacterium tumefaciens.
- •52. Структура т-днк. Использование Ti-плазмиды в качестве векторов для создания трансгенных растений.
- •53. Бинарные системы.
- •54. Вирусы как векторы для растений.
26. Организация генома бактериофага лямбда.
Ответ. Фаг лямбда представлен двунитевой линейной ДНК, которая состоит из 48514 п.н. и содержит около 60 генов. На ее концах имеются однонитевые комплементарные участки, состоящие из 12 нуклеотидных остатков (cos-сайты). Они обеспечивают превращение линейной молекулы ДНК в кольцевую. Такие концы молекул получили название липких. Развитие фага лямбда – это поэтапный процесс, который можно разделить на несколько периодов. Предранний период развития – принимают участие только бактериальные ферменты: ДНК-лигаза (превращает линейную молекулу лямбда ДНК в кольцевую) и РНК-полимераза (осуществляет считывание регуляторных генов N и cro c промоторов рL и рR). Ранний период развития фага начинается после синтеза в клетке N-белка, который связывается с РНК-полимеразой в сайтах nutR и nutL, помогая ей преодолевать терминаторы транскрипции. В результате транскрипция, инициированная в предранний период и прерванная в этих сайтах, продолжается, обеспечивая образование продуктов правого и левого ранних оперонов. Правый содержит репликационные гены О и Р, а левый – рекомбинантные гены red. В раннем периоде происходит репликация фаговой ДНК. Для ее инициации нужна транскрипция оrі-сайта с промотора рL и наличие фаговых белков gpО и gpР. Продукт гена О бифункционален: одной частью он "узнает" ori-сайт, располагающийся в самом гене, а другой – взаимодействует с Р-продуктом, который в свою очередь через белок связывается с репликационным комплексом. Поздний период развития фага начинается с транскрипции поздних генов Ѕ – Rz и Nu1 – J с промотора p`R. Гены Nu1 – FII содержат информацию о синтезе белков головки и ее сборке, а гены Z – J обеспечивают образование отростка фага. Сборка головки фага протекает поэтапно. Сначала вокруг центрального ядра, состоящего из белков, собирается сфера из основного белка головки gpE (структура І). Далее центральное ядро удаляется с помощью бактериального продукта GroE, и в образовавшуюся структуру ІІ начинает упаковываться лямбда ДНК. На этом этапе белок gpNu1 способствует расширению головки фага (структура III), а белки gpW и gpFII “вырезают” фаговые геномы по cos-сайтам из конкатемерной ДНК. Головка, содержащая ДНК, фиксируется белком gpD (структура ІV), и к ней с помощью белков присоединяется отросток. Сформировавшийся фаг выходит в среду после лизиса клетки, осуществляемого продуктами генов S, R и Rz. Фаг имеет достаточно сложную, но хорошо изученную генетическую организацию. На ДНК фага лямбда имеется пять мест расщепления рестриктазой EcoRІ. Для рестриктазы HindIIІ на ДНК бактериофага имеется шесть мест действия, и пять из них в области несущественных генов. Фаг лямбда является умеренным фагом, т.е. в зависимости от условий может развиваться в клетке либо по литическому, либо по лизогенному пути. При литическом развитии происходит лизис клеток и образуются инфекционные фаговые частицы, при лизогенном молекула ДНК фага лямбда интегрируется в бактериальную хромосому преимущественно в одно место между генами gal и bio и находится в так называемом состоянии профага.