- •I. Введение. Грипп — заболевание с неизменяющейся симптоматикой, вызываемое изменяющимся вирусом
- •II. Таксономия вирусов гриппа
- •IV. Структурное и функциональное родство вирусов гриппа с другими рнк-содержащими вирусами
- •V. Антигенная изменчивость вируса гриппа и ее отличие от антигенной изменчивости других инфекционных агентов
- •VI. Нерешенные вопросы
- •Структура вируса гриппа
- •I. Введение
- •1. Число и функции полипептидов
- •4. Нейраминидаза
- •5.Белок нуклеокапсида
- •7. Количество полипептидов в вирионе
- •8. Вирусы гриппа в и с
- •1. Гемагглютинин
- •2. Нейраминидаза
- •IV. Сборка вирионов
- •V. Заключение. Модель вириона гриппа
- •Биологически активные белки вируса гриппа. Гемагглютинин
- •II. Реакция гемагглютинации
- •1. Количественное определение гемагглютинации
- •2. Гемадсорбция
- •3. Ингибирование гемагглютинации
- •III. Структура гемагглютинина
- •1. Химический состав изолированных гликопептидов
- •2. Антигенные свойства гликопептида hAt
- •4. Структура субъединицы на
- •5. Антигенная гомогенность субъединиц на
- •1. Моновалентный гемагглютинин
- •2. Агрегация и диссоциация моновалентного гемагглютинина
- •IV. Функции гемагглютинина
- •V. Заключение
- •Биологически активные белки вируса гриппа. Нейраминидаза
- •II. Специфичность нейраминидазы
- •III. Субстраты для нейраминидазы
- •IV. Химические свойства нейраминидазы
- •V. Содержание нейраминидазы в оболочке вируса
- •1. Использование протеолитических ферментов
- •2. Использование детергентов
- •VI. Свойства изолированной нейраминидазы а. Состав аминокислот
- •VII. Структура нейраминидазы
- •VIII. Антигенные свойства нейраминидазы
- •IX. Лектины и нейраминидазы
- •X. Ингибиторы активности нейраминидазы
- •XI. Роль нейраминидазы
- •Биологически активные белки вируса гриппа. Активность транскриптазы в клетках и вирионах гриппа
- •I. Введение
- •II. Активность рнк-полимеразы в инфицированных клетках
- •IV. Заключение
- •Рибонуклеиновые кислоты вирусов гриппа
- •I. Введение
- •II. Методы
- •1. Экстракция рнк из вирионов
- •1. Анализ экстрагированной рнк с помощью градиентного центрифугирования
- •2. Анализ экстрагированной рнк с помощью электрофореза в полиакриламидном геле (паагэ)
- •IV. Комплекс рнк с белком (рнп) а. Физические и химические свойства
- •2, Созревание и упаковка рнк в вирионы
- •1. Внутриклеточная локализация вкРнк
- •2. Кинетика синтеза вкРнк
- •3. Физические свойства информационной рнк (мРнк)
- •VI. Действие ингибиторов на синтез рнк
- •VII. Заключение
- •Генетика вируса гриппа
- •I. Введение. Исторический обзор
- •1. Исследования по генетике, проведенные Burnet и сотрудниками
- •2. Исследования по генетике, проведенные Hirst и Gotlieb
- •II. Геном вируса гриппа
- •III. Мутации, изменчивость, адаптация
- •1. Модификация вирусных гликопротеидов
- •2. Модификация вирусной оболочки
- •3„ Модификации с помощью протеолитических ферментов
- •1964) Или к гуанидвнгидрохлориду (David-West, 1973) явля
- •2. Фенотипы, относящиеся к нейраминидазе
- •3. Морфология вириона
- •1. Чувствительность к клетке-хозяину
- •2. Патогенность
- •3. Механизм рекомбинации
- •10% От выхода вируса при разрешающей температуре. Шля1
- •V!. Фенотипическое смешение и гетерозигозис
- •VII. Изучение функции генов с помощью ts-мутантов
- •VIII. Заключение
- •Репликация вируса гриппа
- •I. Введение
- •II. Адсорбция, проникновение, «раздевание» вируса
- •III. Транскрипция а. Последовательность синтеза рнк
- •2. Циклогексимид
- •3. Глюкозамин
- •IV. Синтез вирусных белков
- •2. Белок нуклеокапсида
- •3. Неструктурные белки
- •4. Мембранный м-белок
- •5. Гемагглютинин
- •VI. Синтез липидов
- •VII. Сборка (см. Также гл. 2)
- •IX. Неправильные формы размножения
- •Культивирование вирусов гриппа человека в лабораторных условиях, круг хозяев среди лабораторных животных и выделение вируса из клинического материала
- •I. Введение
- •II. Культивирование вирусов в лабораторных условиях
- •1. Продуктивная инфекция
- •2. Абортивная инфекция
- •3. Персистентная инфекция
- •4. Параметры инфекции
- •IV. Выделение вируса
- •Антигенная изменчивость вируса гриппа
- •I. Введение
- •II. Грипп в историческом аспекте (см. Также гл. 15)
- •III. Свойства генома вируса гриппа
- •IV. Субъединицы гемагглютинина
- •V. Механизм антигенного дрейфа
- •1955, 1956; Magill, 1955; Hamre et al., 1958). Эпидемиологиче
- •1956, 1957; Takatsy, Furesz, 1957), антигены постепенно за
- •VI. Механизм антигенных сдвигов (значительных антигенных изменении)
- •VII. Дополнительные доказательства,
- •2. Естественная передача вируса и селекция
- •3. Селекция и передача «нового» вируса гриппа в системе in vivo
- •1. Антигенные соотношения между вирусами гриппа человека, низших млекопитающих и птиц
- •2. Круг хозяев
- •Иммунология гриппа
- •I. Введение
- •II. Проявления иммунитета
- •1. Устойчивость к инфекции
- •2. Изменение заболевания
- •3. Передача вируса
- •2. Изменение заболевания
- •3. Передача вируса
- •4. Механизм действия антител к na
- •V. Влияние антигенного дрейфа на иммунитет
- •VII. «первородный антигенный грех»
- •VIII. Клеточный иммунитет и грипп
- •IX. Заключение
- •Грипп у человека
- •2. Инфекция, вызываемая вирусом гриппа а
- •3. Инфекция, вызываемая вирусом гриппа в
- •7. Изменения бактериальной флоры
- •8. Функция легких при неосложненном гриппе
- •9. Выделение больными вируса в окружающую среду
- •10. Интерферон
- •11. Продукция антител
- •1. Пневмония
- •2. Острые заболевания нижних дыхательных путей у детей
- •3. Обострение хронического бронхита
- •III. Экспериментальная гриппозная инфекция у человека
- •3. Продукция интерферона при заболевании
- •IV. Выводы и заключение
IV. Химические свойства нейраминидазы
А. КОНСТАНТА МИХАЭЛИСА
Константа Михаэлиса (Км) отражает степень сродства фермента к субстрату и является параметром, который можно использовать для сравнения нейраминидаз, выделенных из различных штаммов. Величины Км для различных штаммов вируса гриппа при использовании в качестве субстрата М-ацетилсиалилла.ктозы (а, 2—>~3) равны: PR8 (N1) Км = = 1,0-Ю-3 М, оптимум рН 7,0; А2 (Япония)/305/57 (N2) Км = = 2,0-Ю-4 М, оптимум рН 6,5; FPV Км = 4,0-10^4 М, оптимум рН 6,0; B/Lee Км = 2,0-10~4 М, оптимум рН 6,8; данные суммированы в работе Gottschalk и Drzeniek (1972). Как величина Км, так и оптимальное значение рН являются субстрат-зависимыми величинами.
Используя синтетический субстрат МФН при рН 5,8, Sed-mak и Grossberg (1973) нашли, что величина Км для нейраминидазы штамма A0/NWS/39 (N1) равна 3,5 ■ 10—3 М, а для нейраминидазы, выделенной из A2/R 15+/57, Х7 и X7(F1) (N2), эта величина равна 6,5—6,9• 10~4 М, что указывает на пятикратное различие в сродстве к субстрату этих двух типов нейраминидаз. Как для сиалиллактозы, так и для МФН нейраминидаза типа N2 имеет в 5 раз большее сродство к субстрату, чем нейраминидаза типа N1. Однако абсолютное сродство Км обоих типов нейраминидаз к сиаллактозе в 3 раза ъыше, чем к МФН.
Б. ОПТИМУМ рН
Оптимальное для работы нейраминидазы вируса гриппа значение рН зависит от штамма вируса и используемого субстрата. В отличие от кислых значений рН, оптимальных для нейраминидаз бактерий и млекопитающих, аналогичные значения для нейраминидазы вируса гриппа обычно сдвинуты в щелочную сторону и более близки к нейтральным значениям рН. Kendal и Madeley (1969), используя в качестве субстрата сиалиллактозу, иашли, что для (большого числа штаммов вируса грдоша, включая штаммы вирусов гриппа АО, A1(N1), A2(N2), В, а также вируса А птичьего происхождения, оптимум рН лежит в пределах 6,4—7,0. Оптимальное значение рН зависит также от вида связи, расщепляемой ферментом. Schneir и Rafelson (1966) определили, что нейраминидаза (N2) расщепляет химическую связь (а, 2—>-3) с максимальной скоростью гари рН 6,5, в то время как та же нейраминидаза для расщепления связи (а, 2—>-6) имеет оптимальное значение рН 4,5. Однако максимальная скорость расщепления (а, 2—>-6) N-ацетилсиалиллактозы составляла, только 6% от аналогичной скорости для (а, 2—>-3) формы субстрата.
В. ИНГИБИРОВАНИЕ ПРОДУКТОМ РЕАКЦИИ
Нейраминидаза вируса гриппа 'конкурентно ингибируется. продуктом нейраминидазной реакции — N-ацетилнейрамино-вой кислотой, хотя для этого требуются относительно высокие концентрации нейраминовой кислоты. Walop и соавт. (1960), используя в качестве субстрата сиалиллактозу, определили Ки = 5,0-10-3 М для нейраминидазы штамма A2/57/Sing (N2). Rafelson и соавт. (1963b) для штамма PR8 (N1) определили Ки = 2-10^2 М и Ки=4-10-3 М для азиатского штамма при опти-мумах рН 7,0 и 6,5 соответственно. Это означает, что сродство нейраминидазы N2 к продукту реакции в 5 раз выше, чем аналогичная величина для нейраминидазы N1. Такое же соотношение существует между сродством Км нейраминидазы N2 н Ki к субстрату ферментативной реакции.
Г. ТЕРМОСТАБИЛЬНОСТЬ И ПОТРЕБНОСТЬ В ИОНАХ КАЛЬЦИЯ
Хотя эти два свойства на первый взгляд кажутся совершенно независимыми, появляется все больше фактов, указывающих на их связь. Burnet и Stone (1947) показали, что нейраминидаза Vibrio cholerae имеет температуру инактивации на 8°С выше в (Присутствии ионов 2+Са, чехМ в их отсутствие. Сходный эффект был продемонстрирован для нейраминидазы вируса гриппа штамма B/Lee. Boschman и Jacobs (1965) обнаружили, что нейраминидаза штаммов FMl(Nl), А2 Япония (N2) и B/Joh резко повышают свою температурную чувствительность после обработки ЭДТА. Было, "кроме того, показано, что термостабильность и потребность в ионах .кальция меняются от штамма к штамму (Boschman, Jacobs, 1965; Dimmock, 1971). Нейраминидаза штамма АО(WSN) (N1) полностью теряет свою активность после прогрева в отсутствие Са2+ (Dimmock, 1971). Если же в растворе имелись Са2+, то 35% активности сохранялось. Ионы магния не могут заменить Са2+ для получения эффекта стабилизации. Действие Са2+ может быть обратным в присутствии ЭДТА.
Необходимость Са2+ для работы нейраминидазы, вне ее связи с фактором термостабильности, была предметом дискуссии в течение нескольких лет. Хотя повышение активности было налицо, трудно 'было показать абсолютную необходимость для работы фермента присутствия именно Са2+. Wilson и Rafelson (1967), удаляя ионы кальция с помощью гель-фильтрации на колонке с сефадексом или с помощью добавления ЭДТА для полного связывания их следов, показали снижение на 20% активности нейраминидазы N2; максимальную активность можно получить, добавив 0,1 мМ Са2+. Почти абсолютная необходимость присутствия ионов кальция была показана Dimmock (1971) для нейраминидазы WSN(Nl). В отсутствие Са2+ ак~чвность нейраминидазы составляла около 1 % исходной активности, для получения максимальной активности требовалось 3 мМ Са2+. Нейраминидаза типа N2 (Япония) требовала для своей максимальной активности 0,3 мМ 2+Са. Та'ким образом, имеется десятикратное различие
в потребности в ионах 'кальция для нейраминидазы типа N1 и нейраминидазы типа N2. Особые трудности возникают при изучении действия малых (концентраций ионов кальция (особенно в случае нейраминидазы N2) в связи с тем, что 'большинство субстратов содержат двухвалентные ионы в количествах, достаточных для обеспечения потребности вирусной нейраминидазы (N2) в ионах кальция (Wilson, Rafelson, 1967).
В нескольких работах по изучению термостабильности было показано, что NA типа N1 относительно термолабильна, a NA типа N2 термостабильна. Rafelson и соавт. (1963а) показали, что нейраминидаза PR8(N1) полностью инактивиру-ется при нагревании до 55 °С в течение 30 мин, в то время как нейраминидаза азиатского штамма (N2) сохраняет 67% своей активности при аналогичной обработке. Paniker (1968) обнаружил, что термостабильность нейраминидазы вируса гриппа меняется в широких пределах. Штаммы A2(N2) обладают наиболее термостабильным ферментом, на активность которого не влияет нагревание в течение 1 ч при 45°С, а нейраминидаза штаммов NWS и WSE(Nl) наиболее термолабильна.