- •Ангиогенез
- •Глава 1 12
- •Глава 2 18
- •Глава 3 41
- •5.7. Резюме 70
- •Глава 6 72
- •6.7. Резюме 91
- •Глава 7 92
- •7.7. Резюме 102
- •Введение
- •Глава 1 методы изучения ангиогенеза
- •1.1 Метод прозрачной камеры
- •1.2. Васкуляризация роговицы
- •1.3. Васкуляризации хориоаллантоисной мембраны
- •1.4. Метод тканевых культур
- •1.5. Трансплантация органов и тканей
- •1.6. Наблюдение роста сосудов на различных объектах
- •Глава 2 ангиогенез и васкулогенез в пренатальном и постнатальном периодах онтогенеза
- •2.1. Вводные замечания
- •2.2. Ранние этапы образования и развития кровеносных сосудов в эмбриональном периоде
- •2.2.1. Механизмы васкуло- и ангиогенеза в эмбрионе
- •2.3. Гистогенез стенок сосудов
- •2.3.1. Механизмы формирования просвета сосудов
- •2.3.2. Изменения структурной организации компонентов сосудистых стенок в процессе эмбриогенеза
- •2.3.3. Процессы регрессии сосудов
- •2.3.4. Гистогенез стенки аорты человека (раздел написан с участием м.Д.Рехтера и в.А.Колпакова)
- •2.3.5. Гистогенез эндотелия аорты крысы в постнатальном онтогенезе (раздел написан с участием о.А.Салапиной)
- •2.4. Механизмы формирования кровеносного русла некоторых органов в эмбриогенезе
- •2.4.1. Васкуляризация мозга
- •2.4.2. Васкуляризация сердца
- •2.4.3. Васкуляризация надпочечников
- •2.4.4. Формирование внутриорганного сосудистого русла в плаценте
- •2.4.5. Васкуляризация конечностей
- •2.4.6. Васкуляризация почек
- •2.4.7. Закономерности организации и формирования внутриорганного кровеносного русла большого сальника (раздел написан совместно с а.В.Кораблевым)
- •2.5. Резюме
- •Глава 3 развитие сосудистого эндотелия в филогенезе
- •3.1. Простейшие
- •3.2. Черви
- •3.3. Моллюски
- •3.4. Позвоночные
- •3.5. Резюме
- •Глава 4 морфологические механизмы роста новых сосудов
- •4.1. Последовательность явлений
- •4.1.1. Механизмы образования просвета нового сосуда
- •4.1.2. Механизмы образования сосудистых сетей
- •4.2. Строение и проницаемость новообразованных сосудов
- •4.2.1. Топический анализ субмикроскорической организации растущих сосудов
- •4.3. Резюме
- •Глава 5 регуляция ангиогенеза
- •5.1. Оценка ангиогенной активности
- •5.2. Индукторы ангиогенеза
- •5.2.1. Стимуляторы ангиогенеза
- •5.2.1.1. Характеристика основных са пептидной природы
- •5.2.2. Ангиогенная активность различных клеток и тканей
- •5.2.2.1. Эндотелиоциты как источники са
- •5.2.3. Стимуляторы ангиогенеза в опухолях
- •5.2.4. Механизмы действия индукторов ангиогенеза
- •5.2.5. Ангиогенез и воспаление
- •5.2.5.1. Гепарин - естественный модулятор ангиогенеза
- •5.2.6. Неспецифические ангиогенные факторы
- •5.3. Роль внеклеточного матрикса в ангиогенезе
- •5.3.1. Участие в регуляции ангиогенеза окружающих тканей
- •5.4. Влияние на ангиогенез механических факторов
- •5.4.1. Моделирование ангиогенеза при растяжении тканей (раздел написан с участием м.Д.Рехтера и с.В.Филиппова)
- •5.5. Управление процессами ангиогенеза (раздел написан с участием о.Ю.Гуриной)
- •5.6. Ингибиторы ангиогенеза
- •5.6.1. Механизмы действия ингибиторов ангиогенеза
- •5.6.2. Ангиостатнческие стероиды - новый класс иа
- •5.7. Резюме
- •Глава 6 особенности ангиогенеза в различных условиях
- •6.1. Физиологический (циклический) ангиогенез
- •6.1.1. Закономерности ангиогенеза
- •6.2. Регенерационный ангиогенез
- •6.2.1. Развитие и рост сосудов при заживлении ран
- •6.2.2. Особенности ангиогенеза при заживлении кожных ран . В условиях воздействия жидкой среды и некоторых ферментов (раздел написан с участием т.В.Ершовой)
- •6.2.3. Регенерация кровеносных сосудов париетальной брюшины при инкапсуляции инородного тела
- •6.3. Коллатеральный ангиогенез
- •6.4. Реактивный (адаптационный) ангиогенез
- •6.4.1. Реактивный (рабочий) ангиогенез в скелетных мышцах (б.С.Шенкман и т.Л.Немировская)
- •6.5. Опухолевый ангиогенез
- •6.5.1. Методы изучения опухолевого ангиогенеза
- •6.5.2. Механизмы роста сосудов при опухолевом ангиогенезе
- •6.5.3. Морфология прорастающих в опухоль сосудов
- •6.5.4. Морфологические особенности сосудистого русла опухолей
- •6.5.5. Причины хаотичного роста сосудов в опухолях
- •6.6. Моделирование ангиогенеза in vitro
- •6.6.1. Значение экспериментов с моделированием ангиогенеза in vitro
- •6.7. Резюме
- •Глава 7 репаративный ангиогенез
- •7.1. Восстановление эндотелия
- •7.2. Интрамуральный ангиогенез (раздел написан с участием с.Л.Вялова)
- •7.3. Регенерация эндотелия in vitro
- •7.4. Взаимодействие эндотелия и гмк
- •7.5. Регенерация эндотелия в патологии
- •7.6. Регенерация гладких мышечных клеток (раздел написан с участием м.Д.Рехтера и о.А.Бауман)
- •7.7. Резюме
- •Вместо заключения
- •Использованная литература
- •60Х90 1/16. Усл. Печ. Л. 12,5. Тираж 2500 экз.
- •101882, Москва, Петроверигский пер., 6/8
1.1 Метод прозрачной камеры
Одним из первых стал эффективно использовать прозрачную камеру, вживленную в ухо кролика, J. Sandison (365). Прозрачные камеры различного типа, применяемые для наблюдения за растущими сосудами детально описаны ранее (306). Обычно камера состоит из прозрачного окна, внедряемого в кожу на участках, доступных для освещения. Камеры устанавливаются на коже спины мышей, крыс, хомяка, в защечном мешке хомяка, но чаще всего на ухе кролика. Снаружи остается очень маленькое отверстие, которое открыто для наблюдения и обеспечивает прямую оценку изменений в формирующейся подлежащей сосудистой сети (346). Этот метод был модифицирован для использования на человеческой подкожной ткани, что позволило произвести интересные наблюдения не только капиллярного роста, но также капиллярного кровотока в течение нескольких месяцев (78). Разработана камера для имплантации в большеберцовую кость кролика (50, 432).
Большинство сведений о сосудах и кровоснабжении опухолей также получено с использованием метода трансплантации кусочка опухоли в прозрачную камеру (защечный мешок хомячка, кожный карман на спине) или в роговицу (196). С помощью прозрачных камер интенсивно исследовался процесс васкуляризации нормальных или патологически измененных органов и тканей, имплантированных в камеру (135, 163).
Метод прозрачной камеры имеет определенные преимущества: 1) возможность наблюдать ангиогенез у неоперированных животных и в течение довольно длительного времени (нескольких месяцев), 2) возможность постоянного анализа роста того же самого участка растущего сосуда или сосудистой сети. К недостаткам метода следует отнести то обстоятельство, что имплантация камеры приводит к травме окружающих тканей, и поэтому рост сосудов обязательно связан с процессом заживления раны.
Чтобы понять, какие возможности дает и какие ограничения содержит в себе метод прозрачной камеры, необходимо рассмотреть последовательность явлений, имеющих место после имплантации прозрачной камеры. Вначале вследствие повреждения окружающих сосудов происходит отложение фибриновой сети; затем начинается миграция фибробластов и других соединительнотканных клеток (например, макрофагов); наконец, только после этого определяется рост соединительной ткани, пласта капилляров, формирование почек и петель. При этом следует отметить, что концы растущих капилляров часто дают экстравазаты (195).
Например, для изучения васкуляризации опухолей обычно очень небольшой кусочек опухоли трансплантируется на сформированную сосудистую сеть. Ткань кусочка вначале прозрачна. Через некоторое время ткани кусочка темнеют и начинают плохо пропускать свет, что является результатом дистрофических изменений опухолевых клеток (346). Через один - два дня кровеносные сосуды (обычно венулы) в окружающих тканях расширяются, и образующиеся сосудистые почки (отростки) врастают в кусочек опухоли. При этом ткань опухоли, окружающая пенетрирующие сосуды, вновь становится прозрачной, что показывает жизнеспособность составляющих ее клеток после установления циркуляции крови в сосудах. В это время, то есть спустя 3-5 суток после пересадки, опухоль начинает расти и формирует свою собственную типичную для нее сосудистую сеть.