- •Ангиогенез
- •Глава 1 12
- •Глава 2 18
- •Глава 3 41
- •5.7. Резюме 70
- •Глава 6 72
- •6.7. Резюме 91
- •Глава 7 92
- •7.7. Резюме 102
- •Введение
- •Глава 1 методы изучения ангиогенеза
- •1.1 Метод прозрачной камеры
- •1.2. Васкуляризация роговицы
- •1.3. Васкуляризации хориоаллантоисной мембраны
- •1.4. Метод тканевых культур
- •1.5. Трансплантация органов и тканей
- •1.6. Наблюдение роста сосудов на различных объектах
- •Глава 2 ангиогенез и васкулогенез в пренатальном и постнатальном периодах онтогенеза
- •2.1. Вводные замечания
- •2.2. Ранние этапы образования и развития кровеносных сосудов в эмбриональном периоде
- •2.2.1. Механизмы васкуло- и ангиогенеза в эмбрионе
- •2.3. Гистогенез стенок сосудов
- •2.3.1. Механизмы формирования просвета сосудов
- •2.3.2. Изменения структурной организации компонентов сосудистых стенок в процессе эмбриогенеза
- •2.3.3. Процессы регрессии сосудов
- •2.3.4. Гистогенез стенки аорты человека (раздел написан с участием м.Д.Рехтера и в.А.Колпакова)
- •2.3.5. Гистогенез эндотелия аорты крысы в постнатальном онтогенезе (раздел написан с участием о.А.Салапиной)
- •2.4. Механизмы формирования кровеносного русла некоторых органов в эмбриогенезе
- •2.4.1. Васкуляризация мозга
- •2.4.2. Васкуляризация сердца
- •2.4.3. Васкуляризация надпочечников
- •2.4.4. Формирование внутриорганного сосудистого русла в плаценте
- •2.4.5. Васкуляризация конечностей
- •2.4.6. Васкуляризация почек
- •2.4.7. Закономерности организации и формирования внутриорганного кровеносного русла большого сальника (раздел написан совместно с а.В.Кораблевым)
- •2.5. Резюме
- •Глава 3 развитие сосудистого эндотелия в филогенезе
- •3.1. Простейшие
- •3.2. Черви
- •3.3. Моллюски
- •3.4. Позвоночные
- •3.5. Резюме
- •Глава 4 морфологические механизмы роста новых сосудов
- •4.1. Последовательность явлений
- •4.1.1. Механизмы образования просвета нового сосуда
- •4.1.2. Механизмы образования сосудистых сетей
- •4.2. Строение и проницаемость новообразованных сосудов
- •4.2.1. Топический анализ субмикроскорической организации растущих сосудов
- •4.3. Резюме
- •Глава 5 регуляция ангиогенеза
- •5.1. Оценка ангиогенной активности
- •5.2. Индукторы ангиогенеза
- •5.2.1. Стимуляторы ангиогенеза
- •5.2.1.1. Характеристика основных са пептидной природы
- •5.2.2. Ангиогенная активность различных клеток и тканей
- •5.2.2.1. Эндотелиоциты как источники са
- •5.2.3. Стимуляторы ангиогенеза в опухолях
- •5.2.4. Механизмы действия индукторов ангиогенеза
- •5.2.5. Ангиогенез и воспаление
- •5.2.5.1. Гепарин - естественный модулятор ангиогенеза
- •5.2.6. Неспецифические ангиогенные факторы
- •5.3. Роль внеклеточного матрикса в ангиогенезе
- •5.3.1. Участие в регуляции ангиогенеза окружающих тканей
- •5.4. Влияние на ангиогенез механических факторов
- •5.4.1. Моделирование ангиогенеза при растяжении тканей (раздел написан с участием м.Д.Рехтера и с.В.Филиппова)
- •5.5. Управление процессами ангиогенеза (раздел написан с участием о.Ю.Гуриной)
- •5.6. Ингибиторы ангиогенеза
- •5.6.1. Механизмы действия ингибиторов ангиогенеза
- •5.6.2. Ангиостатнческие стероиды - новый класс иа
- •5.7. Резюме
- •Глава 6 особенности ангиогенеза в различных условиях
- •6.1. Физиологический (циклический) ангиогенез
- •6.1.1. Закономерности ангиогенеза
- •6.2. Регенерационный ангиогенез
- •6.2.1. Развитие и рост сосудов при заживлении ран
- •6.2.2. Особенности ангиогенеза при заживлении кожных ран . В условиях воздействия жидкой среды и некоторых ферментов (раздел написан с участием т.В.Ершовой)
- •6.2.3. Регенерация кровеносных сосудов париетальной брюшины при инкапсуляции инородного тела
- •6.3. Коллатеральный ангиогенез
- •6.4. Реактивный (адаптационный) ангиогенез
- •6.4.1. Реактивный (рабочий) ангиогенез в скелетных мышцах (б.С.Шенкман и т.Л.Немировская)
- •6.5. Опухолевый ангиогенез
- •6.5.1. Методы изучения опухолевого ангиогенеза
- •6.5.2. Механизмы роста сосудов при опухолевом ангиогенезе
- •6.5.3. Морфология прорастающих в опухоль сосудов
- •6.5.4. Морфологические особенности сосудистого русла опухолей
- •6.5.5. Причины хаотичного роста сосудов в опухолях
- •6.6. Моделирование ангиогенеза in vitro
- •6.6.1. Значение экспериментов с моделированием ангиогенеза in vitro
- •6.7. Резюме
- •Глава 7 репаративный ангиогенез
- •7.1. Восстановление эндотелия
- •7.2. Интрамуральный ангиогенез (раздел написан с участием с.Л.Вялова)
- •7.3. Регенерация эндотелия in vitro
- •7.4. Взаимодействие эндотелия и гмк
- •7.5. Регенерация эндотелия в патологии
- •7.6. Регенерация гладких мышечных клеток (раздел написан с участием м.Д.Рехтера и о.А.Бауман)
- •7.7. Резюме
- •Вместо заключения
- •Использованная литература
- •60Х90 1/16. Усл. Печ. Л. 12,5. Тираж 2500 экз.
- •101882, Москва, Петроверигский пер., 6/8
6.2.2. Особенности ангиогенеза при заживлении кожных ран . В условиях воздействия жидкой среды и некоторых ферментов (раздел написан с участием т.В.Ершовой)
Для изучения влияния различных солевых растворов и некоторых ферментов нами были проведены эксперименты на 162 белых беспородных крысах-самцах по анализу растущих микрососудов в дерме кожи крысы в различных условиях заживления стандартной раны. Моделью для изучения особенностей заживления ран при воздействии ферментами служил полнослойный кожный дефект размером 1,5x1,5 см. У крыс в межлопаточной области под эфирным наркозом выщипывали шерсть для подготовки операционного поля площадью 4x4 см. Затем кожу обрабатывали этанолом и 5-процентным раствором йода. При помощи трафарета наносили контуры раны, после чего ножницами иссекали полнослойный кожный лоскут и подкожножировой клетчатки. Все животные были разделены на четыре группы. Первая группа (контрольная): рану подвергали воздействию физиологическим раствором. Вторая группа: стимуляцию заживления ран проводили с помощью 0,2-процентного трипсина на физрастворе. Третья группа: в качестве стимулирующего вещества использовали 0,1-процентную ронидазу на физиологическом растворе. Четвертая (интактпая) группа: кожа каким-либо воздействиям не подвергалась. После операции животных содержали в индивидуальных клетках для исключения зализывания и травмирования ими ран.
Воздействие ферментами и физиологическим раствором проводили на следующий день после операции в утренние часы с 9.00 до 10.00 один раз в сутки в течение 20 мин. с помощью специальной капсулы. Продолжительность стимуляции ограничивали сроком наступления полной эпителизации раны. Полное закрытие дефекта эпидермисом оценивали визуально, что впоследствии подтверждалось на гистологических срезах.
Как известно, заживление ран связано с формированием грануляционной ткани и образованием в ней капилляров. В разные фазы раневого процесса степень васкуляризации неодинакова. Наши исследования с применением количественного метода подсчета длины капилляров на единицу объема грануляционной ткани выявили неравномерность скорости и интенсивности развития микрососудов в зависимости от условий микроокружения.
Суммарная длина капилляров в начальные сроки заживления ран прогрессивно нарастает (табл.3). На 2-е сутки после операции (фаза травматического воспаления) у животных всех групп отдельные капилляры встречаются только в области жировой клетчатки дна раны. Они расширены, базальная мембрана разрыхлена. Ткани, окружающие микрососуды, содержат форменные элементы крови. Наблюдается смешанное полнокровие.
Начинал с 4-х суток эксперимента (начало второй фазы) отмечаемся интенсивное развитие капилляров грануляционной ткани. Они образуют почкующиеся выросты и эндотелиальные тяжи. Сосудистые петли располагаются перпендикулярно поверхности рапы. Протяженность сосудистого русла в 1 мм формирующейся грануляционной ткани в ранах у крыс второй группы (воздействие трипсином) достоверно выше этого показателя для контрольной группы животных. Длина капилляров у животных третьей группы также достоверно больше но сравнению с аналогичными значениями для первой группы (табл.3).
На 7-е сутки течения раневого процесса (фаза формирования грануляционной ткани и эпителизации дефекта) у крыс первой группы на полутонких срезах видно застаивание плазмы крови в верхних петлях капилляров. Непосредственно под полинуклеарным валом эритроциты образуют монетные столбики. В ранах животных всех исследованных групп наблюдается смешанное полнокровие. В лот срок наибольшее развитие капиллярной сети оказалось у животных третьей группы. Данный показатель у них был статистически достоверно выше показателей длины капилляров у животных второй и третьей групп. Наблюдается митотическое деление ЭК в растущих капиллярах (рис.20А).
На 14-е сутки после операции (конец 2-й, начало 3-й фазы заживления) длина капилляров в 1 мм грануляционной ткани достигает максимальных величин у животных второй и третьей групп. В контрольной группе животных этот показатель не изменился по сравнению с 7-ми сутками эксперимента. Кроме того, сосуды здесь выглядят спавшимися и отмечается гиалиноз соединительной ткани.
В ходе формирования и перестройки рубца (3-я фаза раневого процесса) во всех трех группах животных длина микроциркуляторного русла уменьшается. Однако, в контрольной группе крыс длина капилляров на 60-е сутки по сравнению с 14-ми сутками сократилась лишь на 7,7%, в то время как во второй и третьей группах уменьшение протяженности микрососудов составило 39,6% и 32,6% соответственно. Абсолютные показатели длины микроциркуляторного русла в группе животных с воздействием на раневую поверхность раствора ронидазы на 60-е сутки после операции в 1,5 раза превосходят длину капилляров у животных двух других групп.
Таким образом, под действием ферментов процессы ангиогенеза в грануляционной ткани активируются. Суммарная длина микроциркуляторного русла по сравнению с контрольной группой животных увеличивается. Скорость ангиогенеза в первую фазу раневого процесса самая высокая при воздействии раствора трипсина. Раствор ронидазы во вторую и в третью фазы заживления ран оказывает более сильный эффект, чем раствор трипсина. Вновь образующиеся кровеносные сосуды в меньшей степени, чем при использовании физиологического раствора, имели признаки стаза и сладжа эритроцитов. Следовательно, при воздействии на внеклеточные структуры рост капилляров облегчается, что ведет к формированию более нежного рубца.
В процессе созревания и перестройки рубцовой ткани происходит редукция микрососудистой сети и уменьшение показателя васкуляризации (длины капиллярной сети). Степень редукции в условиях воздействия на раневой дефект трипсина и ронидазы в 4-5 раз больше, чем в контрольной группе животных.
Таблица 3.
Длина капиллярной сети (мм в 1мм² среза) грануляционной ткани и рубца в динамике заживления кожаных ран в жидкой среде (p 0,01 по U-критерию Уилкоксона) (X±Sx,* - по сравнению с предыдущим сроком)
Сутки |
Воздействующее вещество |
||
Физраствор |
трипсин |
ронидаза |
|
2 |
29,12 + 2,5 |
51,11 + 1,69 |
46,92 + 1,96 |
|
|
p < 0,001 |
p < 0,001 |
4 |
51,91 + 3,65 |
110,35 + 6,10 |
92,12 + 6,76 |
|
|
p < 0,001 |
p < 0,001 |
7 |
105,58 + 5,06 |
145,24 + 6,29 |
177,85 + 7,72 |
|
|
p < 0,001 |
p < 0,001 |
|
|
*p < 0,01 |
|
14 |
105,57 + 3,63 |
172,20 + 11,45 |
212,76 + 11,16 |
|
|
p < 0,001 |
p < 0,001 |
|
|
*p < 0,05 |
|
30 |
82,54 + 1,92 |
118,61 + 4,43 |
179,77 + 7,59 |
|
|
p < 0,001 |
p < 0,001 |
|
|
*p < 0,001 |
|
60 |
97,24 + 4,14 |
104,41 + 5,92 |
143,35 + 6,31 |
|
|
p < 0,001 |
|