6) Цитратная интоксикация

Развивается при переливании больших доз крови, заго­товленной, с использованием в качестве стабилизатора цитрата натрия, особенно при большой скорости переливания. Цитрат натрия связыва­ет в кровеносном русле свободный кальций, вызывая явление гипокальциемии. Уровень ионизированного кальция возвращается к норме сра­зу после прекращения переливания, что объясняется быстрой мобили­зацией кальция из эндогенных депо и метаболизмом цитрата в печени.

Клиническая картина. При снижении уровня свободного кальция в крови появляются неприятные ощущения за грудиной, судорожные по­дергивании мышц головы, лица, нарушения ритма дыхания с перехо­дом в апноэ при высокой степени гипокальциемии. Возможно снижение артериального давления, нарастание сердечной недостаточности, на ЭКГ наблюдается удлинение интервала Q-T, нарушение ритма серд­ца: брадикардия, вплоть до асистолии. Развитие всей полноты указан­ных изменений получило название «цитратный шок».

Лечение. При появлении клинических признаков гипокальциемии необходимо прекратить введение крови, внутривенно ввести 10-20 мл глюконата кальция или 10 мл 10% раство­ра хлористого кальция. Профилактика заключается в выявлении больных с исходной гипокальциемией, медленном введении кроки, профилактическом введе­нии 10% раствора хлорида (глюконата) кальция - 10 мл на каждые 0,5 л переливаемой крови.

7) Калиевая интоксикация

Гиперкалиемия может возникнуть при переливами длительно хранившейся консервированной крови или ЭМ (происходит раз­рушение форменных элементов с выходом калия в плазму).

В клинической картине характерны брадикардия, аритмия, атония миокарда, вплоть до асистолии. В биохимическом анализе крови под­тверждается гиперкалиемия.

16. Консервирование крови

Консервирование крови - это создание условий для ее сохранения в течение длительного срока в полноценном состоянии, пригодном для трансфузии. Существуют два метода хранения крови: в жидком состоянии при температуре выше 0° С и в замороженном твердом состоянии при температуре от -150 до -196 °С.

Стабилизаторы крови. Кровь, лишенная способности свер­тываться, называется стабилизированной. Стабилизация крови в жидком состоянии достигается связыванием или разрушением одного из компонентов системы свертывания крови. В клиниче­ской практике применяются стабилизаторы, устраняющие ионы кальция. Как известно, связывание кальция подавляет первый этап свертывания крови - образование тромбина.

Наиболее часто из стабилизаторов крови данной группы применяют лимонную кислоту или лимоннокислый натрий (цитрат натрия), В крови цитрат натрия диссоциирует, освобождая лимонную кислоту, которая связывается с катионами кальции, образуя комплексные недиссоциированные соединения, остаю­щиеся в растворе.

Через 30-40 мин после вливания цитратной крови не менее 90% введенного цитрата выводится из организма. При больших трансфузиях выведение лимонной кислоты замедляется, что мо­жет привести к цитратному шоку (гипокальциемия). Токсической дозой цитрата натрии является 0_,2-0,3 г на 1 кг массы тела. По­этому после быстрого введения цитратной крови в дозах, превы­шающих 500 мл, больному необходимо внутривенно ввести 10 мл 5% раствора (0,5 г) хлорида или глюконата кальция для выравни­вания дефицита кальция.

Представителем другой группы стабилизаторов, подавляющих действие тромбина, является гепарин. Добавление гепарина обеспечивает хорошую ее стабилизацию. Однако этот стабилизатор не позволяет длительно хранить кровь.

Биохимические изменения в эритроцитах в процессе консервирования. Во время хранения крови в эритроцитах продолжа­ют происходить процессы обмена веществ, что приводит к накоплению молочной кислоты, «закислению» крови - снижению рН и ухудшению биохимического статуса клеток. До определенного времени эритроциты могут компенсировать этот процесс и синте­зировать необходимое количество АТФ. К 21-му дню хранения в эритроцитах в среднем сохраняется 70% АТФ, что коррелирует с их 70% приживаемостью в русле реципиента. Эта величина при­живаемости является международным критерием пригодности эритроцитов для трансфузий.

По мере увеличения сроков хранения крови происходит по­нижение кислородно-транспортной функции эритроцитов, в результате чего они не реализуют эту функцию на уровне микроциркуляции.

Морфологические изменения в эритроцитах в процессе консервирования. Происходит постепенное изменение их формы: дисковидной в шиповидную, затем в сферическую. По мере уве­личения сроков хранения количество шиповидных и сферических форм увеличивается. В результате снижается ригидность мембра­ны, появляется склонность к ее разрыву. Потеря сфероцитами гибкости и способности к деформированию затрудняет их прохо­ждение через капилляры с меньшим диаметром, чем у сфероцита; под давлением тока циркулирующей крови в капиллярах они под­вергаются фрагментации или разрыву. Сферическую форму эрит­роцита, поэтому, принято считать соответствующей прегемолитической стадии.

Консервирование крови в жидком состоянии. Растворы, предназначенные для хранения крови при положительных темпе­ратурах, должны длительно поддерживать жизнеспособность кле­ток и их функциональную полноценность. Поэтому, помимо ста­билизаторов, в состав консевирующих растворов входят вещест­ва, проникающие в эритроцит и участвующие в его метаболизме (глюкоза, неорганический фосфат и др.)

В клинической практике используют гемоконсервант глюгицир - кислый глюкозоцитратный раствор (цитрата натрия ки­слого 2,0 г, глюкозы безводной 3,0 г, бидистиллированной воды до 100 мл, рН раствора 5,0).

Срок годности крови, заготовленной на этих консервантах, по данным приживаемости эритроцитов перелитой крови (не ме­нее 70%), - 21 день. Целесообразно ее использовать для трансфу­зий в течение 10 дней с момента заготовки в связи со снижением кислородно-транспортной функции эритроцитов при больших сроках хранения.

Криоконсервирование эритроцитов. Многолетнее хранение крови возможно лишь при полном подавлении обмена веществ в клетках при их замораживании (анабиотическое состояние).

В настоящее время для консервирования эритроцитов крови человека применяют 2 метода замораживания:

• очень быстрое охлаждение (250 мл в течение 2 мин до -196 °С) и хранение в жидком азоте ( при температуре -196 °С); такая методика не требует больших концентраций криопротекторных веществ;

• медленное охлаждение, при котором замерзание длится не­сколько часов при умеренно низких температурах (от -25 до -100 °С) с применением больших концентраций (от 30 до 50%) криопротекторных веществ (в основном глицерин).

После размораживания жизнеспособность и функциональная полноценность сохраняется у 90-80% эритроцитов, подвергавшихся замораживанию. Хранение эритроцитов в течение 10 лет и более в замороженном состоянии почти не влияет на степень их структурной сохранности.