Задания для самостоятельной работы.

Напишите этапы выделения чистой культуры при лабораторной диагностике неклостридиальных анаэробных инфекций.

Работа студентов на практическом занятии.

1. Продолжение исследования гнойного экссудата (2-й этап).

2. Изучите характер роста микробов на среде Китт-Тароцци, приготовьте мазок, окрасьте по Граму, микроскопируйте, зарисуйте. Сделайте посев по методу Вейнберга для выделения чистой культуры. Опишите проделанную работы.

3. Изучите и опишите колонии, выросшие на кровяном агаре и МПА. Из изолированных колоний приготовьте мазки, окрасьте по Граму, микроскопируйте. Сделайте выводы о дальнейшем выделении чистых культур и их идентификации.

4. изучите характер роста в пробирке с сахарным бульоном, из посева приготовьте мазок, окрасьте по Граму, микроскопируйте. Сделайте выводы о дальнейшем выделении чистой культуры и ее идентификации.

Занятие 30

Изучение микрофлоры при гнойно-воспалительных заболеваниях челюстно-лицевой области (окончание)

План изучения темы.

1. Общая характеристика возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области.

2. Схема микробиологического исследования при этих заболеваниях.

Контрольные вопросы.

Условия возникновения и основные этапы патогенеза оппортунистических инфекций челюстно-лицевой области. Какие методы исследования используют для идентификации чистых культур неспорообразующих анаэробов?

Задание для самостоятельной работы.

Изобразите в виде схемы основные этапы патогенеза оппортунистических инфекций челюстно-лицевой области. Перечислите методы идентификации неспорообразующих анаэробов.

Работа студентов на практическом занятии.

1. Продолжение исследования гнойного экссудата (3-й этап). Изучите и опишите колонии в трубках Вейон-Виньяля, после распила трубки приготовьте мазки из разных колоний, окрасьте по Граму. На основании микроскопии мазков определите наличие сходства по морфологии (с учетом характера колоний) с возбудителями неклостридиальных и клостридиальных анаэробных инфекций. Определите, что еще необходимо сделать для постановки окончательного диагноза.

2. Промикроскопируйте и зарисуйте демострационные мазки-препараты из чистых культур:

а) Peptostreptococcus anaerobius – окраска по Граму;

б) Peptococcus asaccharolyticus – окраска по Граму;

в) Clostridium – окраска по Граму.

Занятие 31

Изучение микробной флоры полости рта

при воспалительных заболеваниях пародонта.

Цель самоподготовки.

После самостоятельного изучения темы студент должен знать классификацию заболеваний пародонта; морфологию, культуральные особенности и факторы вирулентности пародонтопатогенных микроорганизмов, уметь написать их названия по-латыни.

Исходный уровень знаний.

Для усвоения материала надо знать из прошлых занятий видовой состав нормальной микрофлоры в различных биотопах полости рта, механизмы и этапы формирования зубной бляшки.

Цель занятия.

1. Выработать четкое представление об этиологической роли микроорганизмов в патогенезе пародонтитов.

2. Изучить особенности состава микрофлоры дёсневого желобка и пародонтального кармана при гингивите и пародонтите.

3. Ознакомиться с методикой забора материала из дёсневого желобка и патологических дёсневых карманов для проведения бактериологического исследования.

План изучения темы.

1. Видовой состав микрофлоры зубной бляшки в номе и при пародонтитах.

2. Пародонтопатогенные микроорганизмы, факторы вирулентности.

3. Патогенез пародонтита.

После изучения темы студент должен уметь.

1. Дифференцировать пародонтопатогенные микроорганизмы в микропрепаратах.

2. Соблюдать правила забора материала для микробиологического исследования из пародонтальных карманов.

3. Оценить результаты бактериологического исследования при пародонтите.

Дополнительны й материал к занятию.

Особенности забора исследуемого материала при заболеваниях пародонта.

Для микроскопического исследования содержимого пародонтальных карманов собирают с помощью кюретажной ложечки или целлулоидной пластины. С внутренней стороны пластины прилипают микроорганизмы, находящиейся на поверхности корневой части зуба, а с наружной – находящиейся в десневой жидкости.

Для бактериологичсекого исследования содержимое пародонтальных карманов необходимо после забора поместить в питательную среду с целью сохранения жизнеспособности анаэробных бактерий. В случае исследования субгингивальной зубной бляшки, извлеченной из пародонтального кармана, её необходимо дезинтегрировать перед посевом с помощью ультразвука. Дальнейшее выделение чистых культур и их идентификацию проводят с использованием техники анаэробного культивирования.