- •Введение
- •Оформление работы:
- •1. Дата.
- •2. Тема: номер и название работы.
- •Организация учебного процесса по биохимии
- •Правила техники безопасности при работе в биохимической лаборатории
- •Тема 1. Реакция среды
- •Работа 1. Определение реакции среды молока и яйца с помощью универсальной индикаторной бумаги
- •Работа 2. Определение реакции среды бесцветных растворов с помощью прибора Михаэлиса
- •Работа 3. Определение рН гомогената мышечной ткани, раствора яичного белка с помощью прибора Михаэлиса Приготовление гомогената из тканей животных
- •Ход опыта
- •Лучи света
- •Матовое стекло
- •Работа 4. Определение рН растворов и биологического материала электрометрическим (потенциометрическим) методом
- •Вопросы для самоподготовки по теме 1
- •Тема 2. Буферные системы
- •Работа 5. Приготовление ацетатного буферного раствора и изучение зависимости величины рН от соотношения компонентов
- •Работа 6. Изучение действия на буферный раствор небольшого количества кислоты
- •Работа 7. Изучение действия на буферный раствор большого количества кислоты
- •Работа 8. Изучение действия небольшого количества щелочи на буферный раствор
- •Работа 9. Изучение действия на буферный раствор большого количества щелочи
- •Работа 10. Влияние разбавления водой буферного раствора на величину его рН
- •Вопросы для самоподготовки по теме 2
- •Тема 3. Коллоидные растворы
- •Работа 11. Получение гидрофобного коллоидного раствора гидроксида железа Fe(oh)3.
- •Работа 13. Диализ коллоидных растворов
- •Работа 14. Изучение механизма коагуляции золя железа
- •Работа 15 . Изучение защитного действия гидрофильных коллоидов (эмульсоидов)
- •Вопросы для самоподготовки по теме 3
- •Tеma 4. Адсорбция и абсорбция
- •Работа 16. Адсорбция органических красок животным углем
- •Работа 17. Определение количества уксусной кислоты, адсорбированной животным углем
- •Вопросы для самоподготовки по теме 4
- •Тема 5. Химия и обмен белков
- •Работа 18. Определение количества белка в гомогенате мышечной ткани, яйце рефрактометрическим методом
- •Работа 19. Определение белка по методу Лоури
- •Работа 20. Разделение смеси аминокислот методом распределительной хроматографии на бумаге
- •Работа 21. Определение количества аминокислот в биоматериале по азоту аминогрупп методом формольного титрования по Серенсену
- •Работа 22. Изучение действия пепсина на переваривание белка
- •Вопросы для самоподготовки по теме 5
- •Тема 6. Ферменты (энзимы)
- •Работа 23. Приготовление раствора фермента -амилазы (кф 3.2.1. 1) слюны
- •Работа 24. Обнаружение в слюне амилазы и определение специфичности ее действия
- •Работа 25. Изучение влияния рН среды на активность амилазы слюны
- •Работа 26. Изучение влияния температуры на активность энзимов
- •Работа 27. Изучение действия активаторов и ингибиторов на активность ферментов
- •Вопросы для самоподготовки по теме 6
- •Тема 7. Углеводы и их обмен
- •Работа 28. Изучение механизма переваривания углеводов и определение активности -амилазы (кф 3.2.1.1.) слюны
- •Работа 29. Обнаружение гликогена в тканях животных
- •Вопросы для самоподготовки по теме 7
- •Тема 8. Липиды и их обмен
- •Работа 30. Изучение растворимости жира
- •Работа 31. Определение кислотного числа жира
- •Работа 32. Определение йодного числа.
- •Работа 33. Исследование эмульгирования жира
- •Работа 34. Изучение механизма переваривания липидов и определение активности панкреатической липазы (кф 3. 1. 1. 3)
- •Работа 35. Реакция обнаружения холестерола в растительном и животном маслах.
- •Вопросы для самоподготовки по теме 8
- •Тема 9. Витамины
- •Работа 36. Обнаружение витамина а в жире
- •Работа 37. Обнаружение витамина д в жире
- •Работа 38. Обнаружение витамина с в биоматериале
- •Вопросы для самоподготовки по теме 9
- •Тема 10. Минеральные вещества и вода
- •Работа 39. Определение количества кальция в молоке и гомогенате мышечной ткани по де Ваарду
- •Работа 40. Определение содержания кальция в молоке и гомогенате мышечной ткани комплексонометрическим методом
- •Работа 41. Определение количества неорганического фосфора в молоке и гомогенате мышечной ткани
- •Вопросы для самоподготовки по теме 10
- •Тема 11. Молоко
- •Работа 42. Определение общей кислотности молока по Тернеру
- •Работа 43 Выделение казеиногена из молока и исследование его свойств.
- •Работа 44. Определение редуктазы молока
- •Работа 45. Определение количества лактозы в молоке с помощью рефрактометра
- •Вопросы для самоподготовки по теме 11
- •Рекомендуемая литература.
Работа 1. Определение реакции среды молока и яйца с помощью универсальной индикаторной бумаги
Универсальную индикаторную бумажку (пропитана универсальным индикатором) опустить в исследуемый материал, затем вынуть, сравнить с цветной шкалой для этого индикатора. И одна из ее окрашенных полосок, которая совпадает по интенсивности с окраской использованной универсальной индикаторной бумажки, обозначает величину рН биоматериала. Если универсальная бумажка по цвету располагается между двумя полосками шкалы, то за величину рН исследуемого биоматериала взять среднее из суммы значений рН этих полосок.
Точность метода до 0,5.
Задание: выполнить опыт, определить величину рН молока и яйца, сделать вывод о реакции среды.
Работа 2. Определение реакции среды бесцветных растворов с помощью прибора Михаэлиса
В прибор Михаэлиса входят:
Универсальный индикатор, имеющий область перехода рН от 4 до 8.
2. Четыре основных индикатора:
альфа-динитрофенол, имеющий зону перехода от 2,8 до 4,4%;
гамма-динитрофенол, имеющий зону перехода от 4,0 до 5,4;
пара-нитрофенол, имеющий зону перехода от 5,4 до 7,0;
мета-нитрофенол, имеющий зону перехода от 6,8 до 8,4.
3. Четыре ряда растворов эталонов в ампулах, на которых ука-
зана величина рН. Каждому из 4 основных индикаторов соот-
ветствует свой цветной ряд эталонов.
4. Фарфоровая чашка.
5. Пипетка для взятия основных индикаторов.
6. Цветная таблица для универсального индикатора.
7. Компаратор Уолполя с шестью пробирками.
Ход опыта
Исследование ведется в два этапа. Целью 1-го этапа является выбор основного индикатора.
В фарфоровую чашку налить 3 мл исследуемого бесцветного раствора и 3 капли универсального индикатора. Появившуюся окраску раствора сравнить с цветной шкалой и найти приблизительное значение рН этого раствора. По этой величине рН, используя данные о зонах перехода индикаторов (см. пункт 2 выше), выбрать основной - индикатор, в зоне которого находится рН данного раствора. Этот индикатор используют во 2-м этапе опыта.
Цель 2-го этапа - определить рН раствора с точностью до 0,1. Для этого в пробирку компаратора Уолполя налить из флакона 3 мл того же исследуемого раствора и добавить 0,5 мл основного индикатора. Пробирку поставить в среднее гнездо компаратора и подобрать для нее из одноименного с выбранным в 1-м этапе основным индикатором ряда эталонных растворов одинаковый по окраске эталон. Он и обозначает величину рН раствора. Если цвет исследуемого раствора слабее этого эталона, но темнее другого (соседнего), то в расчет надо взять среднее значение рН из их суммы.
Задание: определить рН бесцветного раствора аминокислоты универсальным и основным индикаторами и сделать вывод о его реакции.
Работа 3. Определение рН гомогената мышечной ткани, раствора яичного белка с помощью прибора Михаэлиса Приготовление гомогената из тканей животных
Свежую ткань печени или мышц предварительно многократно промывают 0,9 % - ным раствором NaCl (физиологический раствор), охлажденным до 0оС, а затем обсушивают фильтровальной бумагой и измельчают ножницами. На весах взвешивают измельченную ткань и помещают в стакан для гомогенизирования. В случае, если используется стеклянный гомогенизатор, зазор между стенкой и пестиком должен быть 0,2 – 0,3 мм; скорость вращения пестика не должна превышать 800 об/мин. Время измельчения тканей: печень – 30 – 40 сек, мышцы – до 60 сек. Если используют механический гомогенизатор, скорость вращения ножей можно доводить до 900 об/мин. Все работы необходимо проводить на холоде, помещая стакан гомогенизатора в чашку со льдом.
Разбавление при гомогенизировании должно проводиться с учетом содержания определяемого биологически активного вещества. Так, в случае определения активности алкогольдегидрогеназы в печени используют разбавление 1:3 или 1:5 (на 1г сырой ткани добавляют 3 или 5 мл охлажденной среды выделения).
Полученный тканевой гомогенат центрифугируют при 5000 g в течение 10 – 15 мин (t = 0оС). Надосадочную жидкость (супернатант) подвергают биохимическим исследованиям.