76. Окраска трихомонад бриллиантовым зеленым

Препарат после фиксации заливают 0,5 % водным раствором бриллиантового зеленого на 1 мин, смывают краситель водой, мазок высушивают и рассматривают под микроскопом в иммерсионной системе. Оболочка трихомонад окрашивается в ярко-зеленый цвет, хорошо контурируются ядра. При данном методе окраски жгутики трихомонад не определяются.

77. Окраска гонококков бриллиантовым зеленым

Препарат после фиксации заливают 0,5 % водным раствором бриллиантового зеленого на 1 мин, высушивают и рассматривают под микроскопом в иммерсионной системе. Гонококки интенсивно окрашиваются в темно-зеленый цвет, эпителиальные клетки и лейкоциты — в зеленый цвет, но значительно слабее.

Раствор для окрашивания готовят путем растворения 0,5 г порошка бриллиантового зеленого в 100 мл кипящей дистиллированной воды, фильтруют и храпят при комнатной температуре.

78. Окраска гонококков по Граму

Мазок фиксируют над пламенем горелки в течение 1—1 мин и окрашивают каким-либо красителем трифенилметановой группы (генциан-виолет, метилвиолет, кристаллвиолет), промывают водой 1—2 мин и заливают раствором Люголя (калия йодид —2 г, йод кристаллический— 1 г, вода дистиллированная — 300 мл), а затем фиксируют 96 % этиловым спиртом в течение 1 мин до появления серо-фиолетовых струек. После этого препарат промывают водой и дополнительно окрашивают какой-либо контрастной краской (нейтральрот). Гонококки грам-отрицательны, то есть окрашиваются в красный либо розовый цвет. Грамположительные бактерии фиолетового цвета.

79. Окраска микобактерий лепры

Наиболее распространен классический метод окраски по Цилю — Нильсену. После фиксации мазок накрывают кусочком фильтровальной бумаги и смачивают карболовым фуксином (одну часть основного фуксина тщательно растирают в ступке с 10 частями 96 % этилового спирта и добавляют 90 частей 10 % водного раствора фенола), подогревают над пламенем спиртовки до появления пара, оставляют на 5 мин, удаляют бумагу, промывают водой, опускают на 2—3 с в 5 % раствор серной кислоты и снова промывают водой. Препарат докрашивают 1 % раствором метиленового синего (метиленовый синий—1 г, этиловый спирт 96 % — 10 мл, дистиллированная вода — 90 мл) в течение 3 мин. Микобактерии лепры окрашиваются в ярко-красный цвет, а присутствующие в мазке клетки — в синий.

80. Определение местной эозинофилии

Метод предложен Л. М. Гольдштейном (1964) и применяется в основном при зудящих дерматозах для определения степени сенсибилизации организма и, что более важно, как критерий качества проведенного лечения. Методика заключается в следующем: обычным способом берут кровь из пальца. Затем путем легкого поверхностного укола из сосочкового слоя дермы очага поражения получают кровь и готовят мазки для подсчета количества форменных элементов белой крови. Одновременно берут кровь из симметричного либо близлежащего видимо непораженного участка кожи, готовят аналогичный мазок и также подсчитывают количество эозинофилов. При сравнении оказывается, что эозинофилия пораженных участков кожи в период обострения процесса обычно значительно выше, чем эозинофилия крови, взятой из видимо непораженной кожи и пальца.

По данным наших наблюдений (Л. М. Гольдштейн, 1969), при экземе у детей эозинофилия пораженного участка составляет в среднем 7%, а видимо здоровой кожи —2,7%, при почесухе детской — соответственно 6,1% и 3,1%, при почесухе вульгарной — 5,3% и 2,9%, при почесухе Бенье — 4,7 % и 3,3 %, при диссеминированном нейродермите—7% и 4,1 %.

При затухании процесса разница в содержании эозинофилов пораженных и непораженных участков кожи уменьшается. Повышенное количество эозинофилов в очагах поражения подтверждает концепцию об участии их в аллергических реакциях, в том числе и местных.