- •Список сокращений
- •Оглавление
- •Глава 2. Материалы и методы исследования 29
- •Глава 3. Получение криоконсервированной культуры эмбриональных клеток свиной печени для ксенотрансплантации 41
- •Глава 4. Оценка эффективности ксенотрансплантации криоконсервированной культуры клеток эмбриональной печени в коррекции острого токсического повреждения печени 54
- •Глава 5. Структурная оценка влияния ксенотрансплантации культуры эмбриональных клеток печени 69
- •Введение
- •Применение клеток печени для коррекции острой печеночной недостаточности (обзор литературы)
- •1.1 Способы клеточной метаболической поддержки в коррекции печеночной недостаточности
- •1.2. Способы коррекции острой печеночной недостаточности в эксперименте
- •1.2.1. Моделирование острой печеночной недостаточности
- •1.2.2. Механизмы острого токсического повреждения печени при введении сСl4
- •1.2.3.Критерии эффективности метаболической клеточной коррекции опн
- •1.3. Трансплантация гепатоцитов в коррекции острой печеночной недостаточности
- •1.3.1. Способы приготовления гепатоцитов для трансплантации
- •1.3.2. Криоконсервация
- •1.3.3.Приготовление препарата для ксенотрансплантации
- •1.3.4. Способы ксенотрансплантации
- •Глава 2. Материалы и методы исследования
- •2.1 Общая характеристика экспериментального материала
- •2.2.2.1. Культура клеток печени
- •2.2.2.2. Приготовление ткани плаценты для ксенотрансплантации
- •2.2.2.3.Приготовление питательной среды для инъекции
- •2.2.3. Методы лабораторного контроля
- •2.2.3.1.Определение массы печени
- •2.2.3.2.Определение биохимических показателей сыворотки крови
- •2.2.3.3.Исследование показателей системы гемостаза
- •2.2.4.Методы морфологического исследования
- •2.3.Методы статистической обработки
- •Глава 3. Получение криоконсервированной культуры эмбриональных клеток свиной печени для ксенотрансплантации
- •3.1.Технология получения культуры клеток печени
- •3.1.1 Дезагрегация печеночной ткани
- •3.1.2. Оптимизация рН среды для культивации клеток
- •3.1.3 Очистка и культивирование эмбриональных клеток свиной печени
- •3.2.Консервация клеток
- •3.2.1. Приготовление среды для криоконсервации
- •3.2.2. Сравнительная оценка эффективности криоконсервации культуры эмбриональных клеток свиной печени
- •3.3. Получение препарата и ксенотрансплантация
- •Глава 4. Оценка эффективности ксенотрансплантации криоконсервированной культуры клеток эмбриональной печени в коррекции острого токсического повреждения печени
- •4.1.Течение острого токсического повреждения печени на фоне метаболической коррекции
- •4.1.1. Ход эксперимента
- •4.1.2. Летальность в экспериментальных группах
- •4.2. Динамика биохимических показателей при остром токсическом повреждении печени под влиянием ксенотрансплантации криоконсер-вированной культуры эмбриональных клеток печени
- •4.2.1. Уровень альбумина в сыворотке крови
- •4.2.2. Уровень холестерина
- •4.2.3. Уровень билирубина
- •4.2.4. Активность индикаторных ферментов
- •4.3. Динамические изменения некоторых показателей системы гемостаза
- •4.3.1. Уровень фибриногена в плазме крови
- •4.3.2. Вязкость крови
- •4.3.3. Гематокрит
- •4.3.4. Агрегация тромбоцитов
- •Глава 5. Структурная оценка влияния ксенотрансплантации культуры эмбриональных клеток печени
- •5.1. Морфологическое исследование зоны трансплантации
- •5.2. Макроскопическая характеристика печени животных
- •5.3. Характеристика строения печени при световой микроскопии
- •5.4. Ультраструктура гепатоцитов при остром токсическом повреждении печени, корригированном ксенотрансплантацией культуры эмбриональных клеток печени
- •5.5. Содержание днк в ядрах гепатоцитов
- •Заключение
- •Практические рекомендации
- •Список использованной литературы
Применение клеток печени для коррекции острой печеночной недостаточности (обзор литературы)
В настоящее время предложено много методов консервативного и оперативного лечения ОПН. Однако эффективность использования этих методов при лечении ОПН невелика и поэтому летальность при возникновении тяжелых форм достигает 70-90 % [13,21, 91,156]
В этой связи становится понятным интерес к применению гетерогенных ГЦ для протезирования жизненно важных функций поврежденной печени [127] .
Обратимся к этой проблеме.
1.1 Способы клеточной метаболической поддержки в коррекции печеночной недостаточности
Экспериментальные исследования по использованию изолированных гепатоцитов для лечения заболеваний печени начались в начале 70-х годов [44,170,175,219,237]
Первоначально поиск был направлен на введение клеток печени в кровь, так как предполагалось, что непосредственный контакт клеток с кровью наиболее целесообразен для коррекции печеночной недостаточности [12, 49 ].
В дальнейшем наметились 2 направления в применении изолированных ГЦ, одно из которых - создание прямого контакта крови или плазмы пациента с гепатоцитами: их внутрисосудистое введение или пропускание крови через колонку с клетками печени [142,152,230]
Второе направление включает в себя методы, при которых контакт крови пациента с живыми ГЦ осуществляется через полупроницаемую мембрану: в диализирующей части аппарата для гемодиализа [8, 12, 18, 44,45,156, 215], внутрибрюшинное или подкожное введение клеток вместе с растворами [8, 50], а также микроинкапсулирование культуры клеток [53, 96, 97, 100, 101, 246], использование гепатоцитов в системе синтетических капилляров [105, 241, 260, 261].
Разработка этого направления привела к созданию так называемых «биоискусственных поддерживающих систем» (в отечественной литературе – «гибридная искусственная печень»), применение которых при индуцированной ОПН оказалось эффективным [18, 108, 114,117, 170, 179, 181, 222, 231, 232, 241 ] и было с успехом проведено в клинике [ 11, 24, 30, 27, 28, 58, 64, 106, 142, 152, 156, 215].
Применение экстракорпоральных биоискусственных поддерживающих систем способствовует восстановлению печени пациента или помогает выиграть время перед ортотопической трансплантацией печени [218].
При этом наибольшие перспективы следует возлагать на применение взвеси живых донорских ГЦ, которые могут взять на себя функции пораженной печени на тот период, который необходим для ее регенерации [45, 112]. В этой ситуации большей проблемой является абсолютное уменьшение количества ГЦ, а не угнетение пролиферации выживших клеток печени [261], следовательно, эффективным могло бы оказаться применение взвеси живых изолированных ГЦ для замещения функций пораженного органа и клеточной репопуляции [236,237].
Это направление разрабатывается с 1925 года, но теперь вновь усилился интерес к ТГЦ для метаболической поддержки при ОПН и наследственных метаболических заболеваниях [100,101, 123, 162, 191, 211]. Использование печеночных фрагментов может быть альтернативным подходом, но опыт еще недостаточен [238].
Обратимся теперь к экспериментальным данным, накопленным к настоящему времени в части применения ксеногенных печеночных клеток при ОПН.