5.2.ЗАГАЛЬНІ ТЕКСТИ НА БІОЛОГІЧНІ ПРОДУКТИ

5.2.2.КУРЯЧІ ЗГРАЇ, ВІЛЬНІ ВІД СПЕЦИФІЧНИХ ПАТОГЕНІВ, ДЛЯ ВИРОБНИЦТВА ТА КОНТРОЛЮ ЯКОСТІ ВАКЦИН

Курей, ембріони або культури клітин, використовувані при виробництві та контролі якості вакцин, де зазначено, одержують з яєць курей зі зграй, вільних від специфічних патогенів(ВСП, SPF). SPF-статус зграї забезпечується комплексом заходів, зазначених нижче. Наведений перелік мікроорганізмів заснований на сучасних знаннях і при потребі може бути доповнений.

Зграєю називають групу птахів, що утримуються на одній ділянці, за якими доглядають особи, що не контактують із не SPF-зграями. У сформовані зграї не вводять нових не SPF-птахів.

Кожну зграю утримують в умовах, що дозволяють мінімізувати ризик контамінації. SPF-зграї не мають розміщуватися поряд з не SPF-птахами, окрім тих випадків, коли сусідна зграя перебуває в процесі встановлення SPF-статусу й утримується в аналогічних з SPF-зграєю пристроях і умовах. SPF-зграї утримують в Ізоляторах або в приміщеннях, забезпечених приладами, що здатні фільтрувати та регулювати атмосферний тиск. Вживають відповідних заходів для запобігання проникнення гризунів, диких птахів, комах а також невповноваженого персоналу.

Уповноважений персонал, що має доступ до приміщення, не має контактувати з іншими птахами або іншими потенційно інфекційними для зграї агентами. Персоналу рекомендується приймати душ, змінювати одяг або надягати спеціальний одяг перед входом до контрольованих приміщень.

Матеріали, що вносяться до приміщень, по можливості, стерилізують. Зокрема, рекомендується відповідним чином обробляти корм щоб уникнути проникнення небажаних мікроорганізмів. Вода, принаймні, має бути питною із хлорованого джерела. У зграї птахів не застосовують ліків, які можуть взаємодіяти з будь-яким захворюванням, що детектується.

Постійно документують загальні спостереження здоров'я зграї і досліджують появу будь-яких аномальних ознак. Контролюють такі фактори: захворюваність, смертність, загальний фізичний стан, споживання їжі, щоденне виробництво яєць і якість яєць, плодючість і висиджування. Записи зберігають протягом не менше 5 років. Про будь-які відхилення від установлених параметрів або при виявленні будь-яких інфекцій якомога оперативніше інформують споживачів яєць.

Випробування або комбінація тестів, наведених нижче, повинні мати підхожу специфічність і чут-

ливість до характерних для серотипів вірусів. Випробовувані зразки відбирають за статистично обгрунтованою схемою.

Виявлення вірусу курячої анемії (BKA,CAV) не завжди веде до виключення матеріалу, отриманого зі зграй, але живі вакцини, призначені для застосування у птахів, вік яких менше 7 діб, мають бути одержані тільки з CAV-негативних зграй. Інактивовані вакцини, призначені для застосування у птахів, вік яких менше 7 діб, можуть бути отримані з використанням матеріалів зі зграй, для яких не підтверджена відсутність CAV, але показано, що процесами обробки інактивується CAV.

СТВОРЕННЯ SPF-ЗГРАЇ

SPF-зграї формують із курей, вільних від спадково переданих інфекцій, зазначених у Табл. 5.2.2.-1. Це досягається випробуванням двох поколінь, передуючих номінації SPF-зграй. Загальна схема процедур, що проводяться для створення і підтримки SPF-зграй, наведена в Табл. 5.2.2.-2. Для створення нової SPF-зіраї мають бути досліджені три покоління птахів. Усі птахи першого покоління (до віку 20 тижнів) як мінімум один раз мають бути протестовані на відсутність групового антигена курячого лейкозу та досліджені методом імуноферментного аналізу (ІФА, ЕІА) або нейтралізацією вірусу (НВ, VN) на відсутність антитіл до вірусів курячого лейкозу субтипів А, В і J. Усі птахи також мають бути тестовані на відсутність антитіл до спадкових агентів, зазначених у Табл. 5.2.2.-1. Починаючи з 8-тижневого віку, зграї тестують на відсутність Salmonella. Клінічні дослідження у зграї проводять, починаючи з 8-тижневого віку; птахи не мають виявляти жодних ознак інфекційних захворювань. Використовувані методи випробувань наведені в таблиці та нижче, в розділі «Рутинні випробування SPF-названих зірай». З 20-тажневого віку птахів зграї тестують, як зазначено в розділі «Рутинні випробування SPF-названих зграй». Усі стадії цієї програми випробувань застосовують для подальших двох поколінь, окрім випробування кожного птаха на спадково передавані агенти до висиджування. Для присвоєння третьому поколінню випробовуваних птахів SPF-статусу всі результати випробувань мають указувати на відсутність патогенів у всіх трьох поколіннях птахів зграї.

Можуть бути використані SPF-ембріони, одержані з іншої SPF-названої зіраї, яку утримують в окремому приміщенні цієї ж ділянки. З 8-тижневого віку ці замінені птахи розглядаються як зграя і тестуються на відповідність випробуванням, наведеним вище.

ПОЧАТКОВІ ВИМОГИ ДО ТЕСТУВАННЯ ПОДАЛЬШИХ ПОКОЛІНЬ SPF-НАЗВАНИХ ЗГРАЙ

Для присвоєння SPF-статусу новій зграї, яка формується виключно з SPF-зграї, попередньо тестують нове покоління.

ДЛЯ птахів, вік яких дорівнює або перевищує 8 тижнів, разом із випробуваннями на відсутність Salmonella, моніторингом загального здоров'я і відтворюваності зграї проводиться ряд специфічних випробувань. Випробування проводять у двох повторах на вибірці, що становить 5 % зграї (не менше 10, але не більше 200 птахів), відібраних з інтервалом не менше 4 тижнів між віком 12-16 тижнів і 16-20 тижнів.

Усі зразки відбирають і тестують окремо. Зразки крові відбирають для випробувань на антитіла та антиген лейкозу. Використовувані методи випробувань наведені в розділі «Рутинні випробування SPF-названих зграй». Тільки підтвердження в усіх випробуваннях відсутності інфекцій дає підстави новому поколінню називатися SPF-зграєю.

РУТИННІ ВИПРОБУВАННЯ SPF-НАЗВАНИХ ЗГРАЙ

Загальні спостереження й аутопсія. Клінічні дослідження з метою підтвердження відсутності пташи-

5.2. Загальні тексти на біологічні продукти

них поксвфусів і відсутності ознак будь-яких інших інфекцій проводять не рідше одного разу на тижден ь протягом усього життя зграї. У разі загибелі більше 0.2 % птахів зграї за тиждень проводять аутопсію всіх наявних тушок для підтвердження відсутності інфекції. Де застосовно, для підтвердження діагнозу проводять відповідні гістопатологічні й/або мікробіологічні/вірусологічні дослідження. Проводять специфічні випробування з виявлення туберкул ьозних заражень, а також підтверджують відсутність Mycobacterium avium методом забарвлення гістологічних зразків при будь-яких сумнівних ураженнях. У вмісті сліпої кишки всіх наявних тушок наведеним нижче методом проводять мікробіологічне визначення наявності Salmonella spp. У певних випадках можуть бути об'єднані зразки вмісту сліпої кишки більше 5 птахів.

Випробування на Salmonella spp. Випробування на

Salmonella spp. проводять із використанням зразків посліду або мазків клоаки, або мазків приготованих препаратів. При дослідженні посліду та мазків клоаки тестування проводиться на 60 зразках через кожні 4 тижні протягом усього життя зграї.

КІЛЬКІСТЬ зразків для випробувань має складати не менше 10. Тестування мазків препаратів проводять через кожні 4 тижні протягом усього життя зграї з використанням не менше двох зразків досліджуваного препарату. Визначення Salmonella spp. у цих зразках проводять шляхом попереднього збагачення цих зразків з подальшою культивацією на селективни для Salmonella середовищах.

Випробування на антиген курячого лейкозу. До початку періоду кладки яєць мазки клоаки та зразки крові тестують методом культивації лейкоцитарної плівки на наявність група-специфічних антигенів лейкозу. Загалом тестують 5 % (не менше 10, але не більше 200} птахів зграї через кожні 4 тижні. Під час кладки яєць досліджують зразки білків 5 % яєць (не менше 10, але не більше 200) через кожні 4 тижні. Випробування проводять методом ЕІА на групаспецифічний антиген, використовуючи методи, здатні визначати антигени з підгрупи А, В і J.

Випробування на антитіла до інших агентів. Випробування на антитіла до всіх агентів, наведені в Табл. 5.2.2.-1, проводять протягом періоду кладки яєць. Через кожні 4 тижні відбирають зразки у 5 % (не менше 10, але не більше 200) птахів зграї. Оскільки випробування на деякі інфекції слід проводити щотижня, рекомендується кожного тижня тестувати 1.25 % птахів зграї. Класифікація агентів за швидкістю розповсюдження серед птахів зграї і перелік агентів, які можуть бути неінфекційними для всієї зграї, наведені в Табл. 5.2.2,-1. Зразки для дослідження на агенти, що повільно розповсюджуються, тестують окремо. Для агентів, що швидко розповсюджуються, не менше 20 % зразків відбирають кожні 4 тижні та

тестують окремо. При використанні методу нейтралізації сироватки або ELlSA-тесту зразки можуть досліджуватися окремо або сукупно 5 одночасно відібраних зразків.

Підхожі методи визначення агентів наведені в Табл. 5.2.2.-1. З дозволу уповноваженого органу можуть бути використані інші методи випробувань, якщо підтверджено, що вони принаймні не менш чутливі та специфічні, ніж зазначені.

ВИПРОБУВАННЯ, ЯКІ СЛІД ПРОВОДИТИ В КІНЦІ ПЕРІОДУ КЛАДКИ Я Є Ц Ь

Після останнього збору яєць проводять завершальне дослідження, що підтверджує відсутність спадково передаваних агентів, зазначених у Табл. 5.2.2.-1. Після останнього збору яєць не менше 5 % зграї (не менше 10, але не більше 200) утримують протягом не менше 4 тижнів. Протягом 4 тижнів збирають зразки крові кожного птаха цієї групи, при цьому не менше 1.25 % птахів (25 % зразків) мають забиватися не раніше 4 тижнів після останнього збору яєць. Зразки сироватки, використовуючи зазначені методи, тестують на спадково передавані агенти (див. Табл. 5.2.2.-1). Якщо відбір зразків проводиться щотижня, не менше 1.25 % птахів (25 % зразків) тестують щотижня протягом усього цього періоду. Альтернативно протягом 4 тижнів останнього збору яєць у не менше 5 % птахів зграї відбирають кров і/або інші підхожі матеріали та тестують на наявність спадково передаваних агентів, використовуючи ва-

лідовану методику ампліфікації нуклеїнових кислот

(2.6.21).

Таблиця 5.2.2.-2

ЗАХОДИ. ЯКИХ СЛІД УЖИВАТИ ПРІ1 ВИЯВЛЕННІ СПЕЦИФІЧНИХ АГЕНТІВ

При виявленні контамінації зграї агентами, що попільно розповсюджуються (наведені в Табл. 5.2.2,- !>. усі матеріали, одержані зі зграї протягом 4 тижнів, безпосередньо передуючих даті виявлення позитивного зразка, вважаються незадовільної якості. При виявленні контамінації зграї агентами, що швидко розповсюджуються (наведені в Табл. 5.2.2.-1). усі матеріали, одержані зі зграї протягом 2 тижнів, безпосередньо передуючих даті виявлення позитивного зразка, так само вважаються незадовільної якості. Будь-які продукти, вироблені з використанням таких матеріалів і для яких потрібне використання SPF-матєріалів, вважаються незадовільної якості й мають бути знищені. Будь-які випробування з контролю якості, проведені з використанням таких матеріалів, вважаються недійсними.

Виробники мають якнайшвидше повідомити всім споживачам яєць про підтвердження контамінації.

Будь-яка зграя, в якій підтверджений спалах специфічної інфекції, не може далі називатися SPFзграєю. Все потомство, отримане із цієї зграї у 4-тижневий період після або перед останнім збором негативного зразка, не може мати SPF-статусу.

5.2.3.КЛІТИННІ СУБСТРАТИ ДЛЯ ВИРОБНИЦТВА ВАКЦИН

ДЛЯ ЗАСТОСУВАННЯ ЛЮДИНОЮ

Дана стаття стосується диплошних та безперервних клітинних ліній, використовуваних як клітинні субстрати для виробництва вакцин для застосування людиною; специфічні питання, пов'язані з вакцинами, одержаними за допомогою технології рекомбінантної ДНК, обговорюються в статті«Продукти, одержані за допомогою технології рекомбінантної ДНК». У Табл. 5.2.3.-1 зазначені випробування, які слід проводити на різних стадіях виробництва (посівні клітини, головний банк клітин, робочий банк клітин, клітини на рівні або вище рівня подвоєння популяції, використовувані для виробництва). Загальні положення з використання клітинних ліній і методи випробувань наведені нижче. Якщо для виробництва вакцин використовувалися первинні клітини або клітини, що пройшли декілька пасажів без закладення клітинного банку, вимоги для таких випадків наводяться в окремій статті для конкретної вакцини.

Дігалоїдаі клітинні лінії. Диштощні клітинні лінії здат- н і і нтенсивно розмножуватися в умовах in vitro протягом обмеженого періоду часу.

Безперервні клітинні лінії. Безперервні клітинні лінії здатні розмножуватися довгий час в умовах in vitro; часто клітини можуть відрізнятися каріотипом від вихідних клітин; вони можуть бути отримані зі здорових або пухлинних тканин ссавців або комах.

5.2. Загальні тексти на біологічні продукти

Для вакцин парентератьного застосування, одержаних із використанням безперервних клітинних ліній, слід ватідувати процес очищення для підтвердження видапення ДНК субстратних клітин до еквівалентного рівня — не більше Юнг на одну дозу для людини, якщо немає інших зазначень.

Система банку клітин. Виробництво вакцин із використанням диплоїдних і безперервних клітинних ліній засноване на системі банку клітин. Вік клітин in vitro ВІДЛІЧУЄТЬСЯ від ВІКУ головного банку клітин. Кожен робочий банк клітин одержують з одного або більше контейнерів головного банку клітин. Використання, ідентичність і контроль вмісту контейнерів підлягають строгому документуванню.

Середовища та субстанції тваринного і людського походження. Детатьно записують склад середовища, використовуваного для виділення і всіх подальших культивувань. Якщо використовують субстанції людського або тваринного походження, вони мають бути вільні від сторонніх агентів (2.6.16) і витримувати вимоги статті «5.1.7. Вірусна безпека».

Використовуваний альбумін людський має відповідати вимогам статті «Альбуміну людського розчин».

Використовуваний альбумін бичачий має відповідати вимогам статті «Альбумін бичачий сироватковий».

Трипсин, використовуваний для приготування клітинних культур, досліджують відповідними методами на підтвердження стерильності та відсутність мікоплазм, вірусів, особливо пестивірусів. цирковірусів і парвовірусів.

Посівні клітини. Дані, використовувані для оцінки придатності посівних клітин, по можливості, мають містити інформацію про їх джерело, історію та характеристики.

Джерело посівних клітин. Для клітинних .ліній людського походження інформація про донора має містити таке: етнічне та географічне походження, вік, стать, загальний фізіологічний стан, або використаний орган або тканина, результати всіх тестів на патогени.

Для клітинних ліній тваринного походження інформація про джерело клітин має містити таке: вид, штам, умови вирощування, географічне походження. вік. стать, загальний фізіологічний стан, або використаний орган або тканина, результати всіх тестів на патогени.

Клітини нервової тканини, такі як нейробластома та Р12 клітинні лінії, можуть містити речовини, щоє переносниками іубчастоїенцефалопатії. Такі клітини не слід використовувати у виробництві вакцин.

Історія посівних клітин. Записують наступну інфор-

мацію: метод, використаний д ія виділення посівних клітин; методи культивування і будь-яких інших процедур із закладення головного банку клітин, осо-

S.2. Загальні тексти ка біологічні продукти

бдиво ті. які можуть спровокувати появу сторонніх агентів.

Повна інформація про використані у минулому компоненти середовища культивування клітин може бути недоступна, наприклад про джерело речовин тваринного походження; в обгрунтованих і виправданих випадках при виробництві вакцин можуть бути використані вже закладені банки клітин із такими середовищами.

Характеристики посівних клітин. Досліджуються такі аіастивості:

(3)каріотип для диплошних клітинних ліній;

(4)тривалість життя in vitro, виходячи з рівня подвоєння популяції для диплоїяних клітинних ліній.

Стабільність клітинних субстратів. Слід продемонструвати відповідну життєздатність клітинних ліній у передбачуваних умовах зберігання. Для даного продукту, що отримується на клітинній лінії, необхідно показати відтворюваність виробництва як в початкових рівнях пасажів, так і в кінці зазначеної тривалості життя клітин.

!+«>

ДЛЯ КЛІТИННИХ ЛІНІЙ, одержаних із комах, проводять випробування на суттєві видоспецифічні віруси клітин комах та на арбовіруси (arthropod-borne virus). Панель випробовуваних вірусів вибирають, виходячи з сучасних наукових даних.

Клітинні лінії, в яких виявлена присутність здатних до реплікації ретровірусів, не можуть бути використані для виробництва вакцин.

Канцерогенаість. У виробництві препаратів живих вакцин не можуть використовуватися клітинні лінії, які можуть бути канцерогенними на будь-якому рівні подвоєння популяції. Якщо для виробництва деяких типів вакцин використовують канцерогенні клітини, слід валідувати процеси очищення і показати , що залишковий вміст ДНК субстратних клітин знижений до менше 10 нг на одну дозу вакцини для людини, якщо немає інших зазначень, і що вміст білків субстратних клітин зменшений до прийнятного рівня.

Якщо відомо, що клітинна лінія має канцерогенну активність, її подальше тестування не проводять. Якщо не відомо про канцерогенну активність клітинної лінії, її розглядають як канцерогенну або тестують на канцерогенність in vivo з використанням одного з наведених нижче методів або in vitro, якщо необхідна додаткова інформація. Випробування проводять, використовуючи клітини на рівні або вище максимального рівня подвоєння популяції, використаного при виробництві вакцин.

MRC-5, WI-3& і FRhL-2 клітинні лінії визнані неканцерогенними і можуть не піддаватися подальшим дослідженням.

Характеристика хромосом. Слід підтвердити, що диплоїдні клітинні лінії диплощні. Якщо видалення інтактних клітин у процесі обробки після збору не валідовано, слід провести всебічний аналіз каріотипу диплоїдних клітинних ліній. Досліджують зразки чотирьох рівномірних інтервалів життєвого відрізка пасажів клітинних ліній. Досліджують не менше 200 клітин у метафазі для точного підрахунку хромосом і для виявлення частоти гіпер-, гіпо- і поліплоїдії, розривів і структурних аномалій.

MRC-5, WI-38 і FRhL-2 клітинні лінії добре охарактеризовані та визнані диплоїдними; якщо вони генетично не модифіковані, не вимагається подальших досліджень.

МЕТОДИ ВИПРОБУВАНЬ КЛІТИННИХ ЛІНІЙ

Морфологія. Адекватно описують і документують морфологію клітин.

Ідентифікація. Достовірність клітин можна встановити аналізом «відбитків пальців» нуклеїнових кислот і вибором відповідних характеристик, наведених нижче:

182 ДЕРЖАВНА ФАРМАКОПЕЯ \ КРАЇНИ 1.4

5.2.Загальні тексти на біологічні продукти

(1)біохімічні характеристики (ізоферментний аналіз);

(2)імунологічні характеристики (гістосумісність антигенів);

(3)цитогенетичні маркери.

Контамінуючі клітини. Аналіз «відбитків пальців» нуклеїнових кислот, проведений при ідентифікації, також може служити для демонстрації відсутності контамінуючих клітин.

Відсутність бактерій та грибів. Головний і кожен робочий банки клітин мають витримувати випробування на стерильність (2.6.1) із використанням 10 мл надосадової рідини клітинних культур для кожного середовища. Випробування проводять із використанням 1 % контейнерів, але не менше двох контейнерів.

Мікоплазми (2.6.1). Головний банк і кожен робочий банки клітин мають витримувати випробування на мікоплазми. Випробування проводять, використовуючи один або більше контейнерів.

Спіроплазми (клітинні лінії комах). Головний і кожен робочий банки клітин комах мають бути вільні від спіроплазм, що підтверджують проведенням затверджених компетентним уповноваженим органом валідованих методів.

Електронна мікроскопія (клітинні лінії комах). Головний банк клітин електронним мікроскопом досліджують на наявність випадкових агентів. Клітинні лінії витримують при регулярно використовуваній при виробництві температурі і беруть клітини на рівні або вище рівня подвоєння популяції. Крім того, клітинні лінії витримують при температурі вище й нижче регулярно використовуваної при виробництві і також можуть бути піддані таким діям, як хімічні стрес-фактори. З компетентним уповноваженим органом погоджують використані температури культивування та обробки, а також кількість відібраних клітин для досліджень.

Випробування на сторонні агенти в культурі клітин. Клітини мають витримувати випробування на гемоадсорбуючі віруси та іїшіі сторонні інфекції, наведені в статті (2.6.16) в розділі «Виробнича культура клітин: контрольні клітини». Якщо клітини одержані від мавп, їх також інокулюють у кролячу ниркову клітинну культуру для випробування на вірус герпесу В (вірус герпесу 1 cercopiihecine).

Сумісне культивування. Для клітинних ліній ссавців і птахів сумісно культивують з іншими клітинними системами (включаючи клітини людини та мавп) нарізно інтактні й/або зруйновані клітини. Для клітинних ліній комах екстракти зруйнованих клітин інкубують з іншими клітинними системами, включаючи клітини людини та мавп, та принаймні однією клітинною лінією, що відрізняється від використовуваної при виробництві, придатна для ві-

182

S.2. Загальні тексти ка біологічні продукти

русів комах і дозволяє виявити людські арбовіруси (наприклад. ВНК-21). Проводять випробування для визначення можливих морфологічних змін. Досліджують клітинні культуральні рідини для виявлення вірусів гемаглютинації або клітини для виявлення гемоадсорбуючих вірусів. Для виявлення арбовірусів у клітинах комах не проводять випробування на віруси гемаглютинації. Клітини витримують випробування, якшо не виявлені будь-які сторонні агенти.

Ретровіруск. Досліджують на наявність ретровірусів, використовуючи:

(1)кількісне визначення за допомогою посиленої продуктом зворотньої транскриптази (PERT)

(2.6.21), проведене нанадосадовій рідині банку клітин на рівні або віше рівня максимального подвоєння популяції, використовуваного при виробництві;

(2) трансмісійну електронну мікроскопію.

Якшо тести (1) і (2) дають позитивні результати, проводять тест (3):

(3)визначення інфекційності проводять на людських клітинах з кінцевою точкою PERT-виз- наченням на нацосадовій рідині.

Випробування на тваринах. Лабораторним тваринам внутрішньом'язово (або підшкірно новонародженим мишам) вводять життєздатні клітини у концентрації 107, розділені нарівно між тваринами кожної групи:

(1)2 приплоди новонароджених (не пізніше ніж через 24 год після народження) мишей, але не менше 10 особин;

(2)10 дорослих мишей.

Для виявлення лімфоцитних хоріоменінгітних вірусів 10 дорослим мишам інтрацеребрально вводять життєздатні клітини в концентрації 106.

Тварин спостерігають протягом не менше 4 тижнів. Досліджують хворих або виявляючих аномальні ознаки тварин для виявлення причини захворювання. Клітини витримують випробування, якщо не виявлена присутність будь-яких сторонніх агентів. Результати випробування вважаються вірогідними, якщо не менше 80 % тварин кожної групи залишаються здоровими і виживають до кінця періоду спостереження.

Випробування на яйцях. У алантоїсну порожнину 9— 11 -денних ембріонів 10 SPF-курячих яєць (5.2.2) і в жовтковий мішечок 5—6-денних ембріонів 10 SPFкурячих яєиь вводять по 106 життєздатних клітин. Інкубують протягом не менше 5 діб. Алантоїсну рідину тестують на наявність гемаглютинінів, використовуючи еритроцити ссавців і птахів; випробування проводять при температурі (5±3) °С і 20-25 °С і реєструють результат через 30-60 хв. Клітини витримують випробування, якщо не підтверджена наявність сторонніх агентів. Результати випробування вважаються вірогідними, якщо не менше S0 % ембріонів залишаються здоровими та виживають до кінця періоду спостереження.

Специфічні тести на можливі контамінанти залежно від джерела клітин. Проводять випробування на специфічні патогени, використовуючи метод ампліфікації нуклеїнових кислот (МАНК, NA1)(2.6.2J) з попередньою або без ампліфікацією в клітинах. Альтернативно можуть застосовуватися відповідні серологічні методи, такі як імуноферментний аналіз, тести з нейтралізації сироваткою й утворення антитіл у відповідних дозволених тваринах. Для клітинних ліній, одержаних від гризунів, використовують або тест утворення антитіл у мишей, щурів або хом'яків, або МАНК (2.6.21) для виявлення видоспецифічних вірусів. Слід урахувати похождення та історію культивування клітинних ліній. Розробляють випробування, що дозволяють виявляти потенційні забруднення, особливо ті, які відомі як латентні інфекції для вихідних видів, наприклад вірус 40 мавп у резус-позитивних мавп або Floch house virus клітин комах.

Випробування на канцерогенність in vivo. Випробування полягає у проведенні порівняння між клітинною лінією й відповідними позитивними клітинами порівняння (наприклад, із клітинами HeLa або Нер2с).

Підхожими для таких випробувань тваринами є:

(1)атимічні миші (Nu/Nu генотип);

(2)новонароджені миші, щури або хом'яки, що пройшли обробку антитимоцитною сироваткою або глобуліном;

(3)тимусеетомировані миші, опромінені й відновлені (Т, В+) кістковим мозком здорових мишей.

Яка б не вибиралася група тварин, у кожну окрему групу з 10 тварин вводять клітинні лінії і клітини порівняння. В обох випадках інокулят для кожної тварини складає 107 суспендованих клітин в об'ємі 0.2 мл, який вводять або внутрішньом'язовим, або підшкірним способом. Новонародженим тваринам вводять по 0.1 мл антитимоцитної сироватки або глобуліна на 0, 2, 7 і 14 добу після народження. За ефективну сироватку або глобулін вважається препарат, який пригнічує імунні механізми зростаючих тварин так, що подальша інокуляція 107 позитивних клітин порівняння регулярно викликає утворення пухлин і метастазів. Важко уражених тварин; у яких спостерігається явно прогресивне пухлинне зростання, усипляють до завершення випробування, уникаючи непотрібного страждання тварин.

Укінці періоду спостереження всіх тварин, включно з групою (групами) порівняння, усипляють та досліджують на макро- і мікроскопічний доказ проліферації інокульованих клітин у ділянці ін'єкції і в інших органах (наприклад, лімфатичні вузли, легені, і-шркл і печінка).

Увсіх випробуваннях тварн а спостерігають ". а оглядають через ПСЗІі і інтервал і: для виявлення утворень

у ділянці ін'єкції. Будь-які \т йоре вимірюють в 2 перпендикулярних напрямах, постійно записуючи вимірювання для виявлення прогресуючого росту

утворень. Тварин, в ЯКІїх у період спостереження було виявлено утворення, т о регресує, усипляють до моменту повного зникнення вузлика та проводять гістологічне дослідження. Тварин із прогресуючим ростом вузликів спостерігають протягом 1-2 тижнів. Половину тварин без утворень спостерігають протягом 3 тижнів, останніх — протягом 12 тижнів до моменту евтаназії та гістологічних досліджень. Проводять аутопсію кожної тварини та досліджують макроскопічні докази утворення пухлини в ділянці ін'єкції та інших органах, таких як лімфатичні вузли, легені, мозок, селезінка, нирки і печінка. Гістологічному дослідженню піддають усі пухлиноподібні ураження і ділянку ін'єкції. Більш того, оскільки деякі клітинні лінії можуть привести до появи метастазів без доказів місцевого пухлинного росту, гістологічному дослідженню піддають будьякі місцеві лімфатичні вузлики, що виявляються, і легені всіх тварин.

Результати випробування вважаются вірогідними, якщо не менше як у 9 з 10 тварин, яким вводили позитивні клітини порівняння, виявляється прогресуюче зростання пухлини.

Випробування на канцерогеюгість in vitro. Можуть використовуватися такі системи випробування:

(1)утворення колоній у м'яких агарових гелях;

(2)отримання інвазивного клітинного росту після інокуляції культури в органи;

(3)дослідження трансформуючої активності, використовуючи, наприклад, ЗТЗ систему аналізу для активних онкогенів.

5.2.4.КУЛЬТУРИ КЛІТИН ДЛЯ ВИРОБНИЦТВА ВАКЦИН ДЛЯ ЗАСТОСУВАННЯ У ВЕТЕРИНАРІЇ

Культури клітин для виробництва вакцин для застосування у ветеринарії мають витримувати вимоги цієї статті. Усім або деяким вимогам цієї статті в необхідних випадках також мають відповідати культури клітин, використовувані для випробування вакцин для застосування у ветеринарії.

Більшість вірусів ссавців можуть розмножуватися у клітиннихлініях, і повторне використання первинних клітин не допускається.

Постійно інфіковані клітини, використовувані для виробництва вакцин для застосування у ветеринарії, мають витримувати вимоги, наведені нижче. Слід показати, що клітини інфіковані лише зазначеним агентом.

к л і т и н н і ліні!

Звичайно із клітинними лініями поводяться відповідно до системи посівної серії. Головним посівним клітинам надають спеціальний ідентифікаційний код. Головні посівні клітини зберігають у вигляді аліквот при температурі -70ЙСабо нижче. Звичайно

S.2. Загальні тексти ка біологічні продукти

у виробництві вакцин використовують клітини, що пройшли не більше 20 пасажів від головної посівної серії. Якщо використовують суспензію культур, збільшення кількості клітин, приблизно еквівалентне подвоєнню трьох поколінь, вважається еквівалентним одному пасажу. Якщо у виробництві мають використовуватися клітини після 20 рівня пасажу, шляхом валідації або іншими випробуваннями слід показати, що виробнича культура клітин по суті аналогічна з головними посівними клітинами в плані біологічних характеристик і чистоти, застосування таких клітин негативно не впливає на виробництво вакцин.

Має бути відома історія клітинної лінії та детально задокументована (наприклад, походження, кількість пасажів і використовувані в розмноженні живильні середовища, умови зберігання).

Записують способ зберігання і використання клітин, включаючи подробиці: як гарантувати неперевищення дозволеної кількості пасажів у виробництві. Для аналітичних цілей зберігають необхідну кількість головних і робочих посівних клітин.

Випробування, наведені нижче, проводять (як зазначено в Табл. 5.2.4-1) на культурі головних посівних клітин, робочих посівних клітин або на культурі клітин, одержаній із робочих посівних клітин на найвищому рівні пасажу, використаному у виробництві, яка отримана з підтвердженого гомогенного репрезентативного зразка.

Характеристики культур. Описують зовнішній вигляд клітинного моношару до і після гістологічного забарвлення. Наводять інформацію, якщо можливо, числові показники, зокрема швидкості та ступеня зростання. Також зазначають наявність або відсутність контактних інгібіторів, багатоядерних клітин і будь-яких інших аномалій.

Каріотип. Проводять дослідження хромосом не менше 50 клітин на стадії мітозу з головних посівних клітин на рівні пасажу щонайменше не нижчому за той, що використовується у виробництві. Будьякий хромосомний маркер, присутній в головних посівних клітинах, також має виявлятися в клітинах вищих пасажів, і модальна кількість хромосом у цих клітинах може перевищувати їхню кількість у головних посівних клітинах не більше як на 15 %. Каріотипи мають бути ідентичними. Якщо модальна кількість перевищує зазначену межу або в робочих посівних клітинах на найвищому рівні пасажу, використовуваному у виробництві, не виявляються хромосомні маркери або відрізняється каріотип, ці клітинні лінії не мають використовуватися у виробництві.

Ідентифікація видів. Валідованим методом слід показати, що головні посівні клітини та клітини робочих посівних клітин на найвищому рівні виробничого пасажу відповідають зазначеним вихідним видам. Якщо при проведенні флуоресцентного випробу-

вання із використанням піл повідної вихідному виду клітин сироватки показано, т о всі випробовувані клітини - флуоресцентні, немає необхідності проводити інші випробування з реактивами, здатними визначити забруднення клітинами інших видів.

Таблиця 5.2.4.-!

Стадія ку льтури клітин, на якій сіід проводити випробування

Відсутність бактерій та грибів. Клітини мають витримувати випробування на стерильність (2.6.1). У випробовуваному зразку кількість клітин має бути не менше кількості, шо створює моношар із плошею 70 см2, або для вирощених у суспензіях клітин — еквівалентна цій кількості клітин. Перед проведенням випробування клітини протягом не менше 15 діб культивують без антибіотиків.

Мікоплазми (2.6.1). Клітини мають витримувати випробування на мікоплазми. Перед проведенням випробування клітини культивують без антибіотиків не менше 15 діб.

Відсутність контамінуючих вірусів. Клітини не мають бути забруднені вірусами; проводять підхожі чутливі випробування, із зазначеними нижче включно.

Випробовувані моношари повинні мати площу не менше 70 см2, мають бути приготовані та культивовані з використанням тих самих середовиш і добавок, вирощені у тих самих умовах, що і клітини, які використовуються у виробництві вакцин. Клітини культивують загалом не менше 28 діб. Субкультуру готують 7-добовими інтервалами, поки клітини виживають протягом цього терміну, тоді субкультуру готують на найостанніший можливий день. Для кінцевої субкультури готують необхідну кількість клітин у підхожих контейнерах для проведення зазначених нижче випробувань.

Моношари протягом усього періоду інкубації регулярно обстежують для виявлення можливих цитопатичних ефектів і у кінці періоду спостереження на цнтопатичні ефекти імунофлуоресценцією або іншими підхожими випробуваннями, зазначеними нижче, досліджуют ь гемоадсорбуючі віруси га інші специфічні віруси.

Виявлення цитопатичних вірусів. I Iідхожим ми гологїчннм барвником забарвлюють два моношари, площа кожною з яких не метне 6см\ Усю плоту кожного забарвленого монопіару досліджую! і. на будь-які включення, аномальну кількість великих клітин або будь-які інші ураження, що свідчать про клітинні аномалії, властиві забрудненням.

Виявлення гемоадсорбумчих вірусів. Моношари загальною плошею не менше 70 см2 кілька разів промивають підхожим буферним розчином і додають достатнії! об'єм суспен зії підхожих еритроцитів для рівномірного покриття площі моношару. Після різного інкубаційного періоду клітини досліджують на наявність гемоадсорбції.

Виявлення специфічних вірусів. Проводять випробування на наявність специфічних контамінантів для вихідних видів клітинних ліній і видів, для яких призначений продукт.

На підхожих підкладках готують необхідну кількість клітин для проведення випробувань на специфічні агенти. У кожне випробування включають підхожі позитивні контролі. Клітини піддають підхожим випробуванням, наприклад використовуючи кон'юговані з флуоресцеїном антитіла або аналогічні реактиви.

Випробування в інших культурах клітин. Необхідні моношари, загальна площа яких не менше 140 см2. Клітини не менше трьох разів заморожують і розморожують, потім центрифугують для видалення залишків клітин. Аліквоти інокулюють у будь-який час у наступні клітини для отримання більше 70 % злиття:

—первинні клітини вихідних видів;

—клітини, чутливі до вірусів, патогенних для видів, для яких призначена вакцина;

—клітини, чутливі до пестивірусів.

Інокульовані клітини культивують протягом не менше 7 діб, потім готують екстракти, як наведено вище, заморожуванням-розморожуванням й інокулюють у свіжі культури клітин цього самого виду для проведення наведеного нижче випробування. Клітини інкубують ще не менше 7 діб. Культури регулярно досліджують на наявність будь-яких цитопатичних змін, характерних для живих організмів.

У кінці цього 14-добового періоду інокульовані клітини піддають перевіркам на:

—відсутність цитопатичних і гемоадсорбуючих організмів, використовуючи методи, зазначені вище у відповідних розділах;

—відсутність пестивірусів та інших специфічних контамінантів імунофлуоресценцією або іншими валідованими методами, як зазначено вище в розділі «Виявлення специфічних вірусів».

5.2. Загальні тексти на біологічні продукт»

Виявлення нитрпатичмих вірусів. Підхожим цитологічним барвником забарвлюють два моношари. площа кожного з яких не менше 6 см\ Уск> площу кожного забарвленого моношзру досліджують на будь-які включення, аномальну кількість великих клітин або будь-які інші ураження, що свідчать про клітинні аномалії, аластиві забрудненням.

Виявлення гємоадсорбуточих вірусів. Моношари загальною площею не менше 70 см2 кілька разів промивають підхожим буферним розчином і додають достатній об'єм суспензії підхожих еритроцитів для рівномірного покриття площі моношару. Після різного інкубаційного періоду клітини досліджують на наявність гемоадсорбції.

Виявлення специфічних вірусів. Проводять випробування на наявність специфічних контамінантів для вихідних видів клітинних ліній і видів, для яких призначений продукт.

На підхожих підкладках готують необхідну кількість клітин для проведення випробувань на специфічні агенти. У кожне випробування включають підхожі позитивні контролі. Клітини піддають підхожим випробуванням, наприклад використовуючи кон'юговані з флуоресцеїном антитіла або аналогічні реактиви.

Випробування в інших культурах клітин. Необхідні моношари, загальна площа яких не менше 140 см2. Клітини не менше трьох разів заморожують і розморожують, потім центрифугують для видалення залишків клітин. Аліквоти інокулюють у будь-який час у наступні клітини для отримання 70 % злиття:

—первинні клітини вихідних видів;

—клітини, чутливі до вірусів, патогенних для видів, для яких призначена вакцина;

—клітини, чутливі до пестивірусів.

Інокульовані клітини культивують протягом не менше 7діб, потім, як наведено вище, готують екстракти заморожуванням-розморожуванням й інокулюють у свіжі культури клітин цього самого виду для проведення наведеного нижче випробування. Клітини інкубують ще не менше 7 діб. Культури регулярно досліджують на наявність будь-яких цитопатичних змін, характерних для живих організмів.

У кінці цього 14-добового періоду інокульовані клітини піддають перевіркам на:

—відсутність цитопатичних і гемоадсорбуючих організмів, використовуючи методи, зазначені вище у відповідних розділах;

—відсутність пестивірусів і інших специфічних контамінантів імунофлуоресценцією або іншими валідованими методами, як зазначено вище в розділі «Виявлення специфічних вірусів».

5.2.S. СУБСТАНЦІЇ ТВАРИННОГО ПОХОДЖЕННЯ ДЛЯ ВИРОБНИЦТВА ІМУНОЛОГІЧНИХ ЛІКАРСЬКИХ ЗАСОБІВ ДЛЯ ЗАСТОСУВАННЯ

УВЕТЕРИНАРІЇ

1.СФЕРА ЗАСТОСУВАННЯ

Субстанції тваринного походження (наприклад, сироватка, трипсин і альбумін сироватковий) можуть бути використані в процесі виробництва імунологічних лікарських засобів для застосування у ветеринарії.

Вимоги, наведені в цій статті, стосуються субстанцій тваринного походження, виготовлених партією для застосування на всіх стадіях виробництва, наприклад у середовищі для культивування або як додані інгредієнти продуктів у процесі змішування. Ці вимоги не призначені для контролю посівних серій або субстратів тваринного походження, вимоги до яких наведені в інших статтях, наприклад «Вакцини для застосування у ветеринарії» і «5.2.4. Культури клітин для виробництва вакцин для застосування у ветеринарії».

2. ЗАГАЛЬНІ ПОЛОЖЕННЯ ТА ВИМОГИ

Субстанції тваринного походження мають витримувати вимоги Фармакопеї (якщо є відповідні статті).

Слід обмежити застосування субстанцій тваринного походження з міркувань безпеки — через наявність у них можливих патогенів, а також з епідеміологічних і/або регуляторних вимог, пов'язаних із присутністю в них специфічних антигенів (або живих, або інактивованих).

Загальні положення:

—рекомендується, де можливо, мінімізувати застосування субстанцій тваринного походження:

—якщо немає інших зазначень, застосування субстанцій тваринного походження як компонентів лікарських засобів не допускається, окрім тих випадків, коли такі субстанції піддаються валідованим процесам обробки з інактивації живих сторонніх агентів.

Загальні вимоги:

—будь-яка партія субстанції (після інактивації і/або обробки, де застосовно) при виявленні в ній або при ймовірності вмісту будь-яких живих сторонніх агентів має бути знищена або використана лише у виняткових І обгрунтованих випадках: для застосування такої субстанції слід провести подальшу обробку, яка забезпечить видалення і/або інактивацію сторонніх агентів, і потім слід підтвердити задовільність проведених процедур;

—будь-яка партія субстанції, яка після оцінки ризиків визнана здатною спричпнятн, імунну від-

повідь у видах-мішенях через забруднення інактивованими сторонніми агентами, не має бути використана у виробництві даного специфічного ветеринарного імунологічного препарату.

3. УПРАВЛІННЯ РИЗИКАМИ

Жоден захід або комбінація заходів не може гарантувати безпеку використання субстанцій тваринного походження, але вони можуть зменшити ризик їх використання. Отже, виробникам ветеринарних імунологічних препаратів необхідно врахувати це при виборі для виробництва субстанцій тваринного походження і проводити оцінку ризику з урахуванням їх джерела і використаних технологічних стадій.

Крім того, слід використовувати процедури з управління ризиками. Будь-який залишковий ризик має бути оцінений з погляду потенційної користі від застосування субстанції у виробництві ветеринарних імунологічних препаратів.

3-1. ОЦІНКА РИЗИКУ

При оцінці ризику слід взяти до уваги захворювання тварин, що спостерігалися в країнах-джерелах використовуваних як субстанції тварин, потенційні інфекційні захворювання вихідних видів і можливу інфекційність у вихідних тканинах і органах. Як частину оцінки ризику з цієї інформації можна скласти перелік сторонніх агентів, які можуть бути присутні в субстанції.

Слід оцінити ризик забруднення субстанцій і згодом ветеринарних імунологічних препаратів живими сторонніми агентами. Слід також врахувати ризик забруднення субстанції та згодом ветеринарних імунологічних препаратів інактивованими сторонніми агентами. Це може бути в тому разі, якщо, наприклад, забруднення належить до тих, від яких Європа офіційно вважається вільною, і/або є об'єктом програми контролю специфічного захворювання у європейських країнах і де наявність інактивованого агента може призвести до стимуляції явної імунної відповіді у тварин-реципієнтів.

Як частину оцінки ризику слід взяти до уваги наявність у субстанції антитіл, здатних вплинути на визначення і/або інактивацію живих сторонніх агентів.

Повторна оцінка ризику, повторне визначення і перегляд наведених нижче кроків з управління ризиками можуть знадобитися для врахування змін:

— у разі появи в країні або країнах, звідки одержані використані як джерело субстанцій тварини, захворювань, включаючи захворювання, що тільки з'явилися (нові патогени);

— у разі захворювань і заходів із контролю захворювань, застосовних у європейських країнах, в

5.2. Загальні тексти на біологічні продукт»

яких використовується вироблений із субстанції ветеринарний імунологічний препарат.

3-2. КОНТРОЛЬ РИЗИКІВ

Для кожного потенційного стороннього агента, ідентифікованого при оцінці ризику, з урахуванням передбачуваного застосування субстанції слід проконтролювати ризик, використовуючи один або комбінацію наведених нижче заходів:

—установлювати обмеження щодо джерела матеріалу та проводити аудит;

—використовувати валідовану процедуру інактивації;

—підтверджувати здатність технологічного процесу видаляти або інактивувати сторонні агенти;

—проводити випробування на сторонні агенти.

4.КОНТРОЛЬНІ ЗАХОДИ

4-1. ДЖЕРЕЛА

Усі субстанції тваринного походження (включаючи суміші), використовувані у виробництві ветеринарних імунологічних препаратів, слід отримувати з відомих і документованих джерел (включаючи вихідні види та країни, тваринну сировину та тканини).

4-2. ПРИГОТУВАННЯ

Субстанції тваринного походження готують із гомогенної маси з наданим номером партії. Партія може містити субстанції, отримані з будь-якої кількості тварин, яку було чітко визначено, був наданий номер, і до неї вже нічого не додають або не забруднюють іншим шляхом.

Використовуваний спосіб виробництва субстанцій тваринного походження з сировини має сприяти видаленню і/або інактивації сторонніх агентів (див. розділ 4.3).

4-3. ІНАКТИВАЦІЯ I/ABO ІНШІ СТАДІЇ ОБРОБКИ З ВИДАЛЕННЯ СТОРОННІХ АГЕНТІВ

Процедура інактивації і/або інші вибрані стадії обробки мають бути валідовані, і слід показати, що вони здатні в даній субстанції зменшити титр наведених нижче потенційних сторонніх агентів на не менше 10°. Якщо таке зменшення титру неможливо продемонструвати експериментально, слід установити максимальний титр переробки стороннього агента з урахуванням зниження титру завдяки інактивації/стадії обробки та включаючи нижню межу безпеки — 100; для кожної партії субстанцій необхідно визначати початковий титр переробки і підтверджувати, що він не перевищує встановлену межу, доки не проведена належна, обгрунтована на вірогідних і підхожих результатах оцінка ризику, під-

для яких призначеним продукт, уводять одну дозу продукту. У випробування слід включати тварин наймолодшого рекомендованого віку і. якщо необхідно. вагітних тварин. Тварин не рідше ніж раз на день оглядають і обстежують на наявність аномальних місцевих і системних реакцій. Де застосовно, ці дослідження мають включати детальні post-mortem макроскопічні і мікроскопічні дослідження місця ін'єкції. Записують інші об'єктивні критерії, такі як температура тіла (для ссавців) і показники продуктивності. Записують температуру тіла принаймні за день до приймання продукту, під час. через 4 год і в подальші 4 доби після приймання. Тварин оглядають і обстежують до кінця періоду можливої появи очікуваних реакцій, але протягом не менше 14 діб після приймання продукту.

Вивчення дії на репродуктивність. Як частину досліджень слід розглянути дію продукту на репродуктивність, якщо є дані про можливі фактори ризику, що залежать від сировини. Якщо зазначено в окремій статті, для кожного шляху введення вивчають дію продукту на репродуктивність самців і невагітних/вагітних самиць, шкідливі впливи на вагітність, включаючи тератогенні й абортивні ефекти.

Безпека приймання дози, що викликає передозування. Тваринам-мішеням категорій і видів, імовірно найбільш чутливих до продукту (наприклад, тварини найменшого рекомендованого віку або вагітні тварини, якщо можливо), кожним рекомендованим шляхом уводять дозу, що викликає передозування. Звичайно за дозу, що викликає передозування, вважається 10 доз живих вакцин або 2 дози інактивованого продукту або імуносироватки. Для випробування ліофілізованих живих вакцин 10 доз розчиняють у відповідному об'ємі розчинника. Тварин не рідше як раз на день оглядають і обстежують на наявність аномальних місцевих і системних реакцій. Записують інші об'єктивні критерії, такі як температура тіла (для ссавців) і показники продуктивності. Тварин оглядають і обстежують протягом не менше 14 діб після передозування. Якщо вакцини призначені для застосування вагітним тваринам, випробування проводять у період, коли не протипоказане застосування, а спостереження продовжують принаймні до пологів. Тварин обстежують і записують ефекти на вагітність і потомство. У виняткових випадках, особливо для імуносироваток, якщо є докази неприйнятності передозування, випробування з передозування не проводять і чіткі застереження про потенційні небезпеки включають в інструкцію із застосування продукту.

Безпека повторного приймання однієї дози. Повторне приймання однієї дози може бути потрібним для виявлення несприятливих ефектів, що спричиняються таким застосуванням. Ці випробування дуже важливі, якшо продукт, особливо імуносироватки, може застосовуватися в різних випадках протягом відносно короткого проміжку часу. Ці випробуван-

5.2. Загальні тексти на біологічні продукт»

ня проводять на найбільш чутливих категоріях видів -мішеней, використовуючи кожний рекомендований шлях введення. Кількість приймань має бути не менше максимальної кількості, шо рекомендується; для вакцин слід враховувати кількість приймань для первинної вакцинації і першу ревакцинацію; для імуносироваток слід враховувати кількість приймань, потрібну для лікування. Інтервал між прийманнями має бути підхожим (наприклад, період ризику або термін, необхідний для лікування) і відповідати рекомендаціям щодо застосування. Але для вакцин для зручності у випробуваннях допускається використання коротших інтервалів, ніж рекомендується для застосування, але не менше 14 діб між прийманнями для прояву будь-яких реакцій гіперчутливості. Проте для імуносироваток приймання слід проводити згідно з рекомендованим графіком. Тварин не рідше ніж раз на день оглядають і обстежують на наявність аномальних місцевих і системних реакцій протягом не менше 14 діб після останнього приймання. Записують інші об'єктивні критерії, такі як температура тіла (для ссавців) і показники продуктивності.

Залишкові кількості. Для живих вакцин для профілактики добре відомих зоонозних захворювань може знадобитися визначення залишкових організмів вакцин у ділянці ін'єкції разом із дослідженнями з дисемінації, наведеними нижче.

Несприятливі ефекти на Імунологічні функції. Якщо застосування продукту може несприятливо вплинути на імунні реакції тварин або їхнього потомства, слід провести відповідні випробування імунологічних функцій.

Несприятливі ефекти від взаємодій. Слід провести дослідження для підтвердження безпеки продукту від несприятливого ефекту інших речовин, які рекомендуються до застосування одночасно з досліджуваним, або випробовуваний препарат застосовується як частина графіка приймання ряду продуктів протягом короткого проміжку часу.

Спеціальні вимогидля живих вакцин. Для живих вакцин також слід провести наведені нижче лабораторні випробування:

а) Розповсюдження штамів вакцин. Розповсюдження штамів вакцин від вакцинованих тварин-мішеней до невакцинованих досліджують, використовуючи рекомендований шлях введення, який найімовірніше спричиняє розповсюдження. Більш того, може бути необхідне вивчення безпеки розповсюдження живих штамів вакцин видам немішеням, які можуть бути надзвичайно сприйнятливими до цих штамів. Слід провести оцінку кількості життєздатних пасажів від тварини до тварини в нормаїьних умовах, а також оцінку можливих наслідків.

б) Дисемінація у вакцинованих тваринах. Кат, сечу, молоко, яйця, орадьні, назальні та інші секреції слід