Практикум по общей хирургии

б

а

в

Рис. 2. Последовательность высушивания кожи рук:

а - кистей, б - левого предплечья, в - перехватывание тампона для высушивания правого предплечья: слева - неправильно, справа - правильно

По способу Альфельда кожа предплечий и кистей моется под краном теплой водой, двумя стерильными щетками с мылом, по 5 мин. каждой. После этого руки высушивают стерильной салфеткой, и кожа кистей в течение 5 мин. обрабатывается 960 спиртом.

После обработки кожи кистей спиртом при обоих способах кожу кончиков пальцев можно обработать раствором йода 5%.

20

В экстренных случаях обработка кожи рук может быть произведена одним из следующих способов:

1)способ Хайснера - кожа рук обрабатывается без предварительного мытья водой с мылом только 5% раствором йода в бензине;

2)способ Бруна - руки моют 960 спиртом в течение 10 мин. Обязательным условием при этом способе обработки кожи является отсутствие влаги на коже рук – кожа должна быть сухой;

3)способ Заблудовского - руки моют 5% раствором танина в спирте (800-960) в течение 2-5 мин. без предварительного мытья водой.

Общим недостатком этих методов подготовки рук к манипуляциям считается то, что при такой обработке кожа теряет свою эластичность, а это приводит к ее травматизации и развитию гнойничковых поражений.

Все описанные способы обработки рук не обеспечивают полной, а главное длительной стерильности их кожи. Поэтому после того, как произведена обработка кожи рук растворами антисептиков, хирург надевает стерильные резиновые перчатки. Это позволяет добиться полной стерильности рук на протяжении всего времени операции при условии сохранения целостности перчаток. В случае повреждения перчаток они должны быть заменены другими. Проверка целостности перчаток перед стерилизацией определяется надуванием их воздухом.

В настоящее время во время операции используются одноразовые резиновые перчатки, которые поступают в медицинские учреждения в специальных упаковках, стерилизованные в заводских условиях.

После надевания перчаток их тщательно протирают марлевым шариком, смоченным 960 спиртом для удаления остатков талька с наружной поверхности.

Стерилизация резиновых перчаток в условиях стационара может быть проведена следующими методами:

1) кипячением в воде (без соды) в течение 5 мин.;

21

2)автоклавированием в течение 20 мин. (перед помещением перчаток в автоклав они тщательно посыпаются тальком снаружи и внутри и каждая отдельно заворачивается в марлевую салфетку);

3)погружением в 2% раствор хлорамина на 10 мин или раствор сулемы 1:1000 на 40-60 мин.

Большое значение для профилактики хирургической инфекции имеет регулярный контроль стерильности кожи рук участников операции. Для этого необходимо один раз в 15-20 дней производить исследование посевов с рук хирургов и операционных сестер перед началом операции. Посев с рук должен браться без предварительного оповещения об этом хирургической бригады. Результаты посева доводятся до сведения всего медицинского персонала хирургической клиники.

Стерилизация хирургических инструментов и приборов

производится после предварительной подготовки, имеющей целью их тщательную механическую очистку. Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты и приборы тщательно моют в проточной воде щетками в течение 5 мин., а затем на 15-20 мин. их помещают в моющий раствор, подогретый до 500С.

В качестве моющих раствором могут быть использова ны: раствор А - пергидроля 20 г, стирального порошка («Новость», «Астра» и др.) 5 г, воды 975 г; раствор Б - 200 мл 2,5% раствора перекиси водорода, 5 г стирального порошка «Новость», 795 г воды.

После замачивания инструменты моют в тех же растворах щетками в течение 5 мин., а затем прополаскивают в дистиллированной воде в течение 1 мин. и помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 850 С для просушивания.

Инструменты, загрязненные гноем или кишечной палочкой после механической очистки помещают на 30 мин. в 0,1% раствор диоцида или 5% раствор лизола, после чего замачивают в одном из моющих растворах.

Инструменты, загрязненные анаэробной флорой, зама-

22

чивают в растворе, состоящем из 6% раствора перекиси водорода и 0,5% раствора любого стирального порошка в течение 1 ч, а затем кипятят 90 мин. После этого их подвергают стерилизации, как неинфицированный инструмент, а через 1 сут. (время, необходимое для прорастания спор) проводят повторную стерилизацию - дробная стерилизация.

Для контроля полноты удаления крови с инструментов, прошедших предстерилизационную подготовку, используют бензидиновую пробу - на инструмент наносят 3-4 капли 1% раствора бензидина и перекиси водорода. Появление си- не-зеленой окраски указывает на наличие на инструменте следов крови. Это означает, инструмент следует подвергнуть повторной предстерилизационной обработке.

Выбор способа стерилизации хирургических инструментов и приборов зависит от материала, из которого они изготовлены, и их устройства: металлические инструменты, стеклянные приборы и резиновые трубки стерилизуются с помощью высоких температур, губительно действующих на белковую молекулу микробной клетки. Для этого используют кипящую воду (1000С) - метод кипячения; сухой жар (180-2000С) - сухожаровой метод; пар (100-1400С) - паровая стерилизация.

Стерилизация кипячением производится в переносных и стационарных стерилизаторах, представляющих собой металлические коробки, плотно закрывающиеся крышкой и имеющие внутри металлическую сетку (рис. 3, а).

Техника стерилизации кипячением. В кипятильник наливают воду и добавляют гидрокарбонат натрия для получения 2% раствора. Жидкость доводят до кипения, после чего в нее опускают уложенные на сетке инструменты (при этом кипение жидкости прекращается). После того как жидкость вновь начнет кипеть, стерилизатор плотно закрывают крышкой и начинают отсчет времени стерилизации.

Сроки стерилизации кипячением (в мин.) следующие: металлические инструменты - 20, стеклянные приборы - 20, резиновые предметы - 10 мин. Режущие инструменты лучше

23

1

2

3

б

Рис. 3. Стерилизаторы:

а - стерилизатор-кипятильник: 1 - корпус; 2 - загрузочная сетка;

3- крышка; 4 - захватывающая скоба;

б- сухожаровой шкаф

24

кипятить без добавления соды в течение 5 мин., предварительно обернув режущую часть марлей. Стеклянные приборы следует опускать в холодную воду и отсчет времени вести от момента закипания воды. По окончании срока стерилизации сетка с инструментами извлекается из стерилизатора с помощью специальных крючков-держалок, которые стерилизуются вместе с инструментами, находясь сверху, и извлекаются из стерилизатора с помощью зажима, хранящегося в растворе антисептика. Стерильные инструменты раскладываются в операционной на столе, покрытом стерильной простыней, и сверху накрываются другой стерильной простыней.

Сухожаровая стерилизация инструментов производится в специальных герметически закрывающихся шкафах (рис. 3, б), в которые инструменты укладываются на специальные противни. Температура воздуха в сухожаровой камере достигает 2000С. Длительность стерилизации 40 мин.

Паровая стерилизация осуществляется в специальных аппаратах. Для того чтобы не нарушилась стерильность инструментов при извлечении их из автоклава, они заворачиваются в простыню или помещаются в специальные биксы.

Используют два способа паровой стерилизации: стерилизацию текучим паром (1000С) и паром под давлением - автоклавирование (1200С) (рис. 4, 5).

При стерилизации текучим паром образующийся при кипении воды пар заполняет всю полость автоклава и выходит наружу через выпускной кран. Находящиеся в аппарате предметы подвергаются воздействию пара, температура которого 1000С. Длительность стерилизации 1-1,5 ч. По истечении времени стерилизации нагревание воды прекращают, выпускают остаток пара из аппарата, и извлекают из него стерилизуемые предметы.

Стерилизация текучим паром ненадежна, так как максимальная температура может быть доведена только до 1000С, что не оказывает губительного воздействия на споро-

25

Рис. 4. Автоклав

аб

Рис. 5. Схема стерилизации:

а- текучим паром; б - паром под давлением;

1- наружная стенка стерилизатора; 2 - внутренняя стенка стерилизатора; 3 - водомерное стекло; 4 - вводной кран;

5- выпускной кран; 6 - манометр; 7 - предохранительный клапан; 8 - термометр

.

26

носные бактерии (столбнячные, сибиреязвенные и пр.). Поэтому широкого распространения этот способ не получил

Более надежна стерилизация автоклавированием. Устройство автоклава для стерилизации паром под давлением отличается от конструкций стерилизатора, где происходит стерилизация текучим паром, тем, что он имеет специальный манометр, показывающий величину давления пара, и предохранительный клапан. Принцип автоклавирования заключается в том, что образующийся при кипении воды пар заполняет полость цилиндра автоклава и, не имея возможности выйти наружу, накапливается в нем. При этом по мере накопления пара в полости цилиндра повышается давление, величина которого фиксируется манометром. При давлении пара 2 атм. температура в полости цилиндра равна 1320С, что обеспечивает надежную стерилизацию всех предметов, находящихся в автоклаве. Время стерилизации 40 мин. Отсчет времени стерилизации ведется от момента, когда давление в полости автоклава достигает 1,5 атм. Предохранительный клапан отрегулирован так, что открывает выход для пара, если давление в автоклаве превышает допустимый уровень (обычно клапан удерживает давление на уровне 2 атм.). После того как процесс стерилизации закончен, прекращается нагревание воды, весь пар из автоклава выпускается через выпускной кран, а стерилизуемые предметы извлекаются.

Стерилизация оптических приборов. Предстерилизаци-

онная подготовка эндоскопических приборов производится растворами А и Б (см. выше) с помощью марлевых салфеток. Манипуляционные каналы приборов чистят с помощью специальных щеточек. Эндоскопы стерилизовать высокими температурами нельзя. Поэтому для их стерилизации применяются следующие способы.

1.Опускание прибора на 10 мин. в спирт (оптика прибора не стерилизуется), а затем на 5 мин. в раствор сулемы 1:1000. Перед использованием прибор обрабатывается спиртом.

2.Рабочую часть прибора 3-кратно протирают одним

27

из растворов (0,5% водный или спиртовой раствор хлоргексидина биглюконата, 700 этиловый спирт, 2,5% глутарового альдегида, препарат «Сайдекс», 3% и 6% растворы перекиси водорода) или ее погружают в эти растворы на 30-40 мин.

3.Помещение в пары формалина на 48 ч. Для этого используются герметично закрывающиеся камеры (пароформалиновые стерилизаторы), на дно которых кладут таблетки формальдегида (рис. 6).

4.Стерилизация оптических приборов в газовых камерах окисью этилена.

Рис. 6. Пароформалиновая камера

Перевязочный материал и операционное белье стерили-

зуются только методом автоклавирования (паром под давлением) (см. выше). Для удобства стерилизации и транспортировки, а главное для сохранения стерильности перевязочный материал и операционное белье закладываются в специальные металлические коробки-барабаны (биксы Шиммельбу-

ша) (рис. 7).

Биксы должны иметь плотно закрывающуюся крышку и множество мелких отверстий на боковой стенке, которые

28

Рис. 7. Бикс Шиммельбуша

при необходимости закрываются металлическим обручем. Прежде чем укладывать стерилизуемый материал в бикс, необходимо убедиться в пригодности последнего к использованию. Бикс может быть применен для стерилизации в нем материала, если:

1)крышка его может быть плотно закрыта и фиксирована специальным приспособлением;

2)металлический обруч с помощью специального зажима плотно прижимается к боковой стенке бикса, закрывая отверстия в ней;

3)стенки и днище бикса не имеют повреждений.

Правила укладки материала в бикс. Для того чтобы не нарушалась стерильность материала при извлечении из бикса, при закладывании его надо соблюдать следующие правила:

1) послойно укладывать стерилизуемые предметы, если они однородны (халаты, простыни, подкладные);

2) укладывать разнородный материал «по секторам», размещая в каждом секторе однородные предметы (маски, тампоны, шарики, марлевые полоски и пр.).

При стерилизации материала, находящегося в биксе,

29