64
Оценка ФВД была выполнена у пациентов старше 5 лет, способных к воспроизведению дыхательного маневра, с соблюдением стандартов исследования Российского респираторного общества (РРО, 2014) и рекомендаций Американского торакального общества и Европейского респираторного общества (ATS/ERS, 2005)
[237, 238].
Для анализа показателей ФВД использовали должные величины G. Polgar и
соавт. для детей. Результаты выражали в процентах от должного значения (% долж.):
полученное значение / должное значение × 100% [239].
Степень тяжести выявленных нарушений легочной вентиляции оценивали по показателю ОФВ1 [240].
Таблица 16 – Классификация степени тяжести нарушений легочной вентиляции
|
2.3.5. Микробиологический метод |
|
|
Выявление |
микроорганизмов |
проводили |
общепринятыми |
микробиологическими и биохимическими методами, используя алгоритм микробиологической диагностики мокроты, разработанный сотрудниками лаборатории молекулярной эпидемиологии госпитальных инфекции ФГБУ НИЦЭМ им. Н. Ф. Гамалеи [241].
2.3.6. Фармакокинетические исследования
Дизайн исследования фармакокинетики АМП и дорназы альфа представлен в Таблицах 17 и 18. Приведены оцененные клинико-демографические признаки и ФКП амоксициллина и ципрофлоксацина. Методика забора крови для
Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/
65
исследования: всем пациентам был установлен периферический венозный катетер. Кровь для определения ФКП отбиралась в обработанные натриевой солью гепарина пробирки «Вакутейнер» в объеме не более 4 мл для каждой временной точки. Образцы крови инкубировали при комнатной температуре в течение 30 минут и затем центрифугировали при 2000 оборотов, забирали в пробирку плазму 2 мл и более, замораживали при температуре минус 18–20
градусов до анализа.
Таблица 17 – Дизайн исследования влияния различных клиникодемографических характеристик на фармакокинетику амоксициллина и ципрофлоксацина
Таблица 18 – Дизайн исследования влияния различных клиникодемографических характеристик и проводимой терапии на фармакокинетику дорназы альфа
Группа |
N |
Клиническо-демографические характеристики и |
Фармакокинетические параметры |
|||||
проводимая терапия |
|
|||||||
|
|
|
|
|
|
|
||
1-я группа – |
|
I. Возраст II. Пол. |
III.Антропометрические |
Начальный уровень нуклеазной активности |
||||
точка max 1,5 |
13 |
показатели: рост, см; масса тела, кг; ИМТ, кг/м2; |
(С0, нг/мл). |
|
|
|||
часа |
|
ИМТ перцентиль. |
|
|
Пиковый |
уровень |
нуклеазной |
активности |
2-я группа – |
10 |
Спирометрия (ОФВ1 и ФЖЕЛ). |
|
(Cmax, нг/мл) за период 7,5 часов после |
||||
точка max 3,0 ч |
Генотип F508del/ F508del. |
|
|
ингаляции. |
|
|
||
3-я группа – |
5 |
Микробиологический |
статус |
(хроническое |
Время |
достижения пикового уровня |
||
точка max 4,5 ч |
нфицирование P. aeruginosa; интермиттирующая |
нуклеазной активности (Tmax) за период 7,5 |
||||||
4-я группа – |
|
инфекция P. aeruginosa; хроническая инфекция S. |
часов после ингаляции. |
|
||||
точка max 6,0 ч |
|
aureus. |
|
|
Площадь |
под |
кривой |
«нуклеазная |
|
3 |
Наличие бронхоэктазов. |
|
|
активность – время» после приема препарата |
|||
|
Терапия: гипертонический раствор; |
|
до последнего измерения за период |
|||||
|
|
ингаляционные, внутривенные антимикробные |
наблюдения 7,5 часов (AUC0-7,5, нг×час/мл) |
|||||
|
|
препараты, бронхолитики; ИГКС |
|
|
|
|
|
|
66
График отбора проб крови для изучения ФК АМЦ и ЦПФ был следующим:
точка 0 ч (перед приемом препарата), 1,5 ч; 3 ч; 4,5 ч; 6 ч; 7,5 ч после приема препаратов.
А. Определение концентрации антибактериальных препаратов
Для фармакокинетических исследований были использовано следующее оборудование: «жидкостной хроматограф Agilent 1200 с масс-
спектрометрическим детектором MS 6120, AgilentTechnologies, США; весы аналитические OHAUS DV 214C, Китай; портативный рН-метр 728 рН lab, Metrohm AG, Швейцария; центрифуга Eppendorf 5415D, Германия; встряхиватель типа вортекс ELMI, Латвия; концентратор Eppendorf Concentrator plus, Германия;
дозаторы переменного объема Ленпипет 10–100 мкл и 100–1000 мкл, Россия;
холодильник Indesit, SD 125, Россия; морозильник для плазмы Sanyo, Япония;
система водоподготовки Millipore, Milli-Q Advantage A10, Франция;
микропробирки Eppendorf 1,5 мл; колбы мерные класса «А» вместимостью 20, 50
и 100 мл; пипетки аналитические класса «AS» вместимостью 5, 10 мл.
Применялись следующие реактивы: ацетонитрил Super Gradient, Lab-Scan Analytical Sciences; муравьиная кислота (х.ч.); вода очищенная; вода Milli-Q;
метанол (Scharlau, Испания, класс «для ВЭЖХ»).
Концентрацию ЦПФ в сыворотке анализировали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии на хроматографе Shimadzu LC20 AD Series, снабженным двумя насосами высокого давления, онлайн дегазатором подвижной фазы, термостатом колонок, автосемплером на 192 пробы и масс детектором с тройным квадруполем Shimadzu LC-MS 8030. Колонка: Agilent Eclipse XDB-C18, 4,6×150 mm, 5 mkm. Температура термостата: 35 0С.
Температура автосемплера: 80С. Режим: изократический: A – 10 мМ формиат аммония в воде / Ацетонитрил (10–90). Состав подвижной фазы: Total Time (min)
0,00/4,00; Flow (mL/min) 0,8/0,8; А, % 80/80. Скорость потока элюента: 0,8
мл/мин. Объем вводимой пробы: 5 мкл. Раствор для промывки иглы: 50%-й
раствор изопропанола в воде. Время регистрации хроматограммы: 4,0 минуты.
Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/
67
Калибровочная кривая от 0,1 до 5 мкг / мл для ЦПФ. Аналитическая точность определения ЦПФ 5,3% (0,1 мкг/мл) на уровне НПКО (нижний предел количественного определения) и 2,1% (5 мкг/мл) на уровне ВПКО (верхний предел количественного определения).
Анализ образцов крови пациентов описанным выше методом проводился в
«Лаборатории хроматографических систем» (ООО ХромсистемсЛаб»).
Концентрацию АМЦ в сыворотке анализировали методом высокоэффективной жидкостной хроматографии на хроматографе Shimadzu LC20 AD Series, снабженным двумя насосами высокого давления, онлайн дегазатором подвижной фазы, термостатом колонок, автосемплером на 192 пробы и масс детектором с тройным квадруполем Shimadzu LC-MS 8030. Колонка: Agilent Eclipse XDB-C18, 4,6×150 mm, 5 mkm. Температура термостата: 35 0С
Температура автосемплера: 8 0С. Режим: изократический: A – 10 мМ формиат аммония в воде / Ацетонитрил (10-90). Состав подвижной фазы: Total Time (min)
0,00/4,00; Flow (mL/min) 0,8/0,8; А, % 80/80. Скорость потока элюента: 0,8
мл/мин. Объем вводимой пробы: 5 мкл. Раствор для промывки иглы: 50%-й
раствор изопропанола в воде. Время регистрации хроматограммы: 4,0 минуты.
Пробоподготовка: 200 мкл образца помещали в эппендорф (на 1,5 мл), добавляли
600 мкл осадителя (ацетонитрил/метанол (4/1)) с внутренним стандартом
(линезолид). Перемешивали 10 мин на шейкере при 2000 об/мин, затем центрифугировали 10 мин при 13200 об/мин. 400 мкл образца помещали в планшет на 1,1 мл. Калибровочная кривая от 1 до 300 мкг/мл для АМЦ.
Аналитическая точность определения АМЦ 4,83% (1 мкг/мл) на уровне НПКО и
2,53% (300 мкг/мл) на уровне ВПКО.
Анализ образцов крови пациентов, описанным выше методом, проводился в
«Лаборатории хроматографических систем» (ООО «ХромсистемсЛаб»).
Б. Определение нуклеазной активности плазмы в исследовании
фармакокинетики дорназы альфа
«Определение нуклеазной активности проводили с использованием
модельного субстрата – комплекса однонитевой ДНК с 30-звенным