6 курс / Клинические и лабораторные анализы / Гематология_Национальное_руководство

10.Bende R.J., van Maldegem F., Triesscheijn M., Wormhoudt TAM, Guijt R, van Noesel C. Germinal centers in human lymph nodes contain reactivated memory B cells. - J Exp Med,. 2007; 204 [11]: 2655-2665.

11.Bonadonna G., Zucali R., Monfardini S., De Lena M., Uslenghi C.. Combination chemotherapy of Hodgkin's disease with adriamycin, bleomycin, vinblastine, and imidazole carboxamide versus MOPP. - Cancer. 1975; 36 (1): 252259.

12.Boudova L., Torlakovic E., Delabie J., Reimer P., Pfistner B., et al. Nodular lymphocytepredominant Hodgkin lymphoma with nodules resembling T-cell/histiocyte-rich B-cell lymphoma: differential diagnosis between nodular lymphocyte-predominant Hodgkin lymphoma and T-cell/histiocyte-rich B-cell lymphoma. - Blood. 2003; 102:3753-3758.

13.Brune V., Tiacci E., Pfeil I., Doring C., Eckerle S., van Noesel C. et al. Origin and pathogenesis of nodular lymphocyte-predominant Hodgkin lymphoma as revealed by global gene expression analysis. - J Exp Med. 2008;205:2251-2268.

14.Carvajal-Cuenca A., Sua L.F., Silva N.M., Pittaluga S., Roy o C., Song J.Y., et al. In situ mantle cell lymphoma: clinical implications of an incidental finding with indolent clinical behavior. - Haematologica. 2012; 97 (2):270-278.

15.Chai S.M., Kavangh S., Ooi S.S., Sterrett G.F., Cull G., Plunkett M., et al. Anaplastic large-cell lymphoma associated with breast implants: A unique entity within the spectrum of peri-implant effusions. - Diagn Cytopathol, 2014; 42 [11]:929-938.

16.Cong P., Raffeld M., Teruya-Feldstein J., Sorbara L., Pittaluga S., Jaffe E.S. In situ localization of follicular lymphoma: description and analysis by laser capture microdissection. - Blood. 2002; 99 (9):3376-3382.

17.Dojcinov S.D., Venkataraman G., Raffeld M., Pittaluga S., Jaffe E.S. EBV positive mucocutaneous ulcer - a study of 26 cases associated with various sources of immunosuppression. - Am J Surg Pathol, 2010; 34:405-417.

18.Dunleavy K., Roschewski M., Wilson W. H. Lymphomatoid granulomatosis and other Epstein - Barrvirus associated lymphoproliferative processes. - Curr Hematol Malig Rep, 2012; 7 (3):208-15.

19.Edinger J.T., Kant J.A., Swerdlow S.H. Cutaneous marginal zone lymphomas have distinctive features and include 2 subsets. - Am J Surg Pathol. 2010; 34 [12]:1830-1841.

20.Enciso-Mora V., Broderick P., Ma Y., Jarrett R.F., Hjalgrim H., Hemminki K., et al. A genome-wide association study of Hodgkin's lymphoma identifies new susceptibility loci at 2p16.1 (REL), 8q24.21 and 10p14 (GATA3). - Nat Genet, 2010; 42 [12]:1126-1130.

21.Feldman A.L., Dogan A., Smith D.I., Law M.E., Ansell S.M., Johnson S.H., et al. Discovery of recurrent t(6;7) (p25.3; q32.3) translocations in ALK-negative anaplastic large cell lymphomas by massively parallel genomic sequencing. - Blood. 2011; 117 (3):915-919.

22.Fend F., Cabegadas J., Gaulard P., Jaffe E.S., Kluin P., Kuzu I., et al. Early lesions in lymphoid neoplasia: Conclusions based on the Workshop of the XV. Meeting of the

Медицинские книги

@medknigi

European Association of Hematopathology and the Society of Hematopathology, in Uppsala, Sweden. - J Hematop, 2012; 5:169-199.

23.Fu K., Weisenburger D.D., Greiner T.C., Dave S., Wright G., Rosenwald A., et al. Cyclin D1-negative mantle cell lymphoma: a clinicopathologic study based on gene expression profiling. - Blood. 2005 Dec 15; 106 [13]:4315-4321.

24.Ganapathi K.A., Pittaluga S., Odejide O.O., Freedman A.S., Jaffe E.S. Early lymphoid lesions: conceptual, diagnostic and clinical challenges. - Haematologica. 2014; 99 (9): 1421-1432.

25.Gerard-Merchant R., Hamlin I., Lennert K., Rilke F., Stansfeld A. G, van Unniket JAM. Classification of non-Hodgkin's lymphomas. - Lancet. 1974; 2: 406-408.

26.Gibson S.E., Swerdlow S.H., Ferry J.A., Surti U., Dal Cin P., Harris N.L., et al. Reassessment of small lymphocytic lymphoma in the era of monoclonal B-cell lymphocytosis. - Haematologica. 2011; 96 (8): 1144-1152.

27.Green T.M., Nielsen O., de Stricker K., Xu-Monette Z.Y., Young K.H., Maller M.B. High levels of nuclear MYC protein predict the presence of MYC rearrangement in diffuse large B-cell lymphoma. - Am J Surg Pathol. 2012 Apr; 36 (4):612-619.

28.Han T., Ozer H., Gavigan M., Gajera R., Minowada J., Bloom M.L., et al. Benign monoclonal B-cell lymphocyto-sis - a benign variant of CLL: clinical, immunologic, pheno-typic and cytogenetic studies in 20 patients. - Blood, 1984; 64 (1): 244-252.

29.Hans C.P., Weisenburger D.D., Greiner T.C., Gascoyne R.D., Delabie J., Ott G., et al. Confirmation of the molecular classification of diffuse large B-cell lymphoma by immunohistochemistry using a tissue microarray. - Blood.2004; 103:275-282.

30.Harris N.L., Jaffe E. S, Stein H., Banks P.M., Chan J.K., Cleary M.L., et al. A revised European-American classification of lymphoid neoplasms: a proposal from the International Lymphoma Study Group. Blood. 1994; 84 (5):1361-192.

31.Harris N.L., Jaffe E.S., Diebold J., Flandrin G., Muller-Hermelink H.K., Vardiman J. Lymphoma classification - from controversy to consensus: the R.E. A. L. and WHO Classification of lymphoid neoplasms. Annals of Oncology 11 (Suppl. I): S3 - S10, 2000.

32.Herrera A.F., Crosby-Thompson A., Friedberg J.W., Abel G. A, Czuczman M.S., Gordon L.I., et al. Comparison of referring and final pathology for patients with T-cell lymphoma in the National Comprehensive Cancer Network. Cancer. 2014; 120 [13]: 1993-1999.

33.Hirt C., Weitmann K., Schiller F., Kiefer T., Rabkin C.S., Hoffmann W., Dolken G. Circulating t(14;18)-positive cells in healthy individuals: association with age and sex but not with smoking. Leuk Lymphoma. 2013; 54 [12]:2678-2684.

34.Hirt C., Schuler F., Dolken L., Schmidt C.A., Dolken G. Low prevalence of circulating t(11;14)(q13;q32) -positive cells in the peripheral blood of healthy individuals as detected by real-time quantitative PCR. Blood. 2004; 104 (3): 904-905.

Медицинские книги

@medknigi

35.Horn H., Schmelter C., Leich E., Salaverria, Katzenberger T., Ott M.M., et al. Follicular lymphoma grade 3B is a distinct neoplasm according to cytogenetic and immunohistochemical profiles. Haematologica. 2011;96 (9):1327-1334.

36.Ito M., Iida S., Inagaki H., Tsuboi K., Komatsu H., Yamaguchi M. et al. MUM1/IRF4 expression is an unfavorable prognostic factor in B-cell chronic lymphocytic leukemia (CLL)/small lymphocytic lymphoma (SLL). Jpn J Cancer Res. 2002 Jun; 93 (6):685-694.

37.Jackson H.Jr. The Classification and prognosis of Hodgkin's disease and allied disorders. Surg. Gynecol. Obstet. 1937; 64: 465-467.

38.Jackson H.Jr., Parker F. Hodgkin's disease. II. Pathology. New Engl J Med. 1944; 231 (2): 35-44.

39.Jaffe E. S, Harris N.L., Stein H., Vardiman J.W. (Eds.), World Health Organization Classification of Tumours. Pathology and Genetics of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues, IARC, Lyon (2001). 352 p.

40.Janz S., Potter M., Rabkin C.S. Lymphomaand leukemia-associated chromosomal translocations in healthyindividuals. Genes, chromosomes and cancer. 2003; 36:211-223.

41.Jimenez C., Sebastian E., Chillon M.C., Giraldo P., Mariano Hernandez J., Escalante F., et al. MYD88 L265P is a marker highly characteristic of, but not restricted to, Waldenstrom's macroglobulinemia. Leukemia. 2013; 27 (8):1722-1728.

42.Johnson N.A., Slack G.W., Savage K.J., Connors J.M., Ben-Neriah S., Rogic S., et al. Concurrent expression of MYC and BCL2 in diffuse large B-cell lymphoma treated with rituximab plus cyclophosphamide, doxorubicin, vincristine, and prednisone. J Clin Oncol. 2012; 30 [28]:3452-3459.

43.Kaplan H. The radical radiotherapy of Hodgkin's disease. Radiology. 1962; 78:553-

44.Katzenberger T., Kalla J., Leich E., Stocklein H., Hartmann E., Barnickel S., et al. A distinctive subtype of t(14;18)-negative nodal follicular non-Hodgkin lymphoma characterized by a predominantly diffuse growth pattern and deletions in the chromosomal region 1p36. Blood. 2009; 113:1053-1061.

45.Keech J.A. Jr., Creech B.J. Anaplastic T-cell lymphoma in proximity to a saline-filled breast implant. Plast Reconstr Surg. 1997; 100 (2):554-555.

46.Koh J., Go H., Lee W.A., Jeon Y.K. Benign indolent CD56-positive NKcelllymphoproliferative lesion involving gastrointestinal tract in anadolescent. Korean J Pathol. 2014;48 (1): 73-76.

47.Krenacs L.I., Toth-Liptak J., Demeter J., Piukovics K., Borbenyi Z., Gogolak P., et al. Monoclonal antibody HBME-1 reacts with a minor subset of B cells with villous surface and can be useful in the diagnosis of hairy cell leukemia and other indolent lymphoproliferations of villous B lymphocytes. Virchows Arch. 2013; 463 (6):787-794.

48.Kuppers R. Molecular biology of Hodgkin lymphoma. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2009:491-496.

Медицинские книги

@medknigi

49.Kuppers R., Dalla-Favera R. Mechanisms of chromosomal translocations in B cell lymphomas. Oncogene. 2001; 20: 5580-5594.

50.Kuppers R., Duhrsen U., Hansmann M-L. Pathogenesis, diagnosis, and treatment of composite Lymphomas. Lancet Oncol. 2014; 15 [10]: e435 - e446.

51.Kuppers R., Rajewsky K., Zhao M., Simons G., Laumann R., Fischer R., Hansmann M.L. Hodgkin disease: Hodgkin and Reed - Sternberg cells sections show clonal immunoglobulin gene rearrangements and appear to be derived from B cells at various stages of development. - Proc Natl Acad Sci USA. 1994; 91 [23],10962-10966.

52.Kyle R.A., Therneau T.M., Rajkumar S.V., Larson D.R., Plevak M.F., Offord J.R., et al. Prevalence of Monoclonal Gammopathy of Undetermined Significance. - N Engl J Med. 2006; 354: 1362-1369.

53.Lecluse Y., Lebailly P., Roulland S., Gac A.C., Nadel B., Gauduchon P. T(11;14) -positive clones can persist over a long period of time in the peripheral blood of healthy individuals. - Leukemia. 2009; 23 (6):1190-1193.

54.Liebow A. A., Carrington C. R., Friedman P.J. Lymphomatoid granulomatosis. - Hum Pathol. 1972; 3 (4):457-558.

55.Liu Q., Salaverria I., Pittaluga S., Jegalian A.G., Xi L., Siebert R., et al. Follicular lymphomas inchildren and young adults: a comparison ofthe pediatric variant with usual follicular lymphoma. - Am J Surg Pathol. 2013; 37 (3):333-343.

56.Lorsbach R. B., Shay-Seymore D., Moore J., Banks P. M., Hasserjian R.P., Sandlund J.T., et al. Clinicopathologic analysis of follicular lymphoma occurring in children. - Blood. 2002; 99 (6):1959-1964.

57.Lukes R.J. Relationship of histologic features to clinical stages in Hodgkin's disease. Am.J. Roentgenol. 1963, 90: 94-95.

58.Lukes R.J., Butler J.J. The Pathology and nomenclature of Hodgkin's disease. Cancer Res. 1966; 26: 1063-1081.

59.Lukes R.J., Craver L.F., Hall T.C., Rappaport H., Rubin P. Report of the nomenclature committee in symposium: obstacles to the control of Hodgkin's disease. Cancer Res. 1966; 26:1311.

60.Machnicki M.M., Stoklosa T. BRAF - a new player in hematological neoplasms. Blood Cells Mol Dis. 2014; 53 (1-2):77-83.

61.Mansoor A., Pittaluga S., Beck P.L., Wilson W.H., Ferry J.A., Jaffe E.S. NK-cell enteropathy: a benign NK-cell lymphoproliferative disease mimicking intestinal lymphoma: clinicopathologic features and follow-up in a unique case series. Blood. 2011; 117 (5):1447-1452.

62.Margolskee E., Jobanputra V., Lewis S.K., Alobeid B., Green P.H., Bhagat G. Indolent small intestinal CD4+ T-cell lymphoma is a distinct entity with unique biologic and clinical features. PLoS One. 2013; 8 (7): e68343.

Медицинские книги

@medknigi

63.Marti G.E., Rawstron A.C., Ghia P., Hillmen P., Houlston R. S., Kay N., et al. Diagnostic criteria for monoclonal B-cell lymphocytosis. Br.J. Haematol. 2005; 130 (3): 325-332.

64.Martinez-Trillos A., Pinyol M., Navarro A., Aymerich M., Jares P., Juan M., et al. Mutations in TLR/MYD88 pathway identify a subset of young chronic lymphocytic leukemia patients with favorable outcome. Blood. 2014; 123 [24]:3790-3796.

65.Meyer P. N., Fu K., Greiner T. C., Smith L. M., Delabie J., Gascoyne R.D., et al. Immunohistochemical methods for predicting cell of origin and survival in patients with diffuse large B-cell lymphoma treated with rituximab. -J Clin Oncol. 2011 Jan 10; 29 (2):200-207.

66.Miranda R.N., Aladily T.N., Prince H.M., Kanagal-Shamanna R., de Jong D., Fayad L.E., et al. Breast implant-associated anaplastic large-cell lymphoma: long-term follow-up of

60patients. J Clin Oncol. 2014; 32 (2):114-120.

67.Molica S., Giannarelli D., Levato L., Mirabelli R., Gentile M., Lentini M., Morabito F. A prognostic algorithm including a modified version of MD Anderson Cancer Center (MDACC) score predicts time to first treatment of patients with clinical monoclonal lymphocytosis (cMBL)/Rai stage 0 chronic lymphocytic leukemia (CLL). Int J Hematol. 2014; 100 (3):290-295.

68.National Cancer Institute sponsored study of classifications of non-Hodgkin's lymphomas: summary and description of a working formulation for clinical usage. The Non-Hodgkin's Lymphoma Pathologic Classification Project. Cancer. 1982; 49 [10]:21122135.

69.Parrilla Castellar E.R., Jaffe E.S., Said J.W., Swerdlow S.H., Ketterling R.P., Knudson R.A., et al. ALK-negative anaplastic large cell lymphoma is a genetically heterogeneous disease with widely disparate clinical outcomes. Blood. 2014; 124 (9):1473-1480.

70.Perry A. M, Warnke R.A., Hu Q., Gaulard P., Copie-Bergman C., Alkan S., et al. Indolent T-cell lymphoprolif-erative disease of the gastrointestinal tract. Blood. 2013;

122[22]:3599-3606.

71.Peters M.V. A study in survivals in Hodgkin's disease treated radiologically. Am J Roentgenol. 1950; 63:299-311.

72.Petrella T., Maubec E., Cornillet-Lefebvre P., Willemze R., Pluot M., Durlach A., et al. Indolent CD8-positive lymphoid proliferation of the ear: a distinct primary cutaneous T- cell lymphoma? Am J Surg Pathol. 2007; 31 [12]:1887-1892.

73.Ponzoni M., Kanellis G., Pouliou E., Baliakas P., Scarfo L., Ferreri A.J., et al. Bone marrow histopathology in the diagnostic evaluation of splenic marginal-zone and splenic diffuse red pulp small B-cell lymphoma: a reliable substitute for spleen histopathology? Am J Surg Pathol. 2012; 36 [11]:1609-1618.

74.Poulain S., Roumier C., Decambron A., Renneville A., Herbaux C., Bertrand E., et al. MYD88 L265P mutation in Waldenstrom macroglobulinemia. Blood. 2013; 121 [22]: 45044511.

Медицинские книги

@medknigi

75.Puente X.S., Pinyol M., Quesada V., Conde L., Ordonez G.R., et al. Whole-genome sequencing identifies recurrent mutations in chronic lymphocytic leukaemia. Nature. 2011; 475 (7354):101-105.

76.Quesada V., Conde L., Villamor N., Ordonez G.R., Jares P., et al. Exome sequencing identifies recurrent mutations of the splicing factor SF3B1 gene in chronic lymphocytic leukemia. Nature Genetics. 2012; 44: 47-52.

77.Quintanilla-Martinez L., Davies-Hill T., Fend F., et al. Sequestration of p27Kip1 protein by cyclin D1 in typical and blastic variants of mantle cell lymphoma (MCL): implications for pathogenesis. Blood. 2003; 101:3181-3187.

78.Randen U., Tierens A.M., Tjonnfjord G. E., Delabie J. Bone marrow histology in monoclonal B-cell lymphocytosis shows various B-cell infiltration patterns. Am J Clin Pathol. 2013; 139 (3): 390-395.

79.Rawstron A.C., Green M.J., Kuzmicki A., Kennedy B., Fenton JAL, Evans PAS, et al.

Monoclonal B lymphocytes with the characteristics of «indolent» chronic lymphocytic leukemia are present in 3.5% of adults with normal blood counts. Blood. 2002; 100 (2): 635-639.

80.Rodig S.J., Vergilio J.A., Shahsafaei A., Dorfman D.M. Characteristic expression patterns of TCL1, CD38, and CD44 identify aggressive lymphomas harboring a MYC translocation. Am J Surg Pathol. 2008; 32 (1):113-122.

81.Rossi D., Rasi S., Spina V., Bruscaggin A., Monti S., et al. Integrated mutational and cytogenetic analysis identifies new prognostic subgroups in chronic lymphocytic leukemia. Blood. 2013; 121 (8): 1403-1412.

82.Roulland S., Lebailly P., Lecluse Y., Briand M., Pottier D., Gauduchon P. Characterization of the t(14;18) BCL2-IGH translocation in farmers occupationally exposed to pesticides. Cancer Res. 2004; 64: 2264-2269.

83.Salaverria I., Siebert R. Follicular lymphoma grade 3B Best Pract Res Clin Haematol. 2011; 24 (2):111-119.

84.Schmatz A-I., Streubel B., Kretschmer-Chott E., Puspok A., Jager U., Mannhalter C., et al. Primary follicular lymphoma of the duodenum is a distinct mucosal/submucosal variant of follicular lymphoma: a retrospective study of 63 cases. J Clin Oncol. 2011; 29 [11]:1445-1451.

85.Stansfeld A.G., DieboldJ., Noel H., Kapanci Y., Rilke F., Kelenyi G., et al. Updated Kiel classification for lymphomas. Lancet. 1988; 1 (8580):292-293.

86.Stein H., Bob R. Is Hodgkin lymphoma just another B-cell lymphoma? Curr Hematol Malig Rep. 2009; 4 (3):125-8.

87.Swerdlow S.H., Campo E., Harris N.L. (Eds.) et al., WHO Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues, IARC, Lyon (2008). 439 p.

Медицинские книги

@medknigi

88.Taddesse-Heath L., Pittaluga S., Sorbara L., Bussey M., Raffeld M., Jaffe E.S. Marginal zone B-cell lymphoma in children and young adults. Am J Surg Pathol. 2003; 27 (4):522-

89.Takeuchi K., Yokoyama M., Ishizawa S., Terui Y., Nomura K., Marutsuka K., et al. Lymphomatoid gastropathy: a distinct clinicopathologic entity of self-limited pseudomalignant NK-cell proliferation. Blood. 2010;116 [25]:5631-5637.

90.Tandon B., Peterson L., Gao J., Nelson B., Ma S., Rosen S., Chen Y-H. Nuclear overexpression of lymphoid-enhancer-binding factor 1 identifies chronic lymphocytic leukemia/small lymphocytic lymphoma in small B-cell lymphomas. Modern Pathology. 2011; 24, 1433-1443.

91.Thirumala S., Esposito M., Fuchs A. An unusual variant of composite lymphoma: a short case report and review of the literature. Arch Pathol Lab Med. 2000; 124: 1376-

92.Tiacci E., Trifonov V., Schiavoni G., Holmes A., Kern W., Martelli M.P., et al. BRAF mutations in hairy-cell leukemia. N Engl J Med. 2011; 364 [24]:2305-2315.

93.Toth-Liptak J., Piukovics K., Borbenyi Z., Demeter J., Bagdi E., Krenacs L. A comprehensive immunophenotypic marker analysis of hairy cell leukemia in paraffinembedded bone marrow trephine biopsies-a tissue microarray study. Pathol Oncol Res. 2014; DOI 10.1007/s12253-014-9807-5.

94.Treetipsatit J., Rimzsa L., Grogan T., Warnke R.A., Natkunam Y. Variable expression of B-cell transcription factors in reactive immunoblastic proliferations: apotential mimic of classical Hodgkin lymphoma. Am J Surg Pathol. 2014 Jun 11. [Epub ahead of print]. doi: 10.1097/PAS. 0000000000000266.

95.Treon S.P., Xu L., Yang G., Zhou Y., Liu X., Cao Y., et al. MYD88 L265P somatic mutation in Waldenstrom's mac-roglobulinemia. N Engl J Med. 2012; 367:826-833.

96.Vasmatzis G., Johnson S.H., Knudson R.A., Ketterling R.P., Braggio E., Fonseca R., et al. Genome-wide analysis reveals recurrent structural abnormalities of TP63 and other p53related genes in peripheral T-cell lymphomas. Blood. 2012; 120 [11]:2280-2289.

97.Vegliante M.C., Palomero J., Perez-Galan P., Roue G., Castellano G., Navarro A., et al. SOX11 regulates PAX5 expression and blocks terminal B-cell differentiation in aggressive mantle cell lymphoma. Blood. 2013; 121[12]:2175-2185.

98.Weiss B. M, Abadie J., Verma P., Howard R.S., Kuehl W.M. A monoclonal gammopathy precedes multiple myeloma in most patients. Blood. 2009; 113:5418-5422.

99.Willis R.A. The tumors of lymphoid tissue. In Pathology of Tumors. St. Louis: Mosby 1948; Chap. 44: 760.

100.Xerri L., Bachy E., Fabiani B., Canioni D., Chassagne-Clement C., Dartigues-Cuilleres P., et al. Identification of MUM1 as a prognostic immunohistochemical marker in follicular lymphoma using computerized image analysis. Hum Pathol. 2014; 45 [10]:2085-2093.

Медицинские книги

@medknigi

101.Yang G., Zhou Y., Liu X., Xu L., Cao Y., Manning R.J., et al. A mutation in MYD88 (L265P) supports the survival of lymphoplasmacytic cells by activation of Bruton tyrosine kinase in Waldenstrom macroglobulinemia. Blood. 2013; 122(7):1222-1232.

102.Young K. H., Chan W. C., Fu K., et al. Mantle cell lymphoma with plasma cell differentiation. Am JSurg Pathol. 2006; 30:954-961.

Медицинские книги

@medknigi

Глава 6. Иммунология клеток крови

Н.Н. Тупицын

Иммунофенотипические особенности характеризуют клетки крови не в меньшей степени, чем морфологические признаки. Поскольку морфология клеток крови - это устоявшаяся, привычная и надежная совокупность признаков, позволяющая различать клетки крови различных линий и стадий созревания, иммунофенотипические признаки наиболее широко используются там, где эти клетки имеют однотипные морфологические характеристики. Это в первую очередь относится к клеткам-предшественникам (морфологически бластные или лимфоидные) и к лимфоцитам, функциональные субпопуляции которых морфологически разграничить невозможно.

На этой основе сформировалось большое направление исследований. По существу, вся иммунология в ее описательном контексте - это иммунофенотипическое разграничение субпопуляций лимфоцитов. Продолжением этого направления при злокачественных заболеваниях из лимфоцитов является иммунофенотипическая диагностика периферических лимфом. Что же касается клеток-предшественников, выделение подклассов стволовых гемопоэтических клеток и классификация острых лейкозов практически полностью основываются на результатах иммунофенотипирования.

По мере созревания в костном мозге и функциональной специализации гемопоэтические клетки изменяют иммунофенотип (рис. 6.1 на цветной вклейке).

Из представленной схемы видно, что клетки миелоидной дифференцировки имеют уникальный иммунофенотип, изменения которого по мере созревания клеток представлены в табл. 6.1.

Таблица 6.1. Динамика дифференцировочных антигенов в миелоидной дифференцировке

Медицинские книги

@medknigi

Показания к иммунофенотипированию лейкоцитов крови с диагностической целью, базирующиеся на клинических данных, разработаны на совещании в Бетесде (2007). Это цитопении, в особенности билинейные и панцитопении; повышения уровня лейкоцитов крови, включающие лимфоцитозы, моноцитозы и эозинофилию; присутствие атипичных клеток или бластов в периферической крови, костном мозге или различных биологических жидкостях; плазмоцитозы и моноклональные гаммапатии; органомегалия и тканевые массы.

Вэтих ситуациях исследование иммунофенотипа клеток методом проточной цитометрии может способствовать установлению или, напротив, исключению диагноза опухоли крови. Напротив, иммунофенотипические исследования не показаны при зрелых нейтрофилиях (нейтрофилезах), поликлональной гипергаммаглобулинемии, полицитемии, тромбоцитозах и базофилии. Иммунофенотипирование показано с целью стадирования лимфоидных опухолей, оценки ответа на лечение, включая определение минимальной остаточной болезни (МОБ), установления рецидива или прогрессирования, а также установления диагноза вторичных опухолей, например МДС, индуцированного лечением.

Воснове иммунофенотипического подхода к диагностике опухолей крови лежат знания о линейной принадлежности, стадии дифференцировки клеток и наличии аберрантного иммунофенотипа. В зависимости от целей исследования реализуются различные по сложности и информативности проточноцитометрические подходы: от одновременного анализа 3-4 антигенов на уровне единичной клетки до 8-10 маркеров.

Иммунофенотипирование гемопоэтических клеток является обязательным при диагностике острых лейкозов/лимфом из клеток-предшественников и при диагностике периферических лимфом. В последние годы данный метод все чаще используется при опухолях из созревающих миелоидных и моноцитарных клеток. Иммунофенотипирование методом проточной цитометрии является более чувствительным, чем морфология, методом при оценке дисплазии гранулоцитов, однако уступает морфологии в установлении дисплазии эритроидных и мегакариоцитарных клеток. Последнее обусловлено малым числом антигенов, подлежащих оценке, а также малым количеством мегакариоцитов. При иммунологической оценке дисплазии миелоидных и моноцитарных клеток оценивается аберрантная экспрессия дифференцировочных антигенов CD11b,

CD13, CD14, CD15, CD16, CD33, CD34, CD45, CD56, CD64, CD117, HLA-DR.

Учитываются маркеры, в норме не экспрессированные на этих клеточных линиях, - CD2, CD4, CD7, CD25, CD36, CD38, CD41, CD61, CD64, CD71, cMPO, CD123, CD163,

Медицинские книги

@medknigi