2.10.1. Процедура сбора кала.

1. Кал, как и другие биологические жидкости всех больных, заведомо должны рассматриваться как инфицированные;

2. Медицинская сестра и санитарка, должны работать в перчатках;

3. Перед сдачей анализа кала, медицинская сестра должна предупредить больного о предстоящем исследовании, провести устное инструктирование больного и выдать памятку;

4. Медицинская сестра должна проследить выполнение пациентом предписанным мероприятий;

5. Утром при получении емкости с калом от пациента медицинская сестра должна внимательно сверить паспортные данные пациента с данными написанными на этикетке емкости;

6. Кал должен быть доставлен на исследование в лабораторное отделение не позднее 2 часов после забора.

Краткая инструкция для медицинской сестры по забору кала.

1. Сообщить пациенту о предстоящем исследовании:

2. Провести устный инструктаж больного, выдать памятку и емкость для сбора кала;

3. Проследить правильность выполнения пациентом данных рекомендаций;

4. Утром забрать у пациента емкость с калом;

5. Сверить паспортные данные пациента с данными на этикетке;

6. Доставить материал в лабораторию.

2.11. Особенности условий взятия образцов биоматериала для специальных видов исследования.

2.11.1. При взятии образцов для бактериологических исследований особенное внимание должно быть уделено предотвращению загрязнения. Гнойный материал следует набирать через кожу, если это возможно, поскольку ее легче дезинфицировать. Жидкий материал предпочтительнее образцов на тампонах. Секрет, содержащий интерферирующие вторичные микроорганизмы должен быть удален с поверхности открытой раны и затем образец собирают бактериологическим тампоном круговыми вращательными движениями от центра к периферии раны, так же на исследование берут кусочки некротизированной ткани. Объем пробы должен быть насколько возможно большим. Образцы для культуры крови, если возможно, должны собираться в период повышения температуры тела. При подозрении на инфекционный эндокардит следует брать не менее десяти культур крови.

2.11.2. Образцы для выделения и идентификации вирусов обычно собирают немедленно после появления симптомов (если возможно – в первые три дня). Для анализа используют образцы на тампонах (нос, гортань, глаза), смывы из глотки, жидкость из пузырьков при кожных поражениях, кал, мочу и спинномозговую жидкость.

2.11.3. При взятии кожных образцов для микологических исследований соскобы с зон активного поражения берут с помощью скальпеля после тщательной дезинфекции участка кожи. При отложениях на волосах их образцы берут с помощью эпиляционной пипетки или остригают. При поражении ногтей берут их срезы и соскобы с нижней части ногтей. Для обнаружения дрожжей в моче используют случайный образец мочи, для детекции дрожжей или грибков в мокроте предпочтительнее использовать ее утренний образец.

2.11.4. При диагностике паразитарных инфекций исследуют образцы крови (плазмодии, трипаносомы, лейшмании, микрофилярии, Loa loa), кал (Giardia, ciliates, гельминты, цестоды), образцы тканей пораженных органов (Trichinella spiralis larvae, Echinococcus) или сами паразиты (артроподы: клещи, насекомые).

2.11.5. ПЦР – анализ может быть проведен в образцах крови с ЭДТА и цитратом, высушенной крови (на фильтровальной бумаге), костного мозга, мокроты, жидкости из полости рта, бронхиальной лаважной жидкости, спинномозговой жидкости, мочи, кала, биопсийного материала, культуре клеток, фиксированной или покрытой (парафинированной) ткани и т.д. Важным условием получения достоверных результатов является предотвращение загрязнения образцов экзогенной ДНК, обычными источниками которой являются волосы и кожа людей, дверные ручки, лабораторная мебель, порошки, реагенты, термоциклер и наконечники пипеток. Идеальным средством создания чистой беспылевой среды служат настольные шкафы с ламинарным потоком профильтрованного воздуха. Взятие образцов для молекулярно-биологических исследований лучше всего производить в закрытые одноразовые системы, которые должны быть свободны от нуклеаз, для чего подвергаются автоклавированию в токе горячего воздуха. При использовании незакрытых систем для взятия проб следует надевать одноразовые перчатки. Стеклянная посуда должна обрабатываться 1% раствором диэтилпирокарбоната, который тормозит РНК-азы. Оставшийся препарат следует тщательно удалить путем автоклавирования посуды и последующей ее обработки жаром при 250^ºС в течение 4 часов.