Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

С.Дж.Перт

.pdf
Скачиваний:
41
Добавлен:
10.06.2023
Размер:
11.63 Mб
Скачать

Влияние кислорода на культуры микроорганизмов

14f

в среду восстанавливающl!х агентов, особенно цистеина, суль­ фида натрия, тиогликолята натрия, дитионита натрия и аскор­ биновой кислоты; обычно для этой цели предпочитают цистеин

и сульфид натрия. Некоторые среды, такие, как мясные отвары,

удобны, может быть, потому, что они содержат восстанавлива­

ющие вещества. Рекомендуют использовать предварительное

выращивание факультативного анаэроба в среде как средство

для достижения анаэробиоза в случае культуры метанобразу­

ющих бактерий [ 141].

Степень анаэробиоза часто определяют, измеряя Eh. Для

этой цели:в среду могут быть введены окислительно-восстанови­

тельные индикаторы. Для определения Eh в качестве индикатора

обычно используют резазурин (диазорезорцин) (10-4 г/л), меня­

ющий окраску от розовой до бесцветной при Ео = -51 мВ, рН 7 и 30 °С; бесцветное состояние достигается при Eh около -100 мВ

и указывает на наличие анаэробных условий.

11.10.2.Пределы Eh для анаэробного роста_

Верхний предел Eh для роста анаэроба впервые был опреде­ лен при изучении влияния Eh на прорастание спор Clostridium tetani [174J. Верхнее значение Eh, при котором споры не прора­

стали, составляло 50-100 мВ. Согласно другим данным, верх­ ний предел значений Eh, лимитирующий рост С/. sporogenes или

Cl. saccharobutyricum, составляет -100 мВ

[8]; однако началь­

ное значение Eh могло быть повышено до

+180 мВ, но в этом

случае имел место лаг-период, продолжавшийся до тех пор,

пока культура спонтанно не снижала Eh до -100 мВ. Было также установлено, что допускаемое начальное значение Eh

уменьшалось с уменьшением количества посевного материала,

выраженного в единицах оптической плотности [8]. Культу­

ральная жидкость, полученная после выращивания биомассы, снижала минимальную величину инокулята, при которой был

возможен рост с начальным значением Eh 180 мВ. Резудьтаты указанной работы [8] свидетельствуют о том, что клостридии

обладают механизмом, ведущим к снижению Eh в среде. Нижний предел Eh, достигаемый в неаэрируемых бактериаль­

ных культурах, специфичен для организма [156]. В культурах

Bacillus suЬtilis значение Eh относительно стандартного водород­ ного электрода (Якоб [ 156] дает величины относительно кало­

мельного электрода)

падало от 400 мВ при

засеве до

200 мВ;

в культуре Staphylococcus aureus

значение Eh падало

от 400 до

50 мВ, а

в культурах Proteus vulgaris и Escherichia coli проис­

ходило

еще

более

значительное

снижение

Eh: от

+400

до

-300 мВ. В

культуре Clostridium

paraputrificum снижение

Ел

приблизительно от +зоо до -300 имело место в течение лаг-

142

Глава 11

фазы, т. е. до начала роста (рис. 43). Эти результаты показы­ вают, что факультативные энтеробактерии способны снижать Eh

до значений, при которых возможен рост строгих анаэробов.

300

 

\

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

\

 

 

 

 

 

 

Виомасса, жстиющюе

 

200

 

\

\Eh

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

9

 

 

 

 

 

\

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

\

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

100

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

8

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

~

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Eh

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

7

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

о

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

!!С

 

 

 

 

\

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

i

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

6

~

~100

 

 

 

\

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

;:s

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Сi')

 

 

 

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

-zoo

 

1

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

1\,_______

 

 

 

 

5

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

-------------

 

 

-:юо

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

fO

12

 

о

2

 

4

 

6

8

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Вре.мя,ч

 

 

 

 

 

Рис. 43. Изменение Eh в процессе роста (по экстинкции)

культуры Clostri-

dium

paraputrificum

в печеночном бульоне

(156].

11.10.3. Верхние пределы концентрации растворенного кислорода для анаэробного роста

Гордон и др. [111] установили значение переносимого парци­

ального давления кислорода в газовой фазе над плотной средой (кровяным агаром) при выращивании культур некоторых клост­

ридий. Для Clostridium welchii верхний предел находился в

области 30-80

мм рт. ст., для

Cl. sporogenes -

при 4 мм рт.

ст.

и для Cl. tetani,

Cl. botulinum

и Cl. oedematiens

- при 1-2

мм

рт. ст. Напряжение кислорода в среде может быть ниже, чем

парциальное давление в газовой фазе, потому что по крайней

мере у некоторых клостридий имеется механизм поглощения

кислорода. Так, было найдено, что у Cl. sporogenes q02 состав-

ляет 30 мл кислорода на 1 г сухой биомассы в 1 ч при использо­

вании в качестве субстрата глюкозы [31]. Это дыхание клостри­

дий может служить таким механизмом клетки, который снижает

парциальное давление растворенного кислорода и соответствен­

но Eh до уровня, пригодного для роста. Верхний уровень Eh или

напряжение кислорода, ограничивающее развитие культуры,

Влияние кислорода на культуры микроорганизмов

143

ниже которого уже возможен рост, отражает, в какой

мере

организм может удалять кислород из среды и создавать ана­

эробные условия. Большинст.во строгих анаэробов могут не

обладать механизмом, обеспечивающим поглощение кислорода.

Во время роста в анаэробных условиях Klebsiella aerogenes

напряжение растворенного кислорода было слишком низко,

чтобы его измерить, - ниже 0,1 мм рт. ст. [124].

Мы можем оценить концентрацию растворенного кислорода

в анаэробных культурах по значению Eh следующим путем.

Пусть Eh раствора, насыщенного кислородом при напряжении

кислорода 0,21 атм, равно 400 мВ [ 156]; допустим, что Eh умень­

шается на 60 мВ при уменьшении напряжения растворенного

кислорода на

1 log (разд. 9.5.2). Тогда уменьшение Eh от +400

до -140 мВ

соответствует уменьшению напряжения кислорода

на 9 в логарифмической шкале. Поэтому напряжение растворен­ ного кислорода будет соответствовать 0,21 • 10-9 атм. Такое па­

дение в напряжении кислорода означает, что

конпентрация

растворенного

кислорода при

25 °С

будет уменьшаться от

0,25 • 10-з М до 0,25 • 10-12 М.

Для

последней

концентрации

число молекул

кислорода в

миллилитрах

должно быть

N • 0,25 • 10- 15, где N-число Авогадро (6 • 1023). Отсюда выте­

кает, что при значениях Eh, характерных для анаэробного мета­

болизма, количество бактерий превосходит числом молекулы кислорода, и большинство клеток полностью избавлены от дей­

ствия кислорода. Этот аргумент опровергает точку зрения, что

анаэробы, возможно, нуждаются в кислороде, но при исключи•

тельно низком его напряжении.

Глава 12

ОБЩИЕ ВОПРОСЫ ПИТАНИЯ

12.1. Введение

Источники питания, необходимые организму для роста (не считая источников энергии), можно подразделить на следующие группы: 1) источники основных элементов: С, Н, О и N; 2) ис­

точники элементов, требующихся в меньшем количестве: Р, К, S, Mg; 3) витамины и гормоны; 4) источники микроэлементов. Термин факторы роста используют для обозначения особенно

важных источников питания, таких, как аминокислоты, которые

включаются целиком в структуру клетки. Это определение ис­

ключает источники углерода и энергии, потому что они катабо­

лизируются. Об источниках углерода и энергии, которые часто

используются клеткой и как источники кислорода и водорода,

речь шла в гл. 8. В настоящей главе обсуждаются вопросы, свя­

занные с источниками азота и других групп питания.

Первоначально микроорганизмы и клетки тканей культиви­

ровали на естественных средах, представляющих собой экстрак­

ты из растительного или животного материала; в качестве при­

меров можно назвать виноградный сок, молоко, кукурузный

экстракт, пептон и сыворотку. Часто подобные среды удобны,

так как они содержат источники всех четырех групп питания, но

все они обладают одним недостатком - неопределенностью

состава и, следовательно, значительной вариабельностью. Чтобы

изучать влияние источников питания, необходимо применять,

насколько это возможно, химически определенные или синтети­

ческие среды. Первые шаги к определению состава сред для культивирования были сделаны Пастером [234], который ввел полусинтетическую среду (частично известного состава); эта

среда состояла из глюкозы, виннокислого аммония и золы дрож­

жей и использовалась для выращивания дрожжей. Роль винной

кислоты не ясна, но она могла придать среде элективность при

выращивании дрожжей, так как в то время не было известно

каких-либо других способов получения чистых культур. Позже Вильдье [345] показал необходимость в дополнительных источ­ никах витаминов для роста дрожжей. Он нашел, что среда Па­

стера не могла обеспечить хороший рост дрожжей, если она не

содержала органический экстракт из дрожжевых клеток, на-

Общие вопросы питания

145

званный биосом. Впоследствии было установлено, что

биос _:__

-это водорастворимые витамины. Как Пастер достиг успеха в выращивании дрожжей на своей среде без всякого добавления биофакторов? Можно лишь предположить, что это объяснялось

использованием большого количества посевного материала, ко­

торый содержал факторы роста в избытке. или же тем, что он

работал со смешанными культурами, среди которых мог быть

вид, способный синтезировать факторы роста.

Ученик Пастера Ролэн [272] впервые применил среду пол­

ностью известного состава для выращивания культуры Aspergillus niger. Эта среда содержала элементы питания первых двух групп (см. выше), три микроэлемента (Fe, Zn и Si) - все в

неорганической форме - и сахар в качестве источника С, Н, О

и энергии. Последующая работа подтвердила правильность со­

става указанной среды, за исключением потребностей в Si в

форме силиката; причем, справедливым оказ,ался не тол&ко ка­

чественный состав среды, но, исходя из экономического к9эффи­

циеита, было правильно подобрано и количественное содержа­

ние каждого источника питания. К сожалению, большинство более поздних исследователей пренебрегали определением эко­

номического коэффициента по элементам питания, что очень важно для выяснения количественных потребностей в источни­

ках. Например, пренебрежение количественной стороной этого вопроса привело к тому, что многие работы по изучению пита­

тельных потребностей клеток животных зашли в тупик [22].

«Минимальная» среда содержит лишь источники питания, ,необходимые для роста. Богатая среда содержит, кроме необхо­

димых для роста источников питания, дополнительные вещества,

обычно в форме аминокислот, витаминов, предшественников

нуклеиновых кислот и другие промежуточные вещества синтеза

клеточных компонентов. Обогащение сред для культивир·ования

приводит к увеличению скорости роста и изменению ферментного состава биомассы.

Потребности организма в питании могут различаться каче­ ственно или количественно, в зависимости от условий культиви­

рования. На изменение потребностей в факторах роста способна влиять температура (разд. 13.4), и можно думать, что пищевые потребности должны зависеть от значений рН и осмоляльности

среды.

Для начала роста при небольшом количестве посевного ма­ териала иногда требуется более обогащенная среда, чем для начала роста с высокой плотностью популяции. Например, не удается получить рост Klebsiella aerogenes на минимальной rлюкозно-аммонийной среде при внесении посевного материала

в количестве меньшем, чем приблизительно 105 бактерий на

Общие вопросы питания

147

Тогда

 

 

(12.3)

Отношение наклонов графиков, выражающих уравнения

( 12.1)

и ( 12.2), будет с1/с2. Следовательно, можно высчитать С2.

Для правильного анализа экономический коэффициент дол­

жен быть один и тот же в стандартном и испытуемом растворах.

Если это так, то значение Уsв в уравнении (12.3) должно быть

одинаковым при определении контрольного (стандартного) и опытного образцов, т. е. определяться равными отрезками на

ординате, как показано на рис. 44, А. Если значения экономиче­

ского коэффициента при использовании различных испытуемых

образцов меняются, тогда можно полагать, что в испытуемом образце содержится какой-то дополнительный материал, обла­ дающий активностью фактора роста, и в этом случае определе­ ния будут не совсем правильными. Такая неточиость в опреде­

лениях видна по неодинаковым отрезкам (рис. 44, Б), величины

которых соответствуют ХВ1 =Хо+ У1sв и Хв2 = Хо+ У2sв, где У1

и У2 есть различные экономические коэффициенты. При этом необходимо выполнение требования, чтобы sв > О.

12.3.Потребности в азоте

12.3.1.Общие вопросы

Различными микроорганизмами могут быть использованы очень

многие, если не все, источники азота, включая неорганические

и органические его формы. Метаболизм источника азота обес­

печивает главным образом синтез белков, нуклеиновых кислот

и полимеров клеточной стенки. Пул аминокислот в цитоплазме

составляет 0,25- 5% веса сухой биомассы [33, 198]. Большая

часть пула приходится на долю глутамата. Азот бактериальных

клеток составляет до 12% веса сухой биомассы; в грибах - 10%

сухого мицелия.

12.3.2. Аминокислоты

Часто аминокислоты служат фактором роста. Для синтеза

белка и для многих других целей микроорганизмы нуждаются

в L-аминокислотах; однако иногда требуются О-аминокислоты, например, О-аланин и О-аспарагиновая кислота могут вклю­

чаться в клеточные стенки бактерий. В биомассе аминокислоты

могут рацемизироваться, образуя в результате требуемый изо­

мер. В клеточном белке индивидуальные аминокислоты состав­ ляют 1-5% от всего белка, на основании чего можно приблизи-

10•

148

f ЛQ(IQ 12

тельно оценить количество аминокислот, необходимых в каче­

стве факторов роста. Исключение составляет глутаминовая кис­

лота или глутамин, которые количественно играют большую

роль в аминоюrслотном метаболизме и содержание которых в

среде должно значительно превышать содержание остальных

аминокислот [65, 113].

12.3.3. Пептиды

Некоторые бактерии, нуждающиеся в нескольких аминокис­

лотах, растут лучше при внесении в среду одной или более аминокислот в форме пептидов, например гистидиновых пепти­

дов для Lactobacillus delbrueckii [237]. Рост Lactobacillus casei

в среде без пиридоксина происходил лишь при наличии D- и L-аланина, однако D-аланин препятствовал (как антагонист) потреблению L-аланина, и этот антагонизм можно было преодо­

леть путем добавления L-аланина в пептидной форме [168].

Также потребление cepиlta культурой L. delbrueckii тормозилось

как D-, таки L-аланином, а антагонизм преодолевался добавле­

нием серина в виде пептидов [269]. В культуре Streptococcus faecalis тирозин декарбоксилировался клетками в так9й степени,

что микроорганизм мог испытывать недостаток f3 тирозине.

В этом случае добавление тирозиновых пептидов обеспечивало

указанную культуру тирозином [167].

Часто аминокислоты действуют как ингибиторы роста. Инги­

бирование аминокислотами классифицируется как ингибирова­ ние конкурентного типа, если оно может быть снято другими

аминокислотами, или неконкурентного типа, если оно не может

быть преодолено другими аминокислотами. Антагонизм между

аминокислотами при их потреблении наблюдали в следующих группах: 1) фенилаланин, тирозин, триптофан; 2) серин, трео­ нин, аланин, глицин; 3) глутаминовая кислота, аспарагиновая

кислота [302, 186]; 4) валин, лейцин, изолейцин [165, стр. 211]; 5) норлейцин, метионин [ 165, стр. 211]. Этот антагонизм связан

с конкуренцией за общую пермеазу. В культуре Cephalosporium

нитрат-ионы подавляли потребление метионина ауксотрофным

штаммом, а с помощью ионов аммония этот антагонизм преодо­

левался (Нюш, личное сообщение). Ингибирование гистидином

роста мутанта Bacillus suЫilis снималось при добавлении в сре­

ду глицина в виде трипептида [78]. Для некоторых организмов

ферментативный гидролизат казеина становился ингибитором

роста при концентрациях выше 100 мкг/мл. Неконкурентное

ингибирование роста аминокислотами, так же как и другими

промежуточными метаболитами, обычно встречается в культу­

рах автотрофных микроорганизмов [164, стр. 47] и бактерий,

растущих на С1-соединениях, таких, как метан [93].

Общие вопросы питания

149

12.3.4. Лимитация роста азотом

Пры лимитации роста азотом в биомассе содержится меньше

белка, чем при лимитации роста углеродом; например, в дрож­

жах было обнаружено 30% белка при лимитировании культуры

аммиаком, в то время к~к при лимитации глицерином количест­

во белка в биомассе дрожжей составило 50% [187]. Низкое

содержание белка при избытке источника углерода является от­

ражением накопления энергетического резерва, такого, как

гликоген, в биомассе.

12.4. Потребности в витаминах и гормонах

Термин витаминьi используется здесь для обозначения фак­

торов роста, отличных от аминокислот. Витамины разбивают на две группы: жирорастворимые и водорастворимые. В жирораст­

воримую группу входят витамины А, D, Е, К, убихинон, холе­

стерин и ненасыщенные жирные кислоты (олеиновая, линолено­

вая, линолевая, арахидоновая). Витамины А, Д и Е, которые

необходимы для человека и животных, не были отмечены как

обязательные для роста микроорганизмов. Потребность в нена­

сыщенных жирных кислотах обнаружена для некоторых лакто­

бацилл [302] и для видов Sarcina [186]. Жирные кислоты удоб­

но вносить в среду в форме водорастворимых эфиров (твиновые

соединения). Холестерин необходим для многих микоплазм.

К водорастворимым витаминам относятся: аскорбиновая кис• лота, тиамин, рибофлавин, пантотеновая кислота, пиридоксин,

никотиновая кислота, биотин, ~-аминобензойная кислота, фоле­ вая кислота, кобаламин, мевалоновая. кислота, холин и мезо­

инозит. Для некоторых витаминов существуют различные про­

изводные, так называемые «витамеры», например пиридоксамин

и пиридоксаль - витамеры пиридоксина, и организм может нуж­

даться лишь в одном специфическом витамере. Все водораство­ римые витамины, за исключением аскорбиновой кислоты, как

было обнаружено, являются факторами роста для ряда микро- ·

организмов и клеток тканей животных в культуре. Большинство

водорастворимых витамююв - компоненты коферментов. Холин

и инозит входят в состав липидов. Из изомеров инозита только

мезо- (или мио-) инозит обладает активностью фактора роста.

Снабжение конечными продуктами метаболических путей, в

которые включается витамин, может в какой-то мере его заме­

нить. Так, для замены биотина могут быть использованы нена­

сыщенные жирные кислоты [ l 78]. В среде неопределенного

состава дрожжевой экстракт используют обычно в качестве

источника витаминов.

Количество витамина, необходимое для культуры, редко

определяют в виде экономического коэффициента (выхода

150

Глава 12

биомассы). Поэтому не известно количество витамина, требуе­

мое для образования определенного количества биомассы. Не­

которые данные о значениях экономических коэффициентов в

расчете на потребленный витамин (при избыточном снабжении

витамином) приведены в табл. 11. Значение экономического ко­

эффициента по витамину часто бывает выше при лимитировании

роста этим витамином, чем при снабжении им в избытке. Эконо­

мический коэффициент по витамину может изменяться противо­

положно изменению скорости роста. Например, экономический

коэффициент дрожжей по тиамину уменьшается от 29,0 · 105 до

1,2-10 5 г сухой биомассы в расчете на 1 г тиамина при увели­

чении удельной скорости роста от 0,3 до 0,8 от ее максималь­ ного значения. Потребности в биотине у Corynebacterium gluta- micus снижались на 90%, когда рост шел на среде с ацетаrом

вместо глюкозы [169, стр. 271]. Следовательно, природа источ­

ника углерода энергии способна влиять на величину экономиче­

ского коэффициента (выход биомассы) в отношении потреблен­

ного витамина.

Таблица 11

Экономический коэффициент в р1счете на использованный витвмин

 

 

 

Экономически!!

 

Витамин

Микроорганизм или тип клеток

коэффициент,

 

 

 

r/г 1)

 

 

 

 

Биотнн

 

Streptococcus

[43]

1,08-103

 

 

 

LS-клеткн мыши [25, 27]

2,0.

105

Фолевая кислота

LS-клетки мыши [25, 27]

2,4 • 105

Рибофлавин

 

Streptococcus

[43]

7,4.

104

 

 

 

LS-клетки мыши [25, 27]

2,0.

104

Пантотеновая

кислота

Streptococcus

[43]

1,53-10 4

 

 

 

LS-клетки мыши [25, 27]

6,0.

103

Тиамин

 

Streptococcus

[43]

1,16.

4

 

10.

 

 

 

LS-клетки мыши [25, 27]

3,2.

104

Никотиновая

кислота

Streptococcus

[43]

3.4..103

Никотинамид

 

LS-клеткн мыши [25, 27]

4,8.

102

Пиридоксин

 

То же

 

4,36.

102

Мезо-инозит

 

»

 

1,56 · 102

Холин

 

»

 

0,71 . 102

 

 

 

 

 

 

 

') Экономический коэффи11иент определяли в присутствии избытка витамина как коли­ чество грамм сухой биомассы, образованной в расчете на 1 r витамина.

Лимитация роста витаминами систематически не изучалась,

хотя очевидно, что она должна оказывать огромное влияние. На­

пример, недостаток биотина явился одним из факторов, ответст-

Соседние файлы в предмете Биотехнология