Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

С.Дж.Перт

.pdf
Скачиваний:
41
Добавлен:
10.06.2023
Размер:
11.63 Mб
Скачать

Задержка роста (лаг-перипд)

231

где µа - «кажущаяся» удельная скорость роста. Если х увелн­

чивается благодаря добавлению новых, жизнеспособных клеток,

а-. 1 и µа-.µ, к истинной удельной скорости роста. Кажущийся лаг-период может означать, что в популяции

могут расти только новые мутанты или генетические варианты.

Длинный лаг-период, соответствующий времени примерно 20 ге­ нераций в бактериальной культуре, можно использовать в ка­

честве критерия, свидетельствующего, что рост происходит бла­

годаря селекции новых вариантов. В качестве примера можно

привести селекцию Escherichia

coli, способную расти на лактозе

в присутствии 3-фторглюкозы

[212].

Было установлено, что задержка роста клеток млекопитаю­ щих в определенной безбелковой среде значительно сокращает­

ся в присутствии метилцеллюлозы [2]. Механизм этого эффекта

не установлен.

19.3. Причины истинного лаг-периода

Основными причинами истинной задержки роста являются:

1) изменение в питании; 2) изменение в окружающих физиче­

ских условиях; 3) присутствие ингибитора; 4) прорастание спор; 5) состояние засеваемой культуры. В случае первых трех фак­

торов могут потребоваться некоторые фенотипические изменения в биомассе, чтобы биомасса пришла в состояние, оптимальное

для новых условий; или же метаболизм биомассы может пре­

одолевать неблагоприятное влияние окружения, например изме­

нением значения рН.

Изменения в питании, вероятно, могут способствовать ин­

дукции одного или нескольких новых ферментов, причем время,

необходимое для синтеза оптимального количества этих фермен­ тов, может составлять от 10 мин до нескольких часов. У неко­ торых видов организмов индукция ферментов для использова­

ния новых источников углерода и энергии не происходит до тех

пор, пока в среде есть хоть малые количества первоначального

источника углерода и энергии. Например, переход от использо­

вания глюкозы к использованию лактозы у Penicillium chrysogenum может произойти на смеси глюкозы и лактозы, но только

не в том случае, когда мицелий, голодавший по глюкозе, добав­

ляется в среду, содержащую лактозу в качестве единственного

источника углерода. Адаптация клеток животных к использо­

ванию глутаминовой кислоты происходит только в присутствии

некоторого количества глутамина [26].

Лаг-период может быть выражением времени, необходимого

для инактивации некоторого ингибитора, присутствующего в среде. Токсическое действие микроэлементов, вероятно, будет

более заметно на простой минимальной среде, чем на богатых

232

Глава 19

природных средах, поскольку они содержат вещества, такие;

как аминокислоты, которые могут образовывать комплексы с

ионами металлов. На токсичность органических кислот часто

значительное влияние оказывает рН, и при увеличении рН

токсичность органических кислот уменьшается. Субстрат может вести себя как ингибитор, и тогда лаг-период будет зависеть от

времени, необходимого для уменьшения коицентрации субстрата

до значений, при которых возможна максимальная скорость

роста (разд. 17.8). Ингибирующее влияние на рост могут ока­ зывать продукты метаболизма в инокуляте. Например, неко­

торые представители Lactobacillaceae при пересеве из анаэроб­

ной среды в аэробную могут накапливать перекись водорода, являющуюся сильным ингибитором роста. Перекись водорода

индуцирует образование пероксидазы, которая удаляет пере­

кись водорода. Лаг-период, обусловленный перекисью водорода,

может увеличиваться с увеличением размера инокулята, по­

скольку образование перекиси водорода пропорционально кон­

центрации клеток [295].

Если инокулят состоит из споровых форм, то лаг-период,

предшествующий вегетативному росту, представляет собой тот

отрезок времени, в течение которого происходит прорастание

спор.

19.4.Действие инокулята

Воснове наших представлений о количественном воздей­

ствии «возраста» инокулята на лаг-период в бактериальных культурах лежит главным образом изучение культур Klebsiella aerogenes Лоджем и Хиншельвудом [188]. Они произвольно

измеряли возраст инокулята, взятый приблизительно из начала логарифмической фазы, когда плотность бактериальной попу­

ляции составляла 106 клеток в 1 мл. Действие возраста, показан­

ное на рис. 73, зависело от того, была ли среда минимальной

с глюкозой и аммонием в качестве единственных источников углерода и азота или аммоиий заменялся аспарагином. На глю­

козно-аспарагиновой среде задержка роста начинала появлять­

ся приблизительно тогда, когда культура, из которой брали инокулят, вступала в стационарную фазу, и с увеличением воз­

раста инокулята задержка асимптотически стремилась к мак­

симуму. Однако с увеличением возраста лаг-период воспроизво­

дился хуже, возможно, сказывалось влияние отмирания клеток.

Лаг-период в глюкозно-аммонийной среде (рис. 73, Б) был

длительным, если источник инокулята находился в начале своей

логарифмической фазы роста. Лаг-период достигал минимума, если инокулят брали в конце логарифмической фазы, и увели­ чивался, если культура, из которой брали инокулят, вступала в стационарную фазу. Таким образом, Лодж и Хиншельвуд

Задержка роста (лаг-период)

233

установили различие между ранним лаг-периодом, наступаю­

щим, если инокулят берут из ранней логарифмической фазы, и

поздним лаг-периодом, характерным для инокулята из куль­

туры в стационарной фазе.

Наступление раннего лаг-периода можно предотвратить

добавлением стерильного фильтрата культуры, взятого из позд­ ней логарифмической фазы или при увеличении размера иноку•

лята. На

поздний же лаг-период, или

на лаг-период в аспара-

 

 

 

 

 

Раю-zий

ПозtJнuй

 

 

 

 

.лаг-периоо

.лаг-пери()(!

 

400

 

 

1ООО,---'--,

 

~

300

 

 

 

 

 

~

 

 

 

 

 

 

l

200

 

 

 

 

 

~

 

 

 

 

 

 

~

 

 

 

 

 

 

~ 100

 

 

 

 

 

 

 

 

400 800 1200 1600 2000

О

400 800 1200 16002000

 

О

 

Возраст uнохулята, мин

Возраст инощрята, .мu11

 

 

 

А

 

 

в

Рис. 73. Лаг-период как функция «возраста инокулята» в культуре KleЬ­

siella aerogenes.

А. На глюкозно-аспарагино-солевой среде. Б. На глюкозно-аммонийно солевоl! среде (188),

rиновой среде, не влияло ни добавление фильтрата, ни увеличе­

ние объема инокулята. То обстоятельство, что ранний лаг-пе­ риод можно устранить добавлением соединений, таких, как

аспарагин, являющихся промежуточными продуктами цикла

лимонной кислоты, или увеличением объема засева, напоминает

пути устранения эффекта, вызываемого субоптимальной концен­ трацией растворенной двуокиси углерода (разд. 8.10). Воздух

барботировали сквозь культуру К. aerogenes, используемую

Лоджем и Хиншельвудом, поэтому можно думать, что ранний лаг-период был вызван недостатком двуокиси углерода. При­

чины проявления лаг-периода в аспарагиновой среде или позд­

него лаг-периода в минимальной среде обсуждаются в разд. 19.6.

19.5. Влияние температуры

Влияние температуры на лаг-период в культурах вида Sta- phylococcus в богатой среде показано в табл. 19. Поскольку

отношение длительности лаг-периода к времени удвоения близ­

ко к постоянной величине, лаг-период может служить удобным

234

Глава 19

Таблица 19

Влияние температуры на лаг-период у видов Staphylococcus

в пептонной среде [60)

Температура,

Вре!11я

удвоения

Лаг-период

L/td

ос

td,

мни

L, мин

 

 

 

 

 

 

1,9

25

 

 

64

120

30

 

 

38

66

1,7

35

 

 

29

50

1,7

40

 

 

27

39

1,5

 

 

 

 

 

 

параметром, характеризующим влияние окружающей среды на

удельную скорость роста.

19.6. Метаболические процессы во время лаг-периода

Задержка роста, связанная с инокулятом из стационарной

фазы культуры, обусловлена реорганизацией, необходимой

клетке для обращения изменений, вызвавших прекращение

роста (разд. 19.2). В течение лаг-периода должен частично вос­ становиться состав ферментов и РНК в клетке. Модель Аибы

и др. [З] задержки роста в дрожжевых культурах свидетель­

ствует о том, что длительность лаг-периода определяет синтез

РНК. Таким образом, задержка роста является экстремальным случаем явления «скачок вверх» (shift up), описанного Малё и Кьельдгаардом [193, стр. 98]. Эти авторы показали, что скачку

вверх в скорости роста бактерии должен предшествовать ска­

чок в содержании РНК в организме.

Гр.иффитс и Перт [ 113] установили, что в культуре клеток

мыши поглощение аминокислот во время лаг-периода значи­

тельно отличалось от потребления аминокислот во время лога­

рифмической фазы роста. В частности, удельное поглощение

различных аминокислот было в несколько раз больше во время

лаг-периода по сравнению с логарифмической фазой.

19.7. Заключение

Существует множество причин, вызывающих задержку

роста. Для того чтобы избежать или свести к минимуму лаг­ период, инокулят следует брать из культуры, находящейся в

конце логарифмической фазы, в условиях, как можно более близких к среде, используемой для пересева. Размер инокулята

обычно следует брать по возможности побольше, но следует

иметь в виду исключение из этого правила, отмеченноr в

Задержка роста (лаг-период)

235

разд. 19.3. Добавление фильтрата культуры,

иногда называемое

«улучшением» среды, может служить тем же целям, что и

увеличение объема засева.

Никакого специального изучения задержки роста в связи с природой лимитирующего субстрата в инокуляте не проводи­ лось. Вполне возможно, что в большинстве случаев лимитирую­ щим субстратом служил источник углерода и энергии. Многие эффекты, связанные с сокращением лаг-периода в периодиче­ ской культуре, соответствуют «скачку вверх» по скорости роста в хемостатной культуре.

Глава 20

СМЕШАННЫЕ КУЛЬТУРЫ

20.1.Введение

Поведение смешанных культур, т. е. смеси организмов раз­ личных типов имеет большое значение для экологии микроорга­ низмов в почве, воде, при изучении болезней и порчи продук­

тов. Кроме того, смешанные культуры имеют важное значение

в приготовлении пищевых продуктов брожения и изготовлении

таких, например, микробных продуктов, как аспарагиновая

кислота [146]. Исходя из принципов роста смешанной куль­

туры, мы можем предсказать результат загрязнения культуры

или селекции какого-либо типа мутанта. Из-за сложности по­

ведения смешанных культур использование математических мо­

делей различных систем для описания и предсказания поведе­

ния культуры приобретает особенно важное значение.

Эта глава посвящена в основном обсуждению возможных

примеров поведения двух видов в гомогенной культуре. В ге­ терогенной культуре. такой, как колонии на твердой среде,

могут происходить более сложные явления.

Конечный результат смешанной культуры в хемостате может существенно отличаться от результата в периодической куль­ туре. В периодической культуре каждый вид способен увели­ чить свою биомассу со скоростью, которая будет некоей функ­ цией химических и физических условий окружающей среды,

если один из видов не образует агентов, прекращающих рост

другого, или если там нет взаимодействия хищникжертва. Напротив, в хемостатной культуре все виды, удельная скорость

роста которых меньше скорости разбавления, будут уменьшать

свою численность и вследствие этого могут исчезнуть из куль­

туры

Основные условия, необходимые для поддержания в хемо­

стате двух видов микробов, приведены в табл. 20. Общим условием является требование, чтобы скорость разбавления

была меньше, чем меньшая из двух критических скоростей раз­

бавления для каждого вида. Здесь рассматриваются только

условия стационарного состояния для смешанных культур в

хемостате; однако около стационарных значений могут проис­

ходить колебания, и они предсказываются моделями таких

систем.

С.мешанные культуры

237

Таблица 20

Основные условия для поддержания двух видов микробов

вхемостатной культу ре 1)

1.С одним лимитирующим субстратом:

а)

если удельные скорости роста совпадают,

б)

если вид, растущий быстрее, ингибируется собственным продуктом,

в)

если

продукт вида,

растущего быстрее, активирует рост другого

 

вида

 

 

11. С различными лимитирующими субстратами:

а)

если в культуру подаются различные лимитирующие субстраты,

б)

если

продукт одного

вида служит лимитирующим субстратом для

 

второго вида,

 

в)

если существует взаимоотношение хищник - жертва

1) Во всех системах скорость разбавления должна быть меньше, чем критические скорости разбавления обоих видов.

Для того чтобы обозначить разные типы взаимодействия

видов, иногда используются различные термины, такие, как

комменсализм, симбиоз и паразитизм. Однако эти термины во

многом перекрываются по смыслу и не могут удовлетворить

некоторым типам взаимодействий, приведенных в табл. 20.

20.2. Конкуренция за один и тот же лимитирующий субстрат

20.2.1. Свободная конкуренция

Результат конкуренции за один лимитирующий субстрат

между двумя видами определяется влиянием концентрации (s)

этого субстрата на удельную скорость роста (µ) каждого вида. Если зависимость µ(s) была бы для каждого вида одинакова,

то не было бы никакой конкуренции. Однако, вероятнее всего,

эти зависимости различны и являются каким-то из вариантов,

показанных на рис. 74. В периодической культуре, если

начальная концентрация лимитирующего субстрата значитель­

но превышает значение Ks, каждый вид будет расти с макси­

мальной для него скоростью, до тех пор пока лимитирующий

субстрат практически не истощится. В хемостатной культуре,

напротив, после начального переходного процесса один из орга­

низмов с большей скоростью роста будет вытеснять другой из культуры. Если есть «пересечение» зависимостей µ (s), как по­

казано на рис. 74, Б, то какой из видов будет расти быстрее,

зависит от скорости разбавления в хемостате. В точке пере­

сечения, где µ = µх = Dx и

s = Sx, в хемостате могут

240

Глава 20

 

 

разд. 17.9. Предполагается,

что при

р = О ~ = 1 и µь < µь;

при

увеличении р ~ увеличивается так, что µь = µа.

 

Брюннер и др. [34] сообщили,

что Serratia marcescens и

Escherichia coli, очевидно,

конкурировали за один и тот

же

источник субстрата в хемостате, причем устойчивая смешаннан

культура с преобладанием Е. coli наблюдалась при малых ско­ ростях разбавления, а с преобладанием S. marcescens - при

больших. Механизм, позволяющий обоим видам сосущество­

вать, в этом случае не был установлен.

20.3. Два вида с разными лимитирующими субстратами

Условия для удержания двух видов в хемостатной культуре,

отнесенные в табл. 20 к классу 11, сводятся к присутствию в среде двух разных лимитирующих субстратов для видов А и В в концентрациях Sa и sь соответственно. Это не исключает воз­

можности, что каждый вид может использовать оба лимитирую­

щих субстрата. Полная скорость описывается уравнением на­ копления лимитирующего субстрата для вида А:

dsa/ dt = D (Sr(a)- sa)- µаха/Уа/а - qьхь,

(20.6)

где буквами а и Ь обозначены параметры видов А и В соот­ ветственно. Член Уа/а означает экономический коэффчциент

вида А по его лимитирующему субстрату. Параметр qь - мета­

болический коэффициент для поглощения лимитирующего суб­

страта вида А видом В. Если Ха/Уа/а » qьхь, то уравнение

(20.6) аппроксимируем:

(20.7)

что идентично выражению для поглощения лимитирующегn

субстрата в чистой культуре. Если подобное же уравнение

можно получить для вида В и его лимитирующего субстрата, то рост двух видов будет суммой роста каждого из них на лимитирующих субстратах.

Подобная система была обнаружена в опытах с Pseudo-

monas aeruginosa и Klebsiella aerogenes, растущих на глюкозе

и п-оксибензоате, при

40 °С и рН 7,2, если

глюкоза была лими­

'fирующим

субстратом

для

Pseudomonas,

а оксибензоат - для

Klebsiella

(Трилли и Перт, неопубликованные данные). Однако

при 37 °С

и ниже Klebsiella

использует оба субстрата и вытес­

няет Pseudomonas. В такой системе происходит еще и другое взаимодействие: оксибензоат выступает как ингибирующий субстрат для Klebsiella, но не для Pseudomonas. Следовательно, если концентрация оксибензоата достигает уровня, ингибирую­

щего рост Klebsiella, то Pseudomonas может потреблять его

больше и тем самым понизить концентрацию до уровня, не ин­

гибирующего рост Klebsiella.

Соседние файлы в предмете Биотехнология