- •Общие требования
- •Осмотические свойства растительной клетки
- •1.1. Явление экзоосмоса
- •1.2. Явление плазмолиза формы плазмолиза, деплазмолиз
- •1.3. Получение «клеточки траубе»
- •2.1. Избирательное накопление нейтрального красного (нейтральрота) в закончивших рост клетках листа элодеи
- •2.2. Проницаемость для мочевины разновозрастных клеток листа
- •Клеточного сока методом плазмолиза
- •4.1. Определение интенсивности транспирации в приборе веска
- •4.2. Определение интенсивности транспирации методом кратковременных взвешиваний на торсионных весах
- •Составы питательных смесей для выращивания гриба
- •7.2. Определение рН клеточного сока с помощью иономера
- •Работа 9 клеточные и ферментные яды
- •9.2. Определение активности каталазы в семенах злаков и листьях элодеи
- •Работа 10 выделение пигментов растений и их изучение
- •1. Пигменты клеточного сока - антоцианы. Хроматографическое разделение антоцианидинов
- •2. Получение спиртовой вытяжки смеси пигментов
- •3. Изучение химических свойств хлорофилла
- •Работа 11 изучение свойств пигментов хлоропластов
- •1. Получение вытяжки пигментов хлоропластов
- •2. Разделение пигментов хлоропластов методом хроматографии на бумаге
- •3. Разделение пигментов по методу крауса
- •4. Изучение спектральных свойств пигментов
- •5. Подготовка к выполнению работы 12
- •Работа 12 выделение тепла при дыхании
- •Влияние температуры на интенсивность дыхания прорастающих семян
- •Работа 13 определение температуры повреждения цитоплазмы по изменению её проницаемости
Клеточного сока методом плазмолиза
Ключевые слова: Свойства растворов (гипотонический, изотонический, гипертонический). Растворы электролитов и не электролитов. Изотонический коэффициент. Внешние структуры растительной клетки (клеточная стенка, плазмалемма). Протопласт — живое содержимое клетки. Диффузия и осмос. Осмотическое давление. Осмометр. Тургор. Тургорное давление. Плазмолиз и его формы. Последовательность фаз плазмолиза. Формула Вант-Гоффа. Абсолютная температура. Зависимость осмотического давления от температуры и концентрации растворенного вещества.
Метод основан на подборе раствора, имеющего осмотическое давление равное осмотическому давлению клеточного сока. Поскольку в гипертоническом растворе растительная клетка всегда обнаруживает признаки плазмолиза - отхождения протопласта от клеточной стенки, - необходимо приготовить шкалу растворов известной концентрации, погрузить в них срезы одной и той же ткани на определённое время, после чего рассмотреть состояние клеток под микроскопом в порядке убывания концентраций. Необходимо определить концентрацию, при которой плазмолиз уже не наблюдается.
ХОД РАБОТЫ
Пользуясь бюретками с водой и c раствором NaCl, отмерить в бюксы по 10 мл раствора хлорида натрия 10-ти различных концентраций, в соответствии с пропорциями, указанными в таблице:
№ проб |
мл Н2O |
мл 1 н NaCl |
Концентрация раствора (н) |
Какая форма плазмолиза преобладает? |
1 |
9 |
1 |
0,1 |
|
2 |
8 |
2 |
0,2 |
|
3 |
7 |
3 |
0,3 |
|
4 |
6 |
4 |
0,4 |
|
5 |
5 |
5 |
0,5 |
|
6 |
4 |
6 |
0,6 |
|
7 |
3 |
7 |
0,7 |
|
8 |
2 |
8 |
0,8 |
|
9 |
1 |
9 |
0,9 |
|
10 |
|
10 |
1,0 |
|
Приготовить срезы эпидермиса лука и через равные интервалы времени (3 минуты) опускать их в растворы в порядке убывания концентраций, т.е. начиная с раствора №10 на 30 минут.
Через 30 минут после опускания первых срезов в бюкс №10 начать просмотр срезов в порядке их закладки в капле соответствующего раствора. Результатом наблюдения должно быть указание преобладающей формы плазмолиза в правом крайнем столбце таблицы. Наблюдателю следует определиться в том, какая из форм плазмолиза (уголковый, вогнутый, выпуклый) наблюдается более чем в 50% клеток. Если преобладают неплазмолизированные клетки - в таблице следует записывать: «плазмолиза нет».
Определить изотоническую концентрацию, как среднюю между той, которая вызывает уголковый плазмолиз, и ближайшей к ней, которая плазмолиза не вызывает.
|
|
|
Зная изотоническую концентрацию, вычислить осмотическое давление клеточного сока в атмосферах по формуле: Р=RTiC,
где Р - осмотическое давление в атмосферах, R - газовая постоянная, равная 0,0821 (латм)/(мольград), Т -абсолютная температура раствора, равная 273+температура в градусах Цельсия во время опыта, i -изотонический коэффициент (для не электролитов всегда равен 1, для электролитов всегда больше 1), C -концентрация (в молярном выражении) растворенного вещества.
|
|
|
Реактивы и оборудование: 10 бюксов с пробками, 2 бюретки, предметные и покровные стёкла, бритвенные лезвия, препаровальные иглы, дистиллированная вода, 1 н раствор NaCl, репчатый лук, микроскоп, полоски фильтровальной бумаги.
Работа 4. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ИНТЕНСИВНОСТИ ТРАНСПИРАЦИИ ВЕСОВЫМ МЕТОДОМ
Ключевые слова: Водный баланс и его составляющие. Транспирация — верхний концевой двигатель водного тока (источник энергии для его работы). Другие функции транспирации, типы транспирации (устьичная, кутикулярная, перидермальная). Методы оценки транспирации (прямые и косвенные). Показатели, характеризующие транспирацию (интенсивность, продуктивность, транспирационный коэффициент, относительная транспирация). Зависимость интенсивности транспирации от условий среды (скорость ветра, влажность, освещенность, концентрация СО2). Уравнение Дальтона. Зависимость транспирации от размеров листа, его опушения, наличия других близко растущих растений. Гуттация и условия, в которых она наблюдается. Гидатоды — органы выделения жидкой воды, влияние недостатка влаги в листьях на способность поглощать воду.
Транспирацией называют физиологический процесс испарения воды растением. Наибольшее значение имеют устьичная и кутикулярная транспирация. Интенсивность транспирации является важнейшим физиологическим показателем состояния растения. Она измеряется количеством воды, испарённой с единицы площади листа за 1 час: Тi=mводы/S·t.
Существуют прямые и косвенные методы определения интенсивности транспирации. При прямом методе оценивается количество воды, испарённой растением. Для этого, например, пользуются поглотителями. При косвенном определении интенсивности транспирации учитывают не количество воды, а какой-либо иной параметр, например изменение веса растения. В данной работе используются косвенные методы определения интенсивности транспирации: в приборе Веска и на торсионных весах.