6 курс / Медицинская реабилитация, ЛФК, Спортивная медицина / Физиотерапия, лазерная терапия / Электрофорез_лекарственных_веществ_Улащик_В_С

шеечного или конус шеечно-внутришеечного электрода (диск должен плотно прилегать к шейке матки). С помощью резинового баллона емкостью 100 мл вливают во влагалище раствор лекарственного вещества (например, 1%-ный раствор цинка сульфата) в таком количестве, чтобы вся влагалищная часть шейки полностью погрузилась в лекарственный раствор. Створчатое зеркало во время процедуры не удаляют.

Внутриорганные методики лекарственного электрофореза применяют также в урологии (И. Н. Сосин, М. М. Мирсаматов, 1992). Ректальный электрофорез (И. Ф. Юнда, 1989) проводится с помощью наливного электрода в виде пластмассового цилиндра, в центре которого закреплен графитовый стержень с двумя трубками. Больному в положении на левом боку с согнутыми

вколенях ногами в прямую кишку вводят электрод на глубину 6–10 см. Затем прямую кишку и полость электрода заполняют 100–150 мл жидкости, в которой растворено лекарственное вещество. Второй электрод с прокладкой (8x12 см) располагают

внадлонной области и в зависимости от полярности вводимого

170

парата для гальванизации и электрофореза. Полость зуба закрывается воском (рис. 55). Второй электрод с прокладкой обычно фиксируется на предплечье.

При нашем участии (А. с. № 1127599, СССР) разработан внутрипищеводный электрофорез лекарств для лечения наджелудочковых нарушений ритма (В. С. Улащик и соавт., 1982). Сущность процедуры сводится к следующему. Больному в положении лежа на спине вводят пищеводный катетер-электрод, имеющий отведения для регистрации пищеводной электрокардиограммы. Электрод по пищеводу спускают на 35–40 см до места наиболее тесного соприкосновения пищевода с перикардом. Правильность расположения катетера-электрода определяют пу­ тем записи ЭКГ. Электрод заполняют рабочим раствором противоаритмического средства (например, обзидана) и соединяют через тонкий гибкий проводник с одним из полюсов источника постоянного тока, а второй электрод с гидрофильной прокладкой накладывают поперечно по отношению к первому и подсоединяют ко второму полюсу источника тока.

171

Первый вариант. На иглу,

отступив 2 мм от среза, после предварительного кольцевидного уменьшения толщины стенки припаивают цилиндрическую муфту, конусовидно истончаемую по направлению к срезу с образованием гладкого перехода от иглы к муфте для предотвращения дополнительной травматизации прокалываемой стенки. На корпус иглы от муфты до канюли надевают электроизолирующую фторопластовую трубку. Неизолированный периферический отрезок иглы с муфтой является активным электродом. Приготовленную иглу путем пункции в типичном месте вводят в пазуху с прохождением муфтой костной стенки. Необходимо тщательно следить за сохранением целости электроизолирующей трубки.

Второй вариант. На противостоящих участках фторопластовой трубочки с внутренним диаметром и длиной, равными

172

наружному диаметру иглы Куликовского, и протяженностью от канюли до среза, отступив на 2 мм от края, наносят два продолговатых отверстия величиной 2×1 мм, которые вместе с торцовым просветом служат для стока гальванического тока. Путем контрольной примерки устанавливают расстояние, на которое может быть сдвинута трубка в направлении верхушки иглы,

стем чтобы срез последней вместе с изогнутой частью вошел в трубку, а острие находилось на одном уровне с ее краем или значительно выступало. По длине, одинаковой с установленной величиной сдвига, заготавливают кусок хлорвиниловой трубки

свнутренним диаметром, превосходящим наружный у фторопластовой, который надевают на последнюю и помещают у основания иглы. После типичной пункции сформированной иглой с трубками в исходном положении фторопластовую трубку в полости пазухи смещают по игле на длину хлорвиниловой, но не достигают противоположной стенки. Прилегающие к торцовому и боковым отверстиям трубки неизолированные фрагменты иглы выполняют функцию активного электрода.

Третий вариант. На иглу Куликовского от канюли до изгиба заостренной части плотно надевают фторопластовую трубку. После обычного прокола медиальной стенки верхнечелюстной пазухи осторожным продвижением вверх и кнаружи достигают противолежащего участка пазухи, после чего иглу возвращают назад на расстояние, не меньшее известной величины утолщения слизистой оболочки. Металлический периферический отрезок иглы, остающийся неприкрытым, служит внутрисинусным активным электродом. Возвратным движением при укороченном в 2–3 раза срезе иглы и беспрепятственном прохождении промывной жидкости гарантируется внетканевая локализация электроактивного конца иглы.

Во всех случаях после промывания пазухи и введения лекарственного препарата к игле присоединяют переходник, связанный с системой переливания СП-101 и аппаратом для гальванизации. Раствор медикамента капельно со скоростью 10 капель в минуту поступает в пазуху в дозировке, не превышающей допустимую для перорального применения. Индифферентный

173

электрод размещают на коже щеки или в подчелюстной области той же стороны. Продолжительность процедуры – 10–15 мин, сила тока – 0,2–0,4 мА. Для электрофореза употребляют однокомпонентные или смешанные растворы из двух и более ингредиентов одинаковой полярности.

При гайморитах с хорошо сохранившейся или мало пострадавшей эвакуацией содержимого из пазух внутрисинусный электрофорез осуществляют в основном по первому варианту. Его же применяют при узком нижнем носовом ходе и утолщенной кости прокалываемой стенки, когда затруднительно проведение трубок в пазуху при втором и третьем варианте метода.

При гайморитах с доминирующими в патогенезе выраженными нарушениями естественного опорожнения пазух, являющимися одной из частных причин затянувшегося хронического течения, предпочтительны второй и третий варианты методики, предусматривающие одновременное длительное дренирование пазух. Пристеночная гиперплазия слизистой оболочки более 3–4 мм относится к противопоказаниям для этого вида лечения. После выполнения первой процедуры иглу извлекают, а фторопластовую трубку оставляют в пазухе. Через нее дополнительно 1–2 раза в день удаляют экссудат и вводят растворы лекарств. В процессе повторных процедур игла Куликовского при удержании наружного конца трубки ушным пинцетом без заметного усилия проходит по трубке в пазуху.

Для промывания пазух и заполнения системы применяют растворы фурацилина 1:5000 и риванола 1:1000. Разбавление введенного в пазуху после промывания этиотропного медикамента последующим капельным поступлением антисептиков за период электрофореза не превышает 1/3–1/2 первоначальной концентрации. Замедленный темп капельного вливания субъективно не обременителен для больного и способен поддерживать полную гидрозаполняемость пазухи как предпосылку успешного проведения внутрисинусного электрофореза.

При острых воспалениях, ведущее место в развитии которых отводится микробному фактору, с учетом антибиотикограммы применяют в однократных дозировках мономицин (100 000 ЕД),

174

левомицетин (0,25%-ный – 5,0), стрептомицин (250 000 ЕД) и др. При хронических воспалениях, протекающих на аллергическом фоне, лечение корригируется добавлением димедрола (1%-ный – 0,5), хлористого кальция (10%-ный – 1,0), новокаина (0,25%-ный –

2,0), преднизолона (3%-ный – 0,25).

Известны еще также особые и сочетанные способы лекарственного электрофореза, которые будут рассмотрены нами в последующих главах.

7.3. Электроды и прокладки для лекарственного электрофореза

Для подведения электрического тока к телу пациента и обеспечения электротранспорта лекарственных веществ в организм служат токонесущие электроды. Они изготавливаются из различных неполяризующихся материалов, чаще из металлов. Материалом для электродов могут служить платина, золото, серебро, свинец, алюминий и станиоль. В гинекологии, проктологии

иофтальмологии используют, как уже отмечалось, угольные

идеревянные электроды. До последнего времени во многих странах наиболее часто электроды изготавливались из листового свинца (толщина 0,5–1,0 мм), плакируемого обычно тонким слоем олова. Листовой свинец удобен тем, что легко принимает форму поверхности человеческого тела, на которую накладывается, позволяет придавать электроду любую форму, хорошо проводит электрический ток. Вместе с тем свинцовые электроды имеют и существенные недостатки:

а) при соприкосновении с влагой поверхность электрода быстро покрывается налетом окиси свинца, что приводит к нарушению его электропроводности и неравномерному прохождению тока по нему; удаление же окиси свинца с поверхности электрода сопровождается быстрым изнашиванием пластин;

б) при проведении лечебных процедур с постоянным током ионы свинца могут поступать в организм пациента, что весьма нежелательно; уменьшению поступления свинца с поверхности электрода в организм препятствует применение ионитовых мембран и защитных прокладок;

175

в) производство свинца сравнительно дорого, а для обеспечения физиотерапевтической службы нужны его значительные количества.

Всвязи с вышеуказанными недостатками свинцовых электродов постоянно ведутся поиски новых материалов для изготовления токопроводящих электродов. И. Е. Оранским с соавт. (1972) для гальванизации и лекарственного электрофореза предложено использовать электроды из алюминиевой фольги (А-6, ГОСТ-64) и металлопластиковые электроды (синтетическая пленка, покрытая с двух сторон алюминиевой фольгой толщиной 10 мк). Согласно проведенным медико-техническим испытаниям, эти электроды обладают хорошей электропроводностью, устойчивостью в растворах, малой активностью ионообразования, достаточной пластичностью и дешевы в изготовлении.

К металлическим токонесущим электродам, применяемым при лекарственном электрофорезе, предъявляется ряд требований: они должны быть с закругленными концами, без неровностей и заусениц. Площадь и форма электродов обычно соответствует размерам и конфигурации патологического очага или области воздействия.

Для изготовления токонесущих электродов предложена углеродистая (графитизированная) ткань. Она обладает большой прочностью, гибкостью, эластичностью, огнестойкостью и влагоустойчивостью,неизменяетсвоихэлектрическихимеханических свойств при кипячении, при прохождении тока и не выделяет токсические ионы. В результате испытаний установлено, что они лишены отрицательных свойств свинцовых электродов и могут использоваться для гальванизации и электрофореза, других электротерапевтических процедур (А. П. Сперанский и соавт., 1972).

Вряде стран токонесущие электроды изготавливаются из токопроводящих резин или полимерных материалов, могут покрываться адгезивом. На рис. 57 показано устройство двух наиболее типичных электродов такого рода (гелевого и с резервуаром для лекарственного раствора). Еще более сложную конструкцию имеют электроды, применяемые в трансдермальных системах (см. далее).

176

Рис. 57. Устройство типичных токонесущих электродов

Для предупреждения повреждающего действия продуктов электролиза на ткани и подлежащие введению лекарственные вещества между телом человека и металлическими электродами при электрофорезе помещается гидрофильная прокладка. Такая прокладка должна изготавливаться из светлых материалов, легко впитывающих воду, – обезжиренная кипячением марля, фланель, байка или бязь. В стоматологии применяются прокладки из синтетической губки. Не пригодны для этих целей шерстяные и окрашенные ткани: первые плохо впитывают воду и про-

177

водят электрический ток; вторые могут быть источником паразитарных ионов (краситель). Величина и форма матерчатых гидрофильных прокладок зависят от размеров поверхности

иконфигурации тела, в которое вводится лекарство. Толщина прокладок должна быть достаточной (не менее 1 см), чтобы исключить действие продуктов электролиза на ткани. Для создания одинаковой плотности тока при проведении процедуры необходимо, чтобы металлический электрод не доходил до краев гидрофильной прокладки (со всех сторон) на расстояние, равное ее толщине или немногим больше (1–2 см). Предельно возможное отношение площади гидрофильной прокладки и токонесущего электрода равно 2:1. Большее увеличение площади гидрофильной прокладки относительно электрода нецелесообразно.

Для каждого лекарственного вещества необходимо иметь свой комплект гидрофильных прокладок. На прокладке делается пометка, указывающая, для какого лекарственного вещества она предназначена. После процедуры прокладки необходимо тщательно промыть проточной водой, простерилизовать кипячением и просушить в сушильном шкафу. Промывать и кипятить прокладки, используемые при электрофорезе разных веществ, следует раздельно.

Существует несколько способов использования и изготовления гидрофильных прокладок. Наиболее часто гидрофильные прокладки изготавливаются в виде салфеток (пеленок) различных размеров. Перед использованием они складываются в 8–16 слоев для достижения нужной толщины. Нередко прокладки выкраивают по требуемой форме и прошивают по краям, оставляя с одной стороны карман для токонесущего электрода. При использовании прокладок в виде простыней имеются трудности в приготовлении индивидуальных прокладок точных размеров

ифигурных прокладок. Сшиваемые по всем краям прокладки плохо обрабатываются и быстро изнашиваются. Этих недостатков лишена предложенная нами совместно с Э. С. Кашицким (1972) прокладка, изготавливаемая в виде «школьной тетради». Несколько сложенных обрубленных по краям кусков (5–6) материи прошиваются посередине, а затем складываются по шву.

178

Два наружных слоя прокладки сшиваются с двух сторон, образуя карман для электрода. Такие прокладки легко стираются, хорошо сушатся, имеют постоянные размеры и длительно эксплуатируются.

Для усиления защитной функции гидрофильных прокладок прибегают к различным дополнительным мерам. При электрофорезе антибиотиков с этой целью применяют утолщенные прокладки с защитными растворами (5%-ный раствор глюкозы или 1%-ный раствор гликокола). Для устранения проникновения свинца в организм при гальванизации и лекарственном электрофорезе могут быть использованы барьерно-содовые прокладки (В. А. Гиря, 1966). Они помещаются между гидрофильной прокладкой и токонесущим свинцовым электродом, подключаемым к положительному полюсу. Прокладки делаются из нескольких слоев фильтровальной бумаги и смачиваются 1%-ным раствором натрия бикарбоната. Использование защитных растворов нам представляется не лучшим способом усиления активности гидрофильных прокладок, так как химические компоненты этих растворов могут быть источником паразитарных ионов. Заслуживающим внимания нам представляется предложение Е. Н. Цы­ гир и соавт. (1970–1972) об использовании катионитовых (на катоде) и анионитовых (на аноде) мембран. Их помещают между прокладкой с лекарственным веществом и гидрофильной прокладкой. Применение ионитовых мембран увеличивает введение лекарственныхвеществ,задерживаетпаразитарныеионы,устраняет вредное влияние продуктов электролиза и гидролиза. За рубежом с этой целью нередко пользуются обычным целлофаном, помещаемым между гидрофильной и лекарственной прокладками (Н. Pratzel, 1987). В некоторых областях медицины (например, в офтальмологии) для устранения отрицательного влияния продуктов электролиза могут быть использованы жидкостные неполяризующиеся электроды. Схема устройства одного из них, предложенного Б. В. Богуцким и соавт. (1972), представлена на рис. 58.

Для нанесения растворов лекарственных веществ при трансдермальном способе электрофореза используется так называе-

179