- •Ведение
- •Глава 1. Метаболизм чужеродных соединений
- •1.1 Ферменты 1-й фазы метаболизма ксенобиотиков
- •1.1.1. Цитохромы р450. Структура и функция
- •1.1.2. Множественные формы цитохрома р450
- •1.1.3. Способность цитохромов р450 к индукции
- •1.1.4. Механизм индукции цитохрома р450 1а1
- •1.1.5. Конститутивная экспрессия цитохрома р450 1а2 и его индукция
- •1.1.6. Механизм индукции цитохромов р450 2в и 2с барбитуратами
- •1.2.1. Уридин дифосфатглюкуронозил трансферазы (удt)
- •1.2.2. Глютатион-s-трансферазы (гsт)
- •1.2.4. Сульфотрансферазы
- •1.2.5. Эпоксидгидролаза
- •Глава 2. Распределение, накопление и элиминация токсинов
- •2.1. Органо- и тканеспецифичность в распределении токсинов
- •2.1.1. Печень
- •2.1.2. Почки
- •2.1.3. Кожа
- •2.1.4. Легкие
- •2.1.5. Нервная система
- •2.1.6. Репродуктивная система
- •2.2. Токсикокинетика
- •2.3. Токсикология развития
- •2.4. Методы тестирования биологических эффектов токсинов
- •Глава 3. Современные представления о химическом канцерогенезе
- •3.1. Классификация канцерогенов
- •3.2 Полициклические ароматические углеводороды
- •3.3. Нитрозоамины
- •3.4. Ароматические амины
- •3.5. Афлатоксин в1
- •3.6. Гетероциклические амины
- •3.7. Мышьяк
- •3.8. Тхдд
- •3.9. Курение
- •Глава 4. Повреждение днк и репарация
- •Глава 5. Сигнальная трансдукция
- •5.1. Онковирусы, онкогены и раковые супрессорные гены
- •5. 2. Вирусы, вызывающие рак
- •5. 3. Протоонкогены и онкогены
- •5. 4. Основные пути сигнальной трансдукции.
- •5.4.1. Факторы роста и их рецепторы
- •5.4.2. Механизм действия ras белка
- •5.4.3. Мар киназы
- •5.5. Оксидативный стресс
- •5.6. Теломераза
- •5.7. Раковые супрессорные гены.
- •5.7.1. Rb белок
- •5.7.2.Белок р53
- •Глава 6. Регуляция клеточного деления. Циклины и циклин-зависимые киназы
- •6.1. Периоды клеточного цикла
- •6.2. Понятие ограничительной и сверочных точек
- •6. 3. История изучения клеточного цикла
- •6. 4. Циклин-зависимые киназы и циклины
- •6.5. Регуляция активности Cdk
- •6.6. Ингибирующее фосфорилирование.
- •6.7. Регуляция циклинов
- •Глава 7. Механизмы запрограммированной клеточной гибели. Апоптоз
- •7.1. Морфология апоптоза.
- •7.2. Молекулярно-генетические аспекты апоптоза.
- •7.3. Характеристика белков Вcl-2
- •Заключение
- •Библиографический список
1.2.2. Глютатион-s-трансферазы (гsт)
Глютатион (ГSH) представляет собой трипептид, состоящий из глицина, цистеина и
-карбоксильную группу. Вглутаминовой кислоты, которая связана с цистеином через
результате нуклеофильной атаки глютатион тиолат аниона на электрофильный атом углерода,
кислорода, азота или серы ксенобиотика, формируется тиоэфир.
Конъюгация ксенобиотиков с глютатионом катализируется суперсемейством глютатион-S-
трансфераз (ГSТ). Эти белки
обнаружены в большинстве тканей, а именно в печени, почках, тонком кишечнике, легких и
т.д. 95% от общего содержания фермента локализовано в цитоплазме и около 5% - в
эндоплазматическом ретикулуме. Субстратами для ГSТ обычно являются гидрофобные
соединения, содержащие электрофильный атом способные реагировать с глютатионом
неферментативно. На рис. 8 представлена типичная реакция, катализируемая ГST. Однако,
из-за стереоселективности реакций с ксенобиотиками, в основном они протекают при
участии ГST. Механизм, с помощью которого ГST усиливает скорость конъюгации, состоит в
депротонировании ГSH до ГS- . В этой реакции принимает участие тирозинат Tyr-O- ,
расположенный в активном центре. Субстраты для глютатионовой конъюгации можно разделить
на две группы: 1) достаточно электрофильные для осуществления прямой конъюгации, 2)
требующие активации до реакции конъюгации. 2-я группа соединений включает в себя
оксиарены, эпоксиды алкенов, ионы нитрония, ионы карбония и свободные радикалы. ГST
представляет собой димер, составленный из комбинации 2-х идентичных или неидентичных
субъединиц. Описаны следующие генные семейства ГST, кодирующие цитозольные ферменты:
alpha, mu, theta, pi, zeta. Классификация построена на основе структурных,
иммунологических и функциональных свойств. Показано, что ГST, принадлежащие к различным
классам, могут обладать перекрывающейся субстратной специфичностью. Субъединицы,
принадлежащие к различным классам, имеют менее 50% гомологии аминокислотной
последовательности. Субъединицы в пределах одного класса имеют около 70% гомологии.
Гедеродимеры могут формироваться только при участии субъединиц, принадлежащих к одному
классу. Семейства цитозольных ГST имеют общее эволюционное происхождение, причем
-классу. Микросомальные формы фермента возникли изпредковый ген наиболее близок к
отдельной эволюционной ветви.
ГST представлены суперсемейством мультифункциональных изоферментов, которые
способствуют процессам детоксикации, используя различные механизмы, включая 1)
каталитическую инактивацию широкого спектра ксенобиотиков через конъюгацию с ГSH; 2)
некаталитическое связывание определенных ксенобиотиков; 3) восстановление липид- и ДНК-
гидропероксидов через экспрессию активности ГSH-пероксидазы 2.
ГST играют важную роль в детоксикации Афлатоксин В1-8,9-эпоксида. Показано, что
у грызунов отсутствие фермента, отвечающего за катализ этой реакции, связано с
повышенной чувствительностью к раку печени. Интенсивно изучается метаболизм известного
ПАУ – бенз[а]пирена (БП). Показано, что ГST печени человека обладают каталитической
активностью по отношению к реактивному метаболиту БП – БП-4,5-оксиду. Это соединение
дает позитивный ответ в тесте на мутагенность, хотя и не вовлекается напрямую в
канцерогенез. Кроме метаболизма канцерогенов, ГST детоксицирует широкий спектр других
ксенобиотиков, например фосфорорганические инсектициды, гербициды, пестициды,
химиотерапевтические лекарства. Дополнительно к защитным свойствам, ГST участвует в
биосинтезе биологически активных молекул, включая лейкотриены и простагландины.
1.2.3. N-ацетилтрансферазы
N-ацетилирование – основной путь биотрансформации для ароматических аминов или
ксенобиотиков, в том числе и лекарств, содержащих гидразогруппу (R-NH-NH2), которые
превращаются в ароматические амиды (R-NH-COCH3) или гидразиды (R-NH-NH-COCH3),
соответственно. Первичные алифатические амины редко подвергаются N-ацетилированию за
исключением цистеиновых конъюгатов, образующихся из глютатионовых, которые, в свою
очередь, путем N-ацетилирования в почках превращаются в меркаптуровую кислоту. Многие N-
ацетилированные метаболиты менее, чем исходные соединения, растворимы в воде. Однако в
отдельных случаях, например, для изониазида, N-ацетилирование облегчает экскрецию
метаболитов с мочой.
Реакция N-ацетилирования катализируется ферментами, называемыми N-
ацетилтрансферазы (NAT) и требует присутствия ацетил-кофермента А (Ац-КоА) в качестве
кофактора. Реакция протекает в два последовательных шага. Первым этапом ацетильная
группа Ац-КоА переносится к цистеиновому остатку внутри активного центра фермента с
высвобождением кофермента А:
E-SH + КoA-COCH3 →E-S-COCH3 + КoA-SH
Вторым шагом ацетильная группа Ац-КоА переносится с ацетилированного фермента
на аминогруппу субстрата. Для сильноосновных аминов скорость N-ацетилирования
определяется первым шагом , тогда как для слабоосновных – вторым. В определенных
случаях NAT могут катализировать реакцию О-ацетилирования.
NAT – цитозольные ферменты, которые были найдены в печени и многих других
тканях у большинства видов млекопитающих, за исключением лис и собак, неспособных к N-
ацетилированию ксенобиотиков.
У кроликов, мышей экспрессируется две формы NAT, обозначаемых NAT1 и NAT2. По
последним данным у человека идентифицировано, кроме этих двух классов, еще 3 класса
ферментов: арилалкин-N-ацетилтрансфераза (AANAT), L1-протеин-регулятор адгезии клеток
(L1 CAM) и гомолог Saccharomyces cerevisiae N- ацетилтрансферазы у человека (ARD1).
NAT1 и NAT2 являются близкими по первичной структуре (79-95% гомологии
аминокислотной последовательности, в зависимости от вида). У всех белков в активном
центре присутствует цистеин (Cys68). Оба белка кодируются генами, не содержащими
интронов. Гены NAT хотя и расположены на одной хромосоме, но регулируются независимо
друг от друга. NAT1 экспрессируется в большинстве тканей организма, тогда как NAT2, по-
видимому, только в печени и кишечнике. Эти ферменты отличаются по субстратной
специфичности, хотя и имеется перекрывание. Субстратами, предпочтительно N-
ацетилируемыми человеческой NAT1, являются парааминосалициловая кислота,
парааминобензойная кислота, сульфаметоксазол. Субстраты, преимущественно N-цетилируемые
при участии NAT2, включают изониазид, гидралазин, сульфаметазин, дапсон. Некоторые
ксенобиотики, например, 2-аминофлуорен одинаково хорошо метаболизируются обоими
ферментами.
Генетический полиморфизм N-ацетилирования показан у хомяков, мышей, кроликов.
Вариации в NAT2-локусе отвечают за классический полиморфизм ацетилирования,
подразделяющий индивидуумов на «быстрых», «средних» и «медленных» ацетиляторов.
Определенные вариации NAT1-локуса приводят к усилению активностей N-, О- или N,О-
ацетилирования по сравнению с диким типом. Серия клинических наблюдений, проведенных в
50-х годах, установила существование так называемых ««медленных»» ацетиляторов
антитуберкулезного лекарства изониазида. Встречаемость этого фенотипа довольно высокая
на Среднем Востоке (около 70% в Египте и Саудовской Аравии), средняя в Европе, на
Кавказе, в Америке и Австралии (около 50%), низкая в азиатской популяции (менее 25% в
Китае, Японии, Корее). В настоящее время варианты по статусу ацетилирования описаны и у
человека и у животных. Фенотип медленного ацетилирования возникает в результате мутаций
NAT2 гена, которые приводят либо к снижению активности фермента, либо к снижению его
стабильности. Например, точковая мутация в 341 нуклеотиде приводит к аминокислотной
замене Ile114 - Thr и снижает максимальную скорость N-ацетилирования (Vmax) без
изменения Кm для связывания субстрата или стабильности фермента. Эта мутация часто
встречается среди кавказской популяции, но редко среди азиатской. Внутри фенотипа
медленного ацетилирования существуют значительные вариации в скорости ацетилирования
ксенобиотиков, поскольку различные мутации оказывают различное действие на активность
и/или стабильность NAT2. У «медленных» ацетиляторов значительным оказывается N-
ацетилирование “NАT2-субстратов” при помощи NAT1.
Генетический полиморфизм NAT2 оказывает токсикологическое и фармакологическое
влияние на метаболизм лекарств, которые N-ацетилируются этим ферментом. Например,
фармакологический эффект антигипотензивного лекарства гидралазина является более
продолжительным у «медленных» ацетиляторов, тогда как медленные ацетиляторы
предрасположены к различным лекарственным отравлениям. «Медленные» ацетиляторы, которые
к тому же дефицитны по глюкозо-6-фосфатдегидрогеназе, особенно склонны к гемолизу под
действием определенных сульфонамидов. «Быстрые» ацетиляторы предрасположены к
миелотоксическим эффектам амонафидов, поскольку N-ацетилирование замедляет выведение
этих антинеопластических лекарств.