- •Перечень сокращений
- •Оглавление
- •Введение
- •Подготовка клинического материала для пцр-диагностики. Подготовка мокроты и мочи для выделения днк
- •Практическое занятие № 1
- •Пцр диагностика. Пробоподготовка
- •Практическое занятие № 2
- •Практическое занятие №3
- •Практическое занятие №4
- •Практическая работа №5
- •Практическая работа №6
- •Пцр в реальном времени
- •Детекция продуктов амплификации.
- •1. Выщепление 5' концевой метки (TaqMan Assay).
- •2. Использование зондов с комплементарными концевыми последовательностями (molecular beacons).
- •3. Применение 2-х зондов с резонансным переносом энергии (LightCycler assay).
- •4. Использование интеркалирующих агентов.
- •Кривые плавления
- •Практическая работа №7
- •Практическая работа №8
- •Пцр в диагностике гепатитов
- •Практическая работа №9
- •Практическая работа № 10
- •Типовые комплектации пцр-лаборатории Комплектация лаборатории №1 Real-time
- •Комплектация лаборатории №2
- •Список литературы
Практическая работа №6
Тема: ПЦР-амплификация с ДНК-зондами флуоресцентно меченными ДФ-520/560
Цель занятия: Освоить метод амплификации ДНК с флуоресцентной меткой
Задачи:
Освоить теоретический курс условий проведения амплификации с флуоресцентной меткой
Освоить технику программирования различных видов амплификаторов
Выучить основные технологические приемы подготовки проб к амплификации с флуоресцентной меткой
Ход работы:
Материалы и оборудование для проведения практического занятия.
Амплификатор «Терцик» с возможностью программирования и контроля за процессом без использования персонального компьютера
ПЦР детектор Джин- Предназначен для регистрации результатов ПЦР при использовании тест-систем, основанных на принципах флуоресцентной детекции (Рисунок 15)
П ЦР бокс БАВ-ПЦР- «Ламинар.-с»
Микроцентрифуга-вортекс FV-2400
Пипетка-дозатор «Колор» ( 0.5-10 мкл; 5-50 мкл (2 шт); 20-200 мкл; 100-1000 мкл)
Реакционная смесь, запечатанная парафином
Раствор Taq-полимеразы
Минеральное масло
Положительный контрольный образец
Комплект реагентов для ПЦР-амплификации ДНК методом полимеразной цепной, основан на принципах флуоресцентной детекции (гибридизация с зондами типа beacons (маячки)). Для детекции специфического продукта используется зонд с красителем FAM, для внутреннего контроля зонд с HEX.
Промаркируйте пробирки с запечатанной парафином реакционной смесью (с учетом пробирок для положительного контрольного образца - ПК, отрицательного контрольного образца - ОК и двух нормировочных пробирок - ФОН).
Добавьте в каждую пробирку (кроме пробирок ФОН), не повреждая слой парафина, по 10 мкл тщательно перемешанного раствора Taq-полимеразы. В пробирки, маркированные ФОН, добавьте по 10 мкл ПЦР-буфера без Taq-полимеразы.
Сверху наслоите 20 мкл минерального масла (приблизительно 1 капля из наконечника на 200 мкл).
А) Нанесите на стенку опытных пробирок 5 мкл выделенного из образца препарата ДНК, отрицательного контроля или положительного контрольного образца ДНК.
Б) Нанесите на стенку нормировочных пробирок 5 мкл раствора отрицательного контрольного образца, прошедшего пробоподготовку.
4. Центрифугируйте пробирки на вортексе в течение 3-5 сек.
5. Поместите опытные и нормировочные пробирки с подготовленной смесью в амплификатор. Для проведения реакции используйте программы, приведенные в табл. 1-3, для амплификатора типа МС2, запрограммированного на объем 35 мкл в режиме «Precise» («Точный»).
Таблица 6 Режим амплификации 1
Температура |
Время |
Количество циклов |
94°С |
1 мин |
1 |
94°С 64°С 67°С |
5 с 5 с 5 с |
5 |
94°С 64°С 67°С |
1 с 5 с 5 с |
40 |
10°С |
хранение |
Таблица 7 Режим амплификации 2
Температура |
Время |
Количество циклов |
94°С |
1 мин |
1 |
94°С 67°С |
5 с 15 с |
5 |
94°С 67°С |
1 с 15 с |
40 |
10°С |
хранение |
Примечание 1. Циклированные нормировочные пробирки допускается использовать многократно в течение 1 мес при очередной детекции результатов ПЦР с опытными пробирками из той же серии комплекта реагентов для ПЦР-амплификации ДНК. Циклированные нормировочные пробирки необходимо хранить при +4°С в темном месте. При проведении детекции нормировочные пробирки должны иметь комнатную температуру, для чего за 1 час до проведения детекции их необходимо достать из холодильника.
Таблица 8 Режим амплификации 3
Температура |
Время |
Количество циклов |
94°С |
1 мин |
1 |
94°С 67°С |
5 с 15 с |
5 |
94°С 67°С |
1 с 15 с |
30 |
10°С |
хранение |
Режим амплификации 1 предназначен для выявления следующих. микроорганизмов:
Хламидия трахоматис (Chlamydia trachomatis), Микоплазма гениталиум (Mycoplasma genitalium) Уреаплазма парвум (Ureaplasma parvum), Уреаплазма уреалитикум (Т-960) (Ureaplasma urealyticum), Трихомонас вагиналис (Trichomonas vaginalis), HHV-6, HHV-8, Цитомегаловирус (CMV), Нейссерия гонореи (Neisseria gonorrhoeae), Кандида альбиканс (Candida albicans), Бордетелла пертуссис (Bordetella pertussis), Легионелла пневмофила (Legionella pneumophila), Хеликобактер пилори (Helicobacter pylori), Коринебактерия дифтерия (Corynebacterium diphtheriae) токсигенные штаммы, Стрептококк группы А (Streptococcus pyogenes), Токсоплазма гондии (Toxoplasma gondii), Вирус Эпштейна-Барр (ЕВУ), Вирус варицелла зостер (VZV)
Режим амплификации 2 предназначен для выявления следующих микроорганизмов:
Микоплазма хоминис (Mycoplasma hominis), Уреаплазма уреалитикум (Т-960) и Уреаплазма парвум (Ureaplasma urealyticum+Ureaplasma parvum), Вирус простого герпеса 1,2 (HSV-1,2), HPV 16, HPV 18, Микобактерия туберкулеза- микобактерия бовис комплекс (М. Tuberculosis - М. Bovis)
Режим амплификации 3 предназначен для выявления следующих микроорганизмов:
Гарднерелла вагиналис (Gardnerella vaginalis)
II. Проведение детекции и учет результатов ПЦР-амплификации ДНК Детекция и учет результатов ПЦР-амплификации ДНК проводится с помощью ПЦР-детектора Джин, согласно инструкции к прибору (пороговые значения для специфического продукта составляют 1,75-2,10, для внутреннего контроля - 2,50) или с помощью гель-электрофореза
П орядок работы с прибором Джин
Рисунок 16. Главное окно программы
Рисунок 17. Окно создания протокола
Для создания протокола необходимо последовательно заполнить колонки «с» и «по» (соответственно первый и последний номер пробирок), выбрать тест и занести количество фоновых пробирок (Рисунок 16).
В поле «Протокол №» заносится информация о номере протокола. А в поле «Оператор» выбирается имя оператора .
Создаем новый протокол детекции
2. После создания протокола приступаем к проведению детекции результатов ПЦР.
Для продолжения детекции нажимаем кнопку , далее работа продолжается и на экран выводится результат (Рисунок 17).
Результаты обработки сигналов представлены в виде таблицы и гистограммы нормированных величин сигналов (Рисунок 18, 19).
Рисунок 18. Главное окно программы с результатами анализа
Рисунок 19. Варианты результатов анализа
Контрольные вопросы:
Расскажите теоретические основы работы диагностических наборов с ДНК-зондами флуоресцентно меченными
Устройство и принципы работы флуоресцентного детектора
Используя интерфейс компьютера, подготовьте Протокол детекции флуоресценции для качественного анализа
Прокомментируйте полученный результат детекции диагностических наборов с ДНК-зондами флуоресцентно меченными