Стерилизация и дезинфекция наркозно - дыхательной аппаратуры.

Стерилизация— это разрушение всех форм микроорганизмов, включая споры; дезинфекция— разрушение микроорганизмов в вегетативной форме.

Трудности стерилизации и дезинфекции наркозно – дыхательной аппаратуры обусловлены сложностью методов, громоздкостью, длительностью экспозиции, дороговизной современной аппаратуры для стерилизации, что делает ее малодоступной для широкой сети лечебных учреждений Многие доступные методы не обеспечивают адекватного обеззараживания наркозно - дыхательной аппаратуры. По данным литературы, при ИВЛ от больного в аппарат поступает 50 — 120 бактерий в час. Чаще всего в узлах аппарата обнаруживают различную кокковую флору, кишечную палочку, протей, синегнойную палочку и др. Местами наибольшего инфицирования наркозно - дыхательной аппаратуры являются увлажнитель, сборник конденсата, дыхательные шланги.

Из бактериологических методов исследования аппаратуры более эффективна заливка бульона в тот или иной узел аппарата. Тампонный способ менее точен, так как не позволяет выявить микроорганизмы в труднодоступных частях аппарата.

К физическим методам относятся автоклавирование (обработка паром под давлением), использование сухожаровых способов, кипячение. Для тех же целей используют ионизирующие излучение, ультрафиолетовое облучение, ультразвуковые установки. Недостатками этих методов являются их способность повреждать неметаллические узлы наркозно - дыхательных аппаратов, а также их громоздкость, дороговизна, потребность в специальном обслуживании и др.

Химические методы стерилизации и дезинфекции более распространены и основаны на применении газообразных и жидких веществ.

Окись этилена [(СН₂)₂О] — сильнейшее газообразное бактерицидное вещество. Обладает выраженными токсическими свойствами. Взрывоопасно. Для уменьшения этой опасности окись этилена применяют в смеси с 90% углекислого газа или 88% фреона. Для стерилизации окисью этилена требуется обычно 600 мг/л препарата, экспозиция 3 ч. Она сокращается при использовании вакуума, повышении концентрации препарата и давления.

Стерилизацию проводят в герметичных камерах-аппаратах различной вместимости (до 500 л), где температура, влажность, концентрация и удаление препарата регулируются автоматически. Для полного удаления остатков окиси этилена, особенно из резиновых и пластмассовых изделий, активно адсорбирующих газ, при обычном проветривании требуется 6—7 дней, что создает большие неудобства. Для сокращения сроков элиминации окиси этилена до 8—12 ч аппараты продувают нагретым воздухом (50 — 60 °С).

Окись этилена вызывает серьезные токсические повреждения, которые клинически проявляются покраснением и отечностью лица, век, слизистых оболочек верхних дыхательных путей, трахеи и бронхов, одышкой, цианозом. Особенно опасно применение эндотрахеальных трубок, адсорбировавших препарат. Даже кратковременное пребывание таких трубок в дыхательных путях приводит к ожогам и некрозам с последующим развитием стенозов гортани и трахеи, повреждению голосовых связок и т.д. Следует тщательно соблюдать все правила использования этого эффективного, но потенциально опасного средства.

Формальдегид (СН₂0) — бесцветный газ, хорошо растворимый в воде, с резким запахом. Обладает специальными бактерицидными и спороцидными свойствами. Для стерилизации наркозно - дыхательной аппаратуры используют формалин — 40 % водный раствор формальдегида. Аппараты стерилизуют в специальных камерах ("АSЕРТОR" фирмы "Draegerwerk") с последующей нейтрализацией паров формалина аммиаком или нашатырным спиртом. Для повышения эффективности рекомендуют подогревать формалин до 40 °С. Указанный раствор можно распылять с помощью пульверизатора.

Используют также аэрозольные упаковки, содержащие раствор формальдегида в этиловом спирте.

Стерилизация формальдегидом требует много времени: в камере "АSЕРТОR" — до 10 ч, а при использовании аэрозольных упаковок с циркуляцией паров в замкнутом контуре аппарата ИВЛ — 14 ч. Формальдегид вызывает раздражение кожи и слизистых оболочек, способствует появлению аллергических реакций, окисляет металлические детали аппаратов, отрицательно влияет на пластмассу и резину.

Хлоргексидин (гибитан) [1,6-ди-(N-р-хлорфенилдигуанидо)-гексан]. Применяют водные и спиртовые растворы различной концентрации. Препарат обладает широким спектром действия, высокоэффективен в отношении синегнойной палочки. Хлоргексидин малотоксичен, не раздражает кожу и слизистые оболочки. Нейтрален в отношении металла, резины, латекса, пластмасс, стекла. Для стерилизации наркозно - дыхательной аппаратуры предложено много способов с использованием 0,1 — 1% водных или спиртовых растворов хлоргексидина. Эффективным оказался способ стерилизации, разработанный во ВНЦХ АМН СССР [Вартазарян Д. В., 1977]. Вначале съемные части аппарата промывают водой» затем обрабатывают в водном 0,5% растворе хлоргексидина в течение 30 мин, после чего вновь промывают водой и собирают аппарат. В испаритель заливают 40 мл 0,5% раствора хлоргексидина, а в увлажнитель — 0,02% водный раствор этого препарата. Включают аппарат на 60 мин (полузакрытый контур). По данным литературы, хлоргексидин наряду с уничтожением всех вегетативных форм бактерий эффективно воздействует и на споры.

Перекись водорода (Н₂О₂). Используют 20% раствор антисептика в виде простого или ультразвукового аэрозоля. Препарат преимущественно эффективен в отношении грамотрицательной флоры. Спороцидное действие перекиси водорода, по данным литературы, сомнительное. Для уничтожения вегетативных форм требуется экспозиция от 2 до 12 ч.

Надуксусная кислота— очень сильный антисептик, в одинаковой степени уничтожающий всевозможные микроорганизмы и их споры. Особенно эффективна в виде ультразвукового аэрозоля. Для стерилизации анестезиологической аппаратуры используют 0,5% водный раствор надуксусной кислоты и 33% этиловый спирт, экспозиция 20 — 30 мин. В нейтрализации антисептика и специальном помещении для стерилизации нет нужды, что является большим преимуществом. В указанной выше концентрации надуксусная кислота не действует на резину, латекс, пластмассу и металл. Более высокие концентрации антисептика агрессивны в отношении металлических частей аппаратов.

Этиловый и изопропиловый спирты воздействуют на микроорганизмы слабее, чем указанные выше препараты. Спороцидное действие полностью отсутствует. Используют ультразвуковые аэрозоли указанных спиртов. По данным литературы, изопропиловый спирт эффективнее этилового. Последний целесообразнее использовать в 70% концентрации.

Растворы йода и соединения хлора. Спиртовые и водные растворы йода обладают выраженным бактерицидным, спороцидным и фунгицидным действием. Аналогичное влияние оказывают соединения хлора (хлорамин, хлорная известь, гипохдориты кальция и натрия). Недостатком указанных средств является их раздражающее действие на ткани. Кроме того, они повреждают резиновые и металлические части аппаратов.

Глутаральдегид, фенолы и их производные не получили достаточного распространения из-за слабого спороцидного действия и окисления металлов.

Применение стерильных систем разового использования. Готовые стерильные наборы сострят из пластиковых шлангов, переходников и масок. Из-за их дороговизны многие лечебные учреждения с успехом стали повторно стерилизовать эти наборы окисью этилена или другими физическими или химическими методами и применять многократно.

Использование бактериальных фильтров. Различные способы стерилизации и дезинфекции аппаратуры обеспечивают в той или иной степени их исходное стерильное состояние, Однако в процессе анестезии возникает проблема перекрестного, заражения больной — аппарат — больной. Заменять при каждой операции наркозно - дыхательный аппарат целиком практически трудно, особенно при большом числе операций.

Решать эту проблему призваны специальные бактериальные фильтры. Основные их недостатки: задержка бактерий не на 100%; увеличение сопротивления дыханию или разрушение фильтров в связи с прогрессивным их увлажнением в процессе ИВЛ. Наилучшие фильтры задерживают 99,9% микроорганизмов. Однако 0,01 % микроорганизмов достаточно для того, чтобы аппарат перестал, быть стерильным, а бактерии размножаются чрезвычайно быстро. Несмотря на это, бактериальные фильтры играют большую роль в, предупреждении перекрестной инфекции. Их располагают на линии как вдоха, так и выдоха. В ходе многочасовой анестезии фильтры целесообразно заменять новыми, при необходимости несколько раз.

Без строгого соблюдения правил гигиены анестезиологами и анестезистами любые методы стерилизации обречены на неудачу. Все должно быть чисто: воздух, персонал, больной, аппаратура, инструменты и др. Особое внимание уделяют сборке аппарата. Врач или медицинская сестра, проводящие эту процедуру, должны надевать чистую специальную рабочую одежду и специальные перчатки, а также соблюдать все правила работы в операционном блоке.