Биохимия Р.Марри
.pdf130 |
Глава 42 |
|
..----Полярная головка |
Неполярные
углеводородные
хвосты
s u s s
Рис. 42.3. Схематическое представление фосфолипида или другого мембранного липида. Полярная головка гидрофи льна, а углеводородные хвосты гидрофобны или липофиль
ны. Жирнокислотные хвосты могут быть насыщенными (S)
или ненасыщенными (U); первые обычно присоединены
к атому углерода 1 остатка глицерола. а последние - к ато-
му углерода 2.
в маслах. Напротив, если бы основу молекулы со ставляли гидрофильные участки, то она была бы не растворима в маслах и растворима в воде. Амфи фильные мембранные липиды содержат полярную «головку» и неполярные «хвосты» (рис. 42.3).
Насыщенные жирнокислотные «хвосты» нахо дятся в вытянутой конформации, а ненасышенные, находящиеся в мембране в основном в цuс-форме, могут иметь изломы. Чем больше таких изломов,
тем менее плотна упаковка липидов в мембране и со
ответственно тем больше ее текучесть. Важную роль в биохимии и быту играют такие амфифильные со
единения, как детергенты. Их структура не так уж
далека от структуры липидов.
ОРГАНИЗАЦИЯ МЕМБРАННЫХ ЛИПИДОВ
Амфифильный характер фосфолипидов означает, что две области молекулы по своей растворимости
противоположны, поэтому в водных растворителях
фосфолипиды самоорганизуются в особую структу ру, обеспечивающую термодинамическую стабиль ность обеих областей. Этой структурой является ми целла (рис. 42.4): ее гидрофобные области защище ны от воды, а гидрофильные экспонированы в вод
ную среду.
Липидный бислой
Примерно 60 лет назад Гортер и Грендел устано
вили, что амфифильные молекулы образуют в вод
ной среде термодинамически стабильный бимолеку
лярный слой (бислоЙ). Бислой-это плоская струк тура, в которой гидрофобные области фосфолипи дов недоступны для воды, а гидрофильные в нее по гружены (рис. 42.5). В неблагоприятное водное окружение экспонирован только край (или края) би-
Рис. 42.4. Мицелла (поперечный разрез). Полярные головки выступают в воду, а гидрофобные углеводородные хвосты
находятся в окружении других углеводородов и. таким
образом. с водой не контактируют.
слоя, но даже этот край можно ликвидировать, если
плоскость замкнуть на себя. чтобы образовалась замкнутая везикула. Замкнутый бислой обеспечи вает одно из основных свойств мембраны: он непро ницаем для большинства водорастворимых моле кул, поскольку они не растворяются в его гидрофоб
ной сердцевине.
Здесь сразу возникают два вопроса. Во-первых, многие ли биологически активные вещества жирора
створимы и, следовательно, легко проникают в клет
ку? Такие газы, как кислород, СО;! и азот, с малым размером молекул и слабо взаимодействуюшие с ра створителями, легко диффундируют через гидро фобную область мембраны. Молекулы липидной
природы, например стероидные гормоны, тоже без
труда проникают через бислоЙ. Скорость диффузии
органических незаряженных молекул пропорцио
нальна их коэффициенту распределения между ма-
Водная фаза
~ |
} |
ГИД~фИ~Ь- |
ныи слои |
||
|
ГИб~фО~- |
J ~ Jныи слои
.. } ГИД~И~Ь-
НЫИ слои.
Водная фаза
Рис. 42.5. Схематическое представление бислойной фосфо
липидной мембраны. (Из книги Stryer L.: Biochemistry, 2nd
ed. Freeman, 1981, с небольшими изменениями.)
МембраllЫ: структура, сборка u ФУllКЦUU |
lЗ1 |
к+ |
|
Триптофан |
|
ИНДОЛ |
|
|
|
сг |
Глюкоза |
Мочевина, |
Н2 |
О |
|
11 |
|
I |
глицерол |
11 |
||
1 |
|
J |
||||
10-14 10-12 10-10 |
10-8 |
10-6 |
10-4 |
10-2 |
||
Коэффициент проницаемости, |
см/с |
|
|
|||
Низкая |
|
• |
вы окаяя |
|
||
|
Проницаемость |
|
|
|
|
Рис. 42.6. Коэффициенты проницаемоети для липидных би елойных мембран воды, некоторых ионов и других малых
молекул. (Из книги Stryer L.: Bioehemistry, 2nd ed. Freeman,
1981, е небольшими изменениями.)
слом и водой (рис. 42.6); чем больше растворимость
молекулы в липидах, тем больше скорость ее диффу
зии через мембрану.
Второй вопрос касается молекул, нерастворимых
в жирах. Каким образом поддерживаются трансмем бранные градиенты концентраций таких веществ? Объясняется это следуюшим: мембраны содержат белки, а белки также являются амфифильными мо лекулами и могут соответствующим образом встраиваться в бислоЙ. Эти белки формируют кана
лы, по которым могут перемещаться ионы и малые
молекулы, а также служат переносчиками для боль ших молекул, которые другим способом не могут пересечь бислоЙ. Все эти проuессы мы рассмотрим
ниже.
Таблица 42.2. Ферментные маркеры различных мембран 11
Мембрана |
Фермент |
Плазматическая |
5'Нуклеотидаза- |
|
Аденилатциклаза |
|
Na + jK + -АТРаза |
Эндоплазматический ретикулум |
Глюкозо-6-фосфатаза |
Аппарат Гольджи |
Галактозилтрансфераза |
Внутренняя митохондриальная |
АТРсинтаза |
мембрана |
|
IJМембраны содержат MHoro белков; многие из них обладают ферментативной активностью. Некоторые ферменты локализованы в определенных мембранах и MorYT, таким образом, служить мар керами при очистке этих мембран.
транспортные белки, структурные белки. антигены (т. е. белки, определяющие гистосовместимость) и реuепторы для разных молекул. Поскольку каждая мембрана характеризуется своим набором белков, говорить о существовании некой типичной структу
ры мембран нельзя. В табл. 42.2 представлены фер
ментативные активности, присущие некоторым ти
пам мембран.
Мембраны являются динамическими структурами.
Мембранные белки и липиды постоянно обновля
ются. Скорости обновления разных лиnиДов, как
и разных белков, варьируют в широком диапазоне. Сами мембраны могут обновляться даже быстрее. чем любой их компонент. Более подробно этот во
прос будет рассмотрен в разделе, посвященном
эндоuитозу.
МЕМБРАННЫЕ БЕЛКИ
Белки, ассоциированные с бислоем
Мембранные фосфолипиды играют роль раствори теля для мембранных белков, создавая микроокруже ние, в котором последние могут функuионировать. Из 20 аминокислот, входящих в состав белков, шесть являются в высшей степени гидрофобными из-за бо
ковых групп, присоединенных к а-атому углерода,
несколько аминокислот слабо гидрофобны, а осталь
ные гидрофильны. Как мы видели в гл. 5, при
образовании а-спирали гидрофобность самих пеп тидных групп минимизируется. Таким образом, бел ки могут образовывать единое uелое с мембраной. Для этого нужно, чтобы их гидрофильные участки выступали из мембраны внутрь клетки и наружу, а гидрофобные пронизывали гидрофобную сердпе вину бислоя. И в самом деле, те участки белковых молекул, которые погружены в мембрану, содержат
большое количество гидрофобных аминокислот
ихарактеризуются высоким содержанием а
спиралей или р-слоев.
Число разных белков в мембране варьирует от 6--8 в саркоплазматическом ретикулуме до более чем 100 в плазматической мембране. Это ферменты,
Асимметрия мембран
Асимметрия является важным свойством мембран
и, по-видимому, отчасти связана снеравномерным
распределением белков в мембране. Трансмембран ная асимметрия может быть обусловлена и разной локализацией углеводов, связанных с мембранными
белками. Кроме того, на внешней или внутренней
стороне мембраны могут быть расположены какие то специфические ферменты; это касается как мито хондриальных, так и плазматических мембран.
Мембраны обладают также локальной асимме трией. В некоторых случаях (например, в щеточной каемке клеток слизистых оболочек) она проявляется
почти на макроскопическом уровне. В других слу
чаях (например, в области щелевых контактов, плот
ных контактов и синапсов, занимающих очень не
большую часть площади мембраны) области ло кальной асимметрии невелики.
Наблюдается также асимметрия в распределении фосфолипидов между наружной и внутренней сторо нами мембран (поперечная асимметрия). Так, холин содержащие фосфолипиды (фосфатидилхолин
и сфинrомиелин) располагаются в основном в нару
жном молекулярном слое, а аминофосфолипиды
132 |
Глава 42 |
(фосфатидилсерин и фосфатидилэтаноламин)
преимущественно во внутреннем. Холестерол обыч но содержится в наружном слое в больших количе
ствах, чем во внутреннем. Очевидно. что если такая
асимметрия в принципе существует, то поперечная
подвижность (флип-флоп) мембранных фосфолипи
дов должна быть ограничена. И в самом деле, для
фосфолипидов в синтетических бислоях характерна
исключительно низкая скорость перескоков - время
существования асимметрии может измеряться
днями или неделями. Однако при искусственном
включении в синтетические бислои некоторых мем
бранных белков. например эритроцитарного белка гликофорина. частота флип-флоп-перехоДов фосфо
липидов может возрасти в сотню раз.
Механизмы асимметричного распределения ли
пидов пока не установлены. Участвуюшие в синтезе фосфолипиДов ферменты локализованы на цито
плазматической стороне мембран микросомных ве
зикул. Таким образом. можно предположить. что су
ществуют транслоказы, переносящие определенные
фосфолипиды от внутреннего слоя к наружному.
Кроме того. в обоих слоях могут присутствовать специфические белки. преимушественно связываю щие те или иные фосфолипиды и приводящие к их
dсимметричному распределению.
Интеrральные и периферические мембранные белки
Большинство мембранных белков являются инте гральными компонентами мембран (они взаимодей ствуют с фосфолипидами); почти все достаточно полно изученные белки имеют протяженность, пре вышающую 5-10 НМ,-величину, равную толщине
бислоя. Эти интегральные белки обычно представ
ляют собой глобулярные амфифильные структуры.
Оба их конца гидрофильны. а участок, пересекаю
ЩИЙ сердцевину бислоя, гидрофобен. После установ
ления структуры интегральных мембранных белков
стало ясно, что некоторые из них (например. молеку
лы белков-переносчиков) могут пересекать бислой
многократно, как это показано на рис. 42.7.
Интегральные белки распределены в бислое
асимметрично (рис. 42.8). Если мембрану, содержа
щую асимметрично распределенные интегральные
Снаружи
Рис. 42.7. ПреДПО:Iaгаемая модель пеРСНОСЧИli:а ГЛЮКО.iЫ
у человека. Предполагается. что переносчик пересекает мембрану 12 раз. Пересекающие мембрану участки могут
образовывать амфифильныс а-спирали с амидной и гид роксильной боковыми группами и, по-видимому. СВЯlЫ вают глюкозу или образуют канал для ее переноса. Амино и карбоксильный I\ОНЦЫ цепи находятся на цитоплазмати ческой поверхности. (Из работы Mueckler et al.: Sеquеш:с
and structure оГ а human glucose transporter. Sciel1ce. 1985.
229, 941. с любезного разрешения.)
организации мембран мы обсудим позже. Периферические белки не взаимодействуют с фо
сфолипидами в бислое непосредственно; вместо это го они образуют слабые связи с гидрофильными
участками специфических интегральных белков. На
пример, анкирин, периферический белок. связан с ин тегральным белком полосы 11[ }ритроцитарной
мембраны. Спектрин. образуюший скелет мембраны
эритроцита, в свою очередь связан с анкирином и,
таким образом, играет важную роль в поддержании
двояковогнутой формы эритроцита. Молекулы им муноглобулина являются интегральными белками плазматической мембраны и высвобождаются толь
ко вместе с небольшим фрагментом мембраны. Ин тегральными белками являются многие рецепторы
различных гормонов, и специфические полипептид
ные гормоны, связывающиеся с этими рецеПТОРdМИ,
можно, таким образом. считать периферическими белками. Такие периферические белки, как пептид
ные гормоны, могут даже детерминировать распре
деление в плоскости бислоя интегральных белков
их рецепторов (см. ниже).
белки. растворить в детергенте, а затем детергент
медленно удалить. то произойдет самоорганизация
фосфолипидов и интегральных белков и сформирует
ся мембранная структура. но белки в ней уже не бу дут специфическим образом ориентированы. Таким
образом, асимметричная ориентация в мембране по
крайней мере некоторых белков может задаваться при их включении в липидный бислоЙ. Наружная гидрофильная часть амфифильного белка. которая,
конечно, синтезируется внутри клетки, должна затем
пересечь гидрофобный слой мембраны и в конечном итоге оказаться снаружи. Молекулярные механизмы
ИСКУССТВЕННЫЕ МЕМБРАНЫ
Искусственные мембраны получают с помощью
специально разработанных методик. Такие мем
бранные системы обычно состоят из одного фосфо липида (природного или синтетического) И.;IИ их сме си. В соответствующих условиях (напри~ер, при
мягкой обработке ультразвуком) эти фосфолипиды образуют сферические бислойные везикулы. Везику
лы, ограниченные липидным бислоем, называются
липосомами.
Рассмотрим несколько примеров использования
|
Ме\16ра"ы: структура. сборка и фу"кции |
133 |
Липидный бислой |
11 Гидрофильные области |
|
Белок |
|
Мицелла |
D Гидрофобные области |
|
Детергент
•
Асимметричная мембрана |
Симметричная мембрана |
|
Рис. 42.8. При самосборке мембраны сохраняется ее принциnиальная структура, но не асимметрия. Мембраны разрушаю тся при обработке их детергентами в высокой концентрации; амфифильные молекулы детергента образуют маленькие ка пельки, называемые мицеллами. Детергент растворяет компоненты мембраны, обволакивая гидрофобные участки липи дов и белков и заключая их в мицеллы, где они защищены от воды. После удаления детергента липиды спонтанно обра зуют новый бислой с интегрированными в него белками. Однако последние включаются в основном в случайной ориента ции. Эксперименты. подобные описанному здесь, показали, что все клеточные мембраны не способны к правильной са мосборке~ по крайней мере некоторые интегральные белки должны встраиваться в уже готовую мембрану, имеющую
определенную ориентацию. (Из работы Lodish Н. F., Rothman J. Е.: ТЬе assembIy ofcell membranes. Sci. Аm. [Jan] 1979,240,
43, с любезного разрешения.)
искусственных мембранных систем и укажем их |
4. При формировании липосом ими могут захва |
преимущества перед природными мембранами. |
тываться те или иные компоненты, например лекар |
1. Содержание разных липидов в искусственных |
ственные вещества или изолированные гены. Весьма |
мембранах можно варьировать; это позволяет про |
перспективным представляется использование липо |
водить систематическое исследование влияния ли |
сом для доставки лекарств к KOHKpeTHЬ~ тканям. |
пидного состава мембран на ту или иную функцию.
Например, можно получить везикулы исключитель
но из фосфатидилхолина или, наоборот, из смеси фо сфолипидов известного состава с включением глико липидов и холестерола. Можно строить мембраны
из липидов с разными остатками жирных кислот.
Это позволяет провести ситематические исследова
ния влияния жирнокислотного состава на определен
ные функции мембран (например. на транспорт). 2. В везикулы можно встраивать очищенные
мембранные белки или ферменты. Это позволяет выявить, какие молекулы (например, специфические липиды или вспомогательные белки) необходимы для реконструкции функции очищенных белков. Ис следования очищенных белков, например Са2 + АТРазы саркоплазматического ретикулума, показы
вает, что в некоторых случаях для реконструкции
ионного насоса достаточно одного белка и одного
липида.
3. Микроокружение искусственных систем мо
жно жестко контролировать и целенаправленно ва
рьировать (например, изменять концентрацию ионов). Их можно подвергать действию лигандов, специфичных к определенным белковым рецепто
рам, содержащимся в липосоме.
Для этого в мембраны липосом необходимо вклю
чить компоненты (например, антитела к определен
ным молекулам клеточной поверхности), позволяю
щие адресовать их конкретным тканям или опухо
лям. Терапевтический эффект такого способа до
ставки лекарства должен быть весьма значитель ным. ДНК, заключенная внутри липосом, по
видимому. менее чувствительна к нуклеазам; это
следует учитывать при генной терапии.
ЖИДКОСТНО-МОЗАИЧНАЯ МОДЕЛЬ МЕМБРАН
Функционирующие мембраны представляют собой
двумерный раствор глобулRpньrх интегральных бел
ков, днспергированных в жидком фосфолипидиом ма триксе. Жидкостно-мозаичная модель мембранной структуры была предложена в 1972 г. Сингером и Николсоном (рис. 42.9). Первые данные об адек ватности этой модели были получены при искус
ственно индуцированном слиянии двух разных роди
тельских клеток. Оказалось, что при образовании межвидовой гибридной клетки в плазматической
мембране происходит быстрое стохастическое пере
распределение видоспецифичных белков. Впослед-
134 |
Гllава 42 |
Интегральный белок Липид
Рис. 42.9. Жидкостно-мозаичная модель мембранной структуры. Основой мембраны является липидный бислой; с ним связаны белки, либо погруженные в бислой, либо присоединенные к ЦИТОПЛdзматической поверхности. Интегральные
мембранные белки жестко закреплены в липидном бислое. Некоторые из этих белков пронизывают бислой и называются
трансмембранными, другие погружены либо в наружный, либо во внутренний слой. Белки, слабо связанные с внутренней поверхностью мембраны, называются периферическими. Многие белки и липиды несут олигосахаридные цепочки. высту
пающие во внешнюю среду. (Из работы Junqueira L. с., Carneiro J .• Long J. А.: Basic Histology, 5th ed. Appleton and Lange.
1986, с любезного разрешения.)
ствии было показано, что фосфолипиды тоже спо собны быстро перераспределяться в плоскости мем браны. Такая диффузия в плоскости мембраны. на зываемая латеральной, может осуществляться до вольно быстро: одна молекула фосфолипида переме щается за 1 с на расстояние несколько микрометров.
Фазовые переходы и, следовательно, текучесть мембран сильно зависят от липидного состава мем
бран. В липидном бислое гидрофобные цепочки жир
ных кислот ориентированы практически параллель
но друг другу, в результате чего образуется доста точно жесткая структура. При повышении темпера туры гидрофобный слой переходит из упорядочен
ного состояния в неупорядоченное, и образуется бо
лее жидкая, текучая система. Температура, при кото рой вся структура претерпевает переход из упорядо
ченного состояния в беспорядочное, называется тем пературой перехода. Более длинные и более насы щенные жирнокислотные цепи обладают более вы сокой температурой перехода, т. е. для повышения текучести образованной ими структуры необходима более высокая температура. Наличие ненасыщенных
связей в цuс-конфигурации приводит к повышению текучести бислоя из-за снижения компактности упа ковки цепей без изменения гидрофобности (рис.
42.3). Фосфолипиды клеточных мембран обычно содержат по крайней мере одну ненасыщенную жир
ную кислоту, имеющую по крайней мере одну двой
ную связь в цuс-положении.
Холестерол играет роль молекулярного модифика тора мембран, включение которого приводит к образо ванию состояний с промежуточной текучестью. Если ацильные боковые цепи находятся в неупорядочен
ном состоянии, то холестерол вызывает их конденса
цию; если же они образуют какую-то кристаллопо добную структуру, то холестерол переводит ее в не упорядоченное состояние. При высоком отношении холестеролjлипид фазовый переход вообще не про
исходит.
Текучесть мембраны сильно влияет на ее функ
ционирование. При увеличении текучести мембрана становится более проницаемой для воды и других
малых гидрофильных молекул, растет скорость ла
теральной диффузии интегральных белков. Если ак
тивный центр интегрального белка, осуществляю щий некую функцию, располагаеrся исключительно в гидрофильной его части, то изменение текучести
липидов, вероятно, не скажется слишком сильно на
активности белка. Но если белок выполняет транс
портную функцию и транспортный компонент пере секает мембрану, то изменения свойств липидной фазы могут привести к значительному изменению скорости транспорта. Превосходным примером является зависимость функционирования инсулино вого рецептора от текучести мембран (гл. 51). Когда
концентрация ненасыщенных жирных кислот в мем
бране растет (при культивировании клеток в среде, богатой этими соединениями), увеличивается теку-
Мем6раllЫ: структура, сборка u фу"кцuu |
135 |
честь, а это приводит к тому, что рецептор связы
вает больше инсулина.
Текучесть мембраны и соответственно латеральная
подвижность могут быть неодинаковыми в разных
ее участках. Например, в плоскости мембраны могут
возникать белок-белковые взаимодействия, приво
дяшие к образованию жесткого белкового матрикса
в отличие от обычного липидного матрикса. Такие области белкового матрикса могут сосушествовать
с обычным липидным матриксом в одних и тех же
мембранах. Примерами такого тесного соседства
различных матриксов являются области щелевых
контактов, плотных контактов, а также бактериоро
допсинсодержащие фрагменты пурпурных мембран
галобактерий.
Некоторые латеральные белок-белковые взаимо действия опосредуются периферическими белками;
например, образуются сшивки через антитела и лек тины и формируются так называемые кэп-структуры
на поверхности мембраны. Таким образом, перифе
рические белки, участвуя в специфических взаимо
действиях, могут ограничивать подвижность инте
гральных белков внутри мембраны.
СБОРКА МЕМБРАН
Как мы уже говорили, ферменты, ответственные за
синтез фосфолипидов, располагаются на цитоплаз
матической стороне везикул эндоплазматического
ретикулума. По мере синтеза фосфолипидов проис ходит их самосборка с образованием термодинами
чески стабильных бимолекулярных слоев, которые
включаются в мембрану везикул. Липидные везику
лы, происходящие от эндоплазматического ретику
лума, по-видимому, перемещаются к аппарату Го
льджи, фрагменты которого в свою очередь сливаю
тся с плазматической мембраной. Мембраны аппа
рата Гольджи и везикул эндоплазматического рети
кулума асимметричны в поперечном направлении
как по фосфолипидам, так и по белкам, и эта асим
метрия сохраняется до слияния с плазматической
мембраной. Внутренняя поверхность везикулярных
мембран оказывается с наружной стороны плазма тической мембраны, а цитоплазматическая остается
на ее цитоплазматической стороне (рис. 42.10). По
скольку поперечная асимметрия в мембранах вези
кул, происходящих из эндоплазматического ретику
лума, сушествует еще до слияния с плазматической
мембраной, основной проблемой сборки мембран
становится вопрос о том. каким образом интеграль
ные белки асимметрично включаются в липидный бислой эндоплазматического ретикулума.
Интегральные и секретируемые белки сразу по
сле их синтеза содержат гидрофобную лидерную по
следовательность длиной 15-30 аминокислот на N- конце. Внутренней гидрофобная лидерная последо-
Рис. 42. 10. При слиянии везикул с плазматической мембра
ной сохраняется ориентация всех интегральных белков.
включенных в бислой везикулы. Исходно N-конец белка смотрит внутрь везикулы. После слияния N-конец оказы вается на наружной поверхности плазматической мембра ны. Неизменность ориентации белка становится еще более очевидной, если проследить за расположением другого конца молекулы -С-конца. который всегда обращен в ци топлазму. Внутренняя поверхность везикулы и наружная
клетки топологически эквивалентны. (Из работы Ladish
Н. F., Rothman J. Е.: The assembIy ofcelI membranes. Sci. Ат. [Jan.] 1979, 240. 43, с изменениями.)
вательность бывает очень редко. N-концевая лидер
ная последовательность обычно отщепляется от бел
ка при его встраивании в мембрану или сразу после него, при этом получается зрелый секретируемый
или интегральный белок.
Существуют убедительные данные о том, что ли
дерная последовательность участвует в процессе
встраивания белка. Мутантные белки, содержащие модифицированную лидерную последовательность, в которой какая-либо гидрофобная аминокислота заменена на гидрофильную, не включаются в мем браны. В то же время немембранные бе.Т(КИ с присое
диненной к ним лидерной последовательностью (для
этого используются методы генной инженерии) спо
собны включаться в мембрану и даже секретиро
ваться.
136 |
Глава 42 |
Сигнальная гипотеза
Белки встраиваются в мембрану разными спосо бами (рис. 42.11); детали этого процесса во многих случаях еще не установлены. Для объяснения меха
mвма встраивания предложены две модели: сигналь
ная гипотеза и мембранная триггерная гипотеза. В сигнальной гипотезе предполагается, что белок включается в мембрану параллельно его трансляции
на мРНК в полирибосомах; это так называемое ко
трансляционное включение. Когда лидерная после
довательность выходит из рибосомы, она выявляет ся некой сигнал-распознающей частицей (СРЧ), которая блокирует дальнейшую трансляцию на
уровне примерно 70 аминокислот, 40 из которых остаются в большом рибосомном комплексе, а 30 экспонированы в среду (рис. 42.12). СРЧ содержит шесть белков, с ней ассоциирована 7S-PHK, близко
родственная «Аlu-семейству» последовательностей ДНК с большим числом повторов (см. гл. 38). Бло
кирование трансляции не снимается до тех пор, пока
комплекс СРЧ-лидерная последовательность рибосома не свяжется с так называемым «отстри гающим» белком (рецептором дЛЯ СРЧ) эндоплаз матического ретикулума. В этот момент начинается котрансляционное встраивание белка в эндоплазма
бранного белка и освобождаются и диссоциируют на соответствующие субъединицы только после его за
вершения. Когда ранее синтезированная часть белка
выходит в просвет эндоплазматического ретикулу
ма, отщепляется лидерная последовательность
и присоединяются углеводы.
Интегральные мембранные белки не пересекают
мембрану целиком; по-видимому, этому препят ствует гидрофильная якорная последовательность на С-конце. Секретируемые же белки проходят сквозь мембранный бислой полностью и высвобо
ждаются в просвет эндоплазматического ретикулу
ма. К моменту их поступления внутрь везикулы
углеводные остатки уже оказываются связанными
с ними. Впоследствии секретируемые белки обнару живаются в просвете аппарата Гольджи, где проис ходит модификация их углеводных цепочек, а затем они перемещаются к специфическим внутриклеточ
ным органеллам или клеточным мембранам либо секретируются. Некоторые белки пересекают одну
мембрану, а затем заякориваются в другой, соседней
мембране, например внутренней мембране мито
хондрий.
Мембранная триггерная ГИllOтеза
тический ретикулум. В процессе элонгации остав |
В этой гипотезе особое значение придается роли |
||
шейся части белка он перемещается через липидный |
лидерной последовательности в изменении третич |
||
бислой, поскольку рибосома остается присоединен |
ной структуры самого белка. Согласно этой гипоте |
||
ной к эндоплазматическому ретикулуму. Таким |
зе, лидерная последовательность индуцирует такую |
||
образом образуется шероховатый (усеянный рибо |
упаковку обычно гидрофобного интегрального бел |
||
сомами) эндоплазматический ретикулум. Рибосомы |
ка, что последний может оставаться солюбилизиро |
||
остаются прикрепленными к эндоплазматическому |
ванным в водной среде цитоплазмы, где он синтези |
||
ретикулуму |
в течение |
всего времени синтеза мем- |
рован. Мембранный липидный бислой является как |
N |
с |
с |
N |
|
Снаружи
|
|
Субъединица рецептора |
|
с |
Эритроцитарный |
ацетилхолина |
N |
N белок полосы 111 |
Бычий родопсин |
|
|
Гликофорин |
|
||
|
ЦитохромЬs |
||
Рецептор ЛНП |
|
|
|
Тяжелая цепь HlA-А |
Рецептор ICI48IIоrnикопротеина |
|
|
Гемагглютинин вируса гриппа |
Рецептор тра.,сферрина |
|
|
Бактериальная лидерная пептидаза
Инвариантная цепь HlA-DR
П редwественник саХ.Plз~-и!Омanьтазы
Рис. 42. 11. Различные способы включения белков в мембраны. Те участки белковой молекулы, которые находятся внутри мембраны, имеют форму а-спиралей. а остальные фрагменты линейны. N - NН2-конец; с'- СООН-конец. (Из работы
Wickner W. Т. Lodish Н. F.: Mu]tip]e mechanisms ofprotein insertion into and across membranes. Science. 1985.230.400, с раз-
решения.)
Me~6pa"ы: структура. соор"а u фVНКЦUli |
137 |
Сигнальные КОДОНЫ
Сигнальная пептидаза
Рибосомный рецептор |
Сигнальный рецептор |
|
Рис. 42. 12. Транспорт секретируемых белков через мембрану эндоплазматического ретикулума согласно сигнальной ги потезе. Синтезирующие белок рибосомы движутся вдоль мРНК. детерминирующей аминокислотную последовательность белка (мРНК изображена в виде линии 5'-3). Кодон АUG-начало синтеза белка; участок линии, который сле дует за AUG. соответствует кодонам сигнальной последовательности. Когда конец белковой молекулы выходит из боль шой рибосомной субчастицы. сигнальная последовательность оказывается экспонированной в среду и связывается с сиг нал-распознающей частицей (СРЧ). Дальнейшая транскрипция блокируется до тех пор, пока комплекс не свяжется с «отстригающим» белком (черный прямоугольник). расположенным на мембране эндоплазматичсского регикулума. Для самой рибосомы на мембране также имеется рецептор (светлый прямоугольник). Взаимодействие рибосомы и расгущей пептидной пепи с мембраной ")ндоплазматического ретикулума приводит к открыванию поры, через которую белок вво дится во внутреннее пространство эндоплазматического ретикулума. В процессе транспорта сигнальная последовательно сть большинства белков отщепляется ферментом, называемым сигнальной пептидазоЙ. Синтезированный белок высвобо ждается из рибосомы. которая распадается на большую и малую субчастицы. и. наконец. оказывается внутри эндоплазма-
ТИlJеского ретикулума (Из работы Newly made proteins rip through the сеIl, Science, 1980. 207, 154. с изменениями.)
бы триггером по отношению к третичной структуре
белкапоследний переходиг в такую конформа цию, которая обеспечивает его предпочтительное включение в бислоЙ. Таким образом, белок претер певает некий переход и сам встраивается в мембрану таким способом, чтобы установить необходимую поперечную асимметрию. Сразу после встраивания белка или его интеграции лидерная последователь ность отшепляется. Триперная гипотеза не предпо
лагает специфического взаимодействия между рибо
сомой и мембраной, но это еще не означает, что син тез белка не может происходить на мембранах.
Основные особенности сигнальной и триггерной
гипотез сопоставляются в табл. 42.3. Возможно, в одной и той же клетке действуют оба механизма. Некоторые аспекты мембранного биосинтеза остают
ся неясными, поскольку одни мембранные и секре тируемые белки синтезируются на мембраносвязан ных полисомах, тогда как другие - на свободных
цитоплазматических полисомах. Сборка некоторых секретируемых или встраиваемых в мембрану бел
ков не осуществляется до тех пор, пока эти белки не
вступают во взаимодействие с мембранным бислоем на ранних этапах своего биосинтеза на рибосомах. Другие белки, например цитохром bs, встраиваются
бране после того. как их синтез завершен, но все же их внедрение в мембрану требует присутствия нор мальной лидерной последовательности. Некоторые одноцепочечные пептиды или белки, такие, как бак
териородопсин, пересекают мембрану несколько
раз, и этот феномен трудно объяснить в рамках сиг
нальной гипотезы.
СПЕЦИАЛИЗИРОВАННЫЕ ФУНКЦИИ МЕМБРАН
Если плазматическая мембрана относительно не
проницаема, то как попадают в клетку большинство
молекул? Чем обусловлена селективность их перено са? Ответы на эти вопросы очень существенны для прояснения способов адаптаций клеток к постоянно меняющимся условиям внешней среды. У многокле
точных организмов должны иметься также средства
коммуникации между соседними и отдаленными
друг от друга клетками, что позволяло бы им коор
динировать весь комплекс биологических процессов.
Сигналы могут поступать к мембране и переда
ваться ею или же генерироваться в виде некой после
сами, сохраняя определенную ориентацию в мем- довательности каких-то взаимодействий между
138 |
Г.юва 42 |
|
Таблица 42.3. Сравнение двух моделей сборки мембран\) |
Пассивная диффузия |
|
Сигнальная гипотеза |
Мембранная триггер |
Как мы уже говорили, некоторые вещества, на |
|
ная гипотеза |
пример газы, могут проникать в клетку за счет |
Место инициации Солюбилизиро |
Солюбилизирован |
||||||
|
|
|
ванные |
поли- |
ные полисомы |
||
|
|
|
сомы |
|
|
|
|
Роль лидерного |
Распознавание бел- |
Изменение способа |
|||||
пептида |
|
ком |
транс- |
упаковки |
|||
|
|
|
портного кана- |
|
|
|
|
|
|
|
ла |
|
|
|
|
Ассоциация ново- |
По |
завершении |
Во время синтеза |
||||
го |
белка |
|
синтеза лидер- |
белка |
или по- |
||
с мембраной |
|
ного пептида |
сле его |
завер- |
|||
|
|
|
|
|
шения |
|
|
|
|
Место- -белковый Место-рецептор |
|||||
|
|
|
транспортный |
ИЛИ |
ЛИПИДНdЯ |
||
|
|
|
канал |
|
часть бислоя |
||
Специфическая |
С белковым |
|
Не происходит |
||||
ассоциация |
|
транспортным |
|
|
|
||
рибосом |
|
каналом |
|
|
|
|
|
Катализ сборки |
Некая специфиче- |
Изменение конфор- |
|||||
|
|
|
ская пора |
мации, опреде |
|||
|
|
|
|
|
ляемое |
лидер |
|
|
|
|
|
|
ным пептидом |
||
Движущая сила |
Элонгация |
поли- |
Белок-белковые |
||||
сборки |
|
|
пептиДНОЙ це- |
и |
белок-ли- |
||
|
|
|
пи |
|
пидные |
|
|
|
|
|
|
|
взаимодей- |
||
|
|
|
|
|
ствия: |
само- |
|
|
|
|
|
|
сборка |
|
|
Удаление |
лидер- |
При |
выходе |
поли- |
В процессе встраи- |
||
ного пептида |
|
пептида |
|
вания |
поли |
||
|
|
|
|
|
пептида |
в би |
|
|
|
|
|
|
слой или после |
||
|
|
|
|
|
него |
|
|
Окончательная |
С-конец внутри, N- Определяется пер- |
||||||
ориентация |
|
конец снаружи |
вичной |
после |
|||
|
|
|
|
|
довательно |
||
|
|
|
|
|
стью |
|
|
1JИз работы Wickner W. The assembIy of proteins into biological membranes: The membrane trigger hypothesis. Аппu. Rev. Biochem, 1979; 48, 23.
разрешения авторов.
трансмембранной диффузии по электрохимическому
градиенту; при этом никаких энергетических затрат
не требуется. Скорость простой диффузии через
мембрану растворенных веществ определяется те
пловым движением перемещающихся молекул,
трансмембранным концентрационным градиентом вещества и его растворимостью (коэффициентом
проницаемости; рис. 42.6) в гидрофобном слое мем
браны. Растворимость обратно пропорuиональна числу водородных связей. которые должны быть разорваны, чтобы растворенное в водной среде веще
ство оказалось включенным в гидрофобный слой.
Электролиты, слабо растворимые в липидах. не
образуют с водой водородных связей, но они обла
дают водной оболочкой, образующейся в результате
электростатических взаимодействий. Размер обо
лочки прямо пропорционален плотности заряда
электролита. Электролиты с большей плотностью заряда обладают большей гидратной оболочкой и. таким образом, меньшей скоростью диффузии. Ио ны Na +, например, характеризуются большей плот
ностью заряда, чем ионы К+ . Следовательно, гидра тированный Na + имеет больший размер, чем К+ ,
иего скорость пассивной диффузии ниже.
Вприродных мембранах в отличие от синтетиче
ских бислойных мембран имеются трансмембранные
каналы - сходные с порами структуры, состоящие
из белков. Каналы, пропускающие катионы, имеют средний диаметр ..., 5--8 нм и выстланы отрицатель но заряженными группами. Проводимость канала
зависит от размера, степени гидратаuии и плотности
заряда иона. Обнаружены спеuиальные каналы для
Na+, К+ и Са2+.
В мембранах нервных клеток имеются хорошо
изученные ионные каналы, ответственные за генера-
мембранами. Некоторые механизмы реализации этих процессов перечислены в табл. 42.4.
ТРАНСМЕМБРАННЫЙ ПЕРЕНОС
МАЛЫХ МОЛЕКУЛ
Молекулы могут пассивно пересекать бислой по
электрохимическому градиенту путем простой или
облегченной диффузии. Такому спонтанному пере
носу, приводящему к установлению равновесия, про
тивостоит активный транспорт, который требует за
трат энергии, поскольку он происходит против элек
трохимического градиента. Эти механизмы схемати чески представлены на рис. 42.13.
Таблица 42.4. Перенос вещества и информации через мем браны
Трансмембранное перемещенне малых молеку.1J Диффузия (пассивная и облегченная)
Активный транспорт
Трансмембранное перемещенне крупных молекул Эндоцитоз Экзоцитоз
Передача сигнала через мембраны
Рецепторы клеточной поверхности
1.Передача сигнала (например. глюкагон-сАМР)
2.Интернализация сигна;lа (сопряженная с ')Нj{ОЦИТО
зом, например рецептор ЛНП)
Движение внеклеточных рецепторов (стероидныс
гормоны; некая разновидность диффузии)
Межклеточные контакты н коммуннкацнн
|
|
Ме.'И6раны: структура, сборка и функции |
139 |
|||||
|
|
Транспортируемая |
|
|
|
|||
|
|
|
|
молекула |
|
|
.... |
|
|
|
|
|
\ |
/ |
\ |
|
|
|
|
|
,лок |
|
||||
|
••• |
Белок- |
|
|
-п |
|||
|
|
Канальный переносчик |
|
|
||||
Липидный[ |
~~1ur1 ~~ |
~~~~ |
|
~~~ ~Электрохимический |
||||
бислой |
r~~ rl\j Ln~ |
r~~~~ |
~~ V~ |
градиент |
||||
|
il |
|||||||
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
I |
|
I |
Облегченная |
|
|
•• |
|
|
|
Простая |
|
|
|
|
||
|
|
|
диффузия |
|
|
|
||
|
диффузия |
|
|
|
||||
|
|
|
|
|
|
|||
|
Пассивный транспорт |
|
Активный транспорт |
Рис. 42.13. Многие мелкие незаряженные молекулы свободно проходят через липидный бислоЙ. Заряженные молекулы. крупные незаряженные молекулы и некоторые мелкие незаряженные молекулы проходят через мембраны по каналам или порам либо с помощью специфических белков-переносчиков. Пассивный транспорт всегда направлен по электрохимиче
скому градиенту в сторону установления равновесия. Активный же транспорт осуществляется против электрохимического
градиента и требует энергетических затрат. (Из работы Alberts В. е! аl.: Molecular Biology of the сеН. Garland, 1983.)
цию и распространение потенциала действия вдоль
мембраны. Активность некоторых из них контроли
руется нейромедиаторами, т. е. работа каналов мо
жет регулироваться. Кроме того, один ион может ре
гулировать активность канала, проницаемого для дру
гого иона. Так, при уменьшении концентрации Са2 +
во внеклеточной жидкости увеличивается мембран
ная проницаемость и диффузия Na +. в результате мембрана деполяризуется и генерируется нервный импульс. Именно этим объясняются оцепенелость,
покалывание и судороги мышц при понижении
уровня Са2+ в плазме.
Каналы открываются только на определенное
время, т.е. обладают воротным механизмом. В слу
чае воротного механизма, контролируемого лигандом,
некая специфическая молекула связывается с рецеп
тором и открывает «ворота». Каналы с потенциалза висимым воротным механизмом открываются (или
закрываются) в ответ на изменение мембранного по
тенциала.
Некоторые микроорганизмы синтезируют малые
органические молекулы - ионофоры, которые осу
ществляют челночные перемещения ионов через
мембраны. Эти иоиофоры содержат гидрофильные пентры, которые связывают определенные ионы. По периферии центры окружены гидрофобными обла
стями, что позволяет молекуле легко растворяться
в мембране и диффундировать через нее. Суще ствуют и другие ионофоры, подобные хорошо изу ченному полипептиду грамицидину, которые обра-
зуют каналы. Некоторые микробные токсины (на пример, дифтерийный токсин) и компоненты активи
рованного сывороточного комплемента способны
образовывать крупные поры в клеточных мембра
нах, через которые могут проходить макромолеку
лы.
Суммируя сказанное, можно сказать, что диффу зия веществ определяется следующими факторами: 1) трансмембранным концентрационным градиен
том веществ. Растворенные вещества перемещаются
в сторону понижения концентрации; 2) трансмем бранной разностью электрических потенциалов. Ра
створенные вещества движутся в сторону раствора
с противоположным зарядом; 3) коэффициентом проницаемости мембраны для данного вещества;
4) градиентом гидростатического давления на мем
бране. При повышении давления будет увеличивать ся скорость столкновений молекул и мембраны; 5) температурой. Чем выше температура, тем боль
ше скорость частиц и, следовательно, частота стол
кновений между частицами и мембраной.
Облегченная диффузия и
активный транспорт
Транспортные системы можно описывать исходя
из числа переносимых молекул и направления пере
мещения (рис. 42.14) или в соответствии с тем, как
осуществляется перенос- в сторону установления