Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
4 курс / Фак. Терапия / Туркутюков_В_Б_,_Бобырев_С_Е_ред_Внебольничные_пневмонии_Микробиологические.doc
Скачиваний:
1
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
467.97 Кб
Скачать

2.4.2.2.1Идентификация Haemophilus influenzae

После инкубации в течение 24 ч колонии H.influenzae на шоколадном агаре могут иметь следующие формы:

  • капсульные штаммы формируют слизистые, круглые, сочные, сероватого цвета, иррадиирующие (дающие радужную окраску) в проходящем свете колонии диаметром до 2 мм. Штаммы с менее выраженной капсулой образуют полупрозрачные, круглые, гладкие, неиррадиирующие колонии;

  • неинкапсулированные штаммы образуют мелкие, непрозрачные, неиррадиирующие колонии с неровными краями.

Для чистой культуры гемофильной палочки характерно наличие специфического "мышиного" запаха.

H.influenzae обладают цитохромоксидазной и каталазной активностью и нуждаются в X и V факторах, что является одним из основных качеств, отличающих их от других представителей рода гемофил.

Потребность H.influenzae в указанных факторах определяется с помощью полосок или дисков с X и V факторами. При их отсутствии можно воспользоваться тестом с сапонином или определением способности к сателлитному росту (метод "кормушек").

Необходимые тесты для идентификации чистой культуры:

  • Тест с сапонином;

  • Тест на способность к саттелитному росту;

  • Тест на образование уреазы;

  • Тест на индолообразование;

  • Тест на орнитинобоазование.

1.Тест с сапонином основан на способности сапонина лизировать эритроциты. Сапонин приводит к высвобождению находящихся в эртроцитах X и V факторов, что обеспечивает рост гемофильной палочки.

Диск с сапонином помещают на поверхность 5% КА, инокулированного испытуемой культурой (суспензией в изотоническом растворе хлорида натрия). Результаты теста учитывают через 24–48 ч инкубации при температуре 35–37оС и 5–10% СО2.

Рост колоний вокруг дисков с сапонином и его отсутствие вне зоны гемолиза служит дифференциальным признаком принадлежности исследуемого микроорганизма к роду Haemophilus.

2.Тест на способность к сателлитному росту (метод "кормушек"). Принцип метода "кормушек" аналогичен описанному выше методу дисков с сапонином. Поверхность 5% КА инокулируют суспензией тестируемой культуры в изотоническом растворе хлорида натрия, после чего наносят две параллельные линии гемолитического штамма S.aureus (расстояние между линиями – 5–6 мм). После инкубации при температуре 35–37оС в атмосфере с повышенным (5–10%) содержанием СО2 в течение 18–24 ч рост колоний (в виде валика) в зоне гемолиза, вызванного S.aureus, указывает на принадлежность исследуемого микроорганизма к Haemophilus spp.

3.Определение бета-галактозидазы. Важным диагностическим тестом для идентификации H.influenzae является тест на наличие бета-галактозидазной активности. Гемофильная палочка не обладает этим ферментом. Таким образом, на основании данного теста она может быть дифференцирована от других видов гемофил, нуждающихся в X и V факторах.

4.Тест на определение уреазы. Используются 2 реактива. Реактив А: стерильная дистиллированная вода – 4 мл, этиловый спирт 96% – 2 мл, мочевина – 2 г. Реактив В: 0,2% раствор фенол-рот – 1 мл, KH2PO4 – 0,1 г, K2HPO4 – 0,1 г, NaCl – 0,5 г, дистиллированная вода – 100 мл.

Приготовление. Реактив А хранится при температуре 4–10оС (не автоклавировать!). Реактив В стерилизуют при 1,5 атм. 30 мин. Перед употреблением ex tempore смешать 1 часть реактива А и 19 частей реактива В.

Приготовленную ex tempore смесь реактивов А и Б разливают в узкие пробирки по 0,1 мл и вносят несколько капель густой суспензии исследуемой культуры H.influenzae в питательном бульоне. Пробирки помещают в термостат при температуре 35–37оС. Предварительный учет возможен через 30 мин.

При положительной реакции среда приобретает малиново-красное окрашивание, при отрицательной – цвет не меняется. Учет отрицательной реакции возможен только после 24 ч инкубации.

5.Тест на определение индолообразования. Для определения способности бактерий образовывать индол необходимо использовать среды, содержащие триптофан. В пробирку с суточной культурой исследуемого штамма H.influenzae, суспензированного в питательном бульоне (шоколадный бульон), помещают индикаторную индольную тест-полоску, пропитанную реактивом, так чтобы она находилась над поверхностью суспензии. Инкубируют при температуре 35–37оC в течение 18–24 ч. При положительном результате появляется розовое окрашивание тест-полоски.

Индикаторные индольные тест-полоски

Состав:

  • р-диметиламидобензальдегид – 3,0–5,0 г;

  • этиловый спирт 96% – 50 мл;

  • концентрированная H2PO4 – 10 мл.

Приготовление. Ингредиенты растирают в ступке и перемешивают. Готовым раствором пропитывают фильтровальную бумагу, высушивают и нарезают полосками.

6.Тест на наличие орнитиндекарбоксилазы. При определении орнитиндекарбоксилазы используются диски с орнитином (СИБ, bioMerieux, BBL). Диск помещают в пробирку с 0,3–0,5 мл физиологического раствора и добавляют несколько капель суточной бульонной культуры H.influenzae, после чего заливают стерильным вазелиновым маслом и инкубируют в течение 18–24 ч при температуре 35–37оС.

При положительном результате появляется синее или интенсивное зеленое окрашивание.