Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

6 курс / Клинические и лабораторные анализы / Лабораторная_диагностика_туберкулеза_Ерохин_В_В_ред_

.pdf
Скачиваний:
3
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
6.25 Mб
Скачать

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

агностического материала), однако для данной категории пациентов, которым уже назначена адекватная химиотерапия, время получения результатов ЛЧ не столь критично.

Эффективность лечения туберкулеза по результатам ускоренного определения лекарственной чувствительности МБТ молекулярно-ге- нетическими методами. В настоящее время химиотерапия туберкулеза требует пересмотра подходов. Эмпирическое лечение при неизвестной лекарственной устойчивости микобактерий зачастую грозит не только снижением эффективности курса терапии, но и развитием дополнительной резистентности к ранее действенным препаратам, и как следствие, формированием хронических бациллярных форм туберкулеза. Химиотерапию следует проводить только при известном спектре лекарственной устойчивости возбудителя, выделенного от больного. Очевиден и тот факт, что быстрое назначение адекватного лечения резко повышает шансы больного туберкулезом на выздоровление. В этих условиях особое значение приобретает доступное, качественное и быстрое определение лекарственной чувствительности МБТ.

В противотуберкулезных учреждениях, где не используются ускоренные методы выявления и определения ЛЧ врач вынужден выбирать схему химиотерапии, руководствуясь такими критериями, как категория больного (если впервые выявленный, то туберкулез чувствительный) или наличие контактов пациента с больным туберкулезом родственником. Больной 2–3 месяца вынужден получать химиотерапию, которая может оказаться неадекватной. Коррекцию химиотерапии врач сможет провести только после получения результатов выявления микобактерий и постановки теста на ЛЧ на плотных средах. При использовании ускоренных методов определения ЛЧ врач может сразу же назначить правильное лечение.

Проведенные исследования показали, что ранняя коррекция курса химиотерапии по результатам молекулярно-генетических тестов определения ЛЧ у больных с выявленным МЛУ-туберкулезом привела к быстрому (в течение 6 месяцев лечения) абациллированию мокроты и заживлению полостей распада, тогда как у больных, которым схема химиотерапии корректировалась позже по данным классических методов определения ЛЧ, в эти же сроки продолжалось бактериовыделение и инволюция воспалительнодеструктивных изменений в легких была замедленной.

218

Заключительная часть (5 мин)

Использование ускоренных методов микробиологической диагностики туберкулеза позволяет на этапе обследования больного при поступлении в стационар выявлять устойчивость МБТ к ПТП и назначать адекватный режим химиотерапии в интенсивную фазу лечения, что сокращает сроки абациллирования, повышает эффективность лечения и предотвращает распространение лекарст- венно-устойчивых штаммов M.tuberculosis.

Рекомендуемая литература

1.Бастиан И., Порталс Ф. Туберкулез с множественной лекарственной устойчивостью. – М.: Медицина и жизнь, 2003.

2.Васильева И.А., Черноусова Л.Н., Заседателев А.С., Соболев А.Ю., Михайлович В.М. Клиническое значение микрочиповой технологии определения лекарственной устойчивости микобактерий туберкулеза // Проблемы туберкулеза. – 2002 – № 6 – С. 21–24.

3.Исакова Ж.Т. Практическое значение тест-системы «ТБ-био- чип MDR» в экспресс-идентификации штаммов М. tuberculosis с множественной лекарственной устойчивостью // Клиническая лабораторная диагностика. – 2009. – № 2. – С. 50–51.

4.Кузьмин А.В., Васильева И.А., Черноусова Л.Н. Эффективность химиотерапии деструктивного туберкулеза легких, основанной на результатах экспресс-детекции лекарственной чувствительности к изониазиду и рифампицину тест-системой – «ТБ-БИО- ЧИП»// Проблемы туберкулеза и болезней легких. – 2006. – №8. – С. 17–23.

5.Hillemann D., Rusch-Gerdes S., Richter E. Evaluation of the GenoType MTBDRplus Assay for Rifampin and Isoniazid Susceptibility Testing of Mycobacterium tuberculosis Strains and Clinical Specimens// J Clin Microbiol. – 2007. – № 45(8). – Р. 2635–2640.

6.Mitchinson D.A., Nunn A.J. Influence of initial drug resistance on the response to short-course chemotherapy of pulmonary tuberculosis// Am Rev Respir Dis. – 1986. – № 133. – Р. 423–430.

7.Rossman M.D., MacGregor R.R. Tuberculosis: clinical management and new challenges // McGraw Hill Inc., New York, 1995.

Материально-техническое обеспечение

Мультимедийная или проекционная демонстрационная системы, экран, лазерная указка; набор тематических слайдов.

РАЗДЕЛ 1. Лекционные материалы

219

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Модуль 12. Организация лаборатории молекулярногенетических методов исследований

Тема 12.1. «Задачи лаборатории молекулярно-генетических методов исследований»

Количество аудиторных часов – 1

Примерный план лекции

Основные вопросы, освещаемые в лекции:

Важность обеспечения комплексных микробиологических и молекулярно-генетических исследований, согласно алгоритму лабораторной диагностики туберкулеза и микобактериальных инфекций.

Обеспечение качества исследований в лабораториях, применяющих молекулярно-генетические методы диагностики.

Ускоренное выявление МБТ и НТМБ

Сокращение сроков определения ЛУ

Точная видовая и штаммовая идентификация микобактерий

Вводная часть (5–10 мин)

Во введении рекомендуется сформировать представление о том, что тесное взаимодействие всех структурных подразделений лабораторной службы направлено на скорейшее установление диагноза туберкулез, подтвержденного всеми возможными лабораторными методами молекулярно-генетической и микробиологической диагностики.

Всемирная Организация Здравоохранения разработала новую стратегию "Остановить ТБ". Ее целью является значительное уменьшение глобального бремени туберкулеза к 2015 году, путем обеспечения для всех категорий пациентов с туберкулезом всеобщего доступа к высококачественной диагностике и ориентированному на пациента лечению. Стратегия также поддерживает разработку новых и эффективных инструментов для профилактики, выявления и лечения туберкулеза.

В силу сложившихся эпидемиологических условий исследование биологического материала на наличие микобактерий является приоритетным направлением ранней диагностики туберкулеза и микобактериальных инфекций. Предпочтение должно отдаваться ускоренным методам выявления с применением современных мо- лекулярно-генетических и микробиологических технологий, обеспечивающих высокую чувствительность и специфичность исследований.

220

При туберкулезе и заболеваниях, вызванных нетуберкулезными микобактериями диагностика и лечение не должны представлять собой два отдельных подхода. Лечение должно быть основано на своевременном установлении спектра лекарственной чувствительности возбудителя в каждом конкретном случае туберкулеза или микобактериальной инфекции. Работа лаборатории должна способствовать максимальному решению поставленных задач.

Следует подчеркнуть, что залогом правильной организации лабораторной службы является объединение микробиологической и молекулярно-генетической диагностики в цельный взаимодополняющий комплекс. Кроме того, следует стремиться, чтобы на пути создания подобных комплексов было как можно меньше преград.

Организация комплексных исследований требует учитывать потребности каждого структурного подразделения в обеспечении специализированными помещениями, оборудованием и расходными материалами. Длительные исследования требуют от работников лаборатории постоянной, активной и планомерной работы с диагностическим материалом, основанной на комплексе взаимодополняющих методов.

РАЗДЕЛ 1. Лекционные материалы

221

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Основная часть (30 мин)

В основной части лекции рекомендуется развить представление о том, что тесное взаимодействие всех структурных подразделений лабораторной службы направлены на решение задач быстрого выявления и установления лекарственной чувствительности возбудителя туберкулеза и микобактериальных инфекций.

Кроме того, необходимо уделить внимание рассмотрению основных требований, применяемых к выбору тактики лабораторной диагностики, методам, призванным решить основные задачи диагностики туберкулеза и микобактериальных инфекций, мерам по организации лабораторий, использующих молекулярно-генетиче- ские методы, мерам по предотвращению контаминации и контролю качества лабораторных исследований.

Помощь пациентам начинается с качественной лабораторной диагностики, гарантированной исследованиями с высокой чувствительностью и специфичностью. Для постановки окончательного диагноза туберкулез и начала адекватного лечения необходимо выделить и идентифицировать M.tuberculosis и провести тесты для определения лекарственной чувствительности (ЛЧ). Методы лабораторной диагностики, применяемые для этих целей, в максимально короткие сроки должны давать ответ об индивидуальном спектре ЛЧ возбудителя.

Среди лабораторных исследований, используемых для диагностики микобактериальных инфекций, ускоренные микробиологические и молекулярно-генетические методы являются революционным направлением, наиболее динамично развивающимся в настоящее время. Их значение трудно переоценить, когда речь идет о характеристике возбудителя такого инфекционного заболевания как туберкулез.

Стратегия, основанная на комплексе ускоренных микробиологических и молекулярно-генетических методов, позволяет в течение короткого времени по результатам лекарственной чувствительности микобактерий подбирать индивидуальный режим химиотерапии. В результате повышается эффективность лечения, предотвращается распространение инфекции, сокращаются сроки пребывания больного в стационаре.

Координация работы микробиологических лабораторий всех ступеней может быть обеспечена использованием общих диагностических алгоритмов, учитывающих оснащенность и возможности лабораторий.

222

В лабораториях противотуберкулезной службы проводятся исследования с высокопатогенными микроорганизмами, персонал подвергается высокому риску заражения, в связи с этим, при выборе объема и перечня исследований необходимо учитывать мате- риально-технические возможности лаборатории, обеспечивающие соответствие методик качественному и безопасному выполнению анализов.

Культуральные методы играют ключевую роль в диагностике и используются для выполнения тестов на выявление возбудителя в диагностическом материале, его идентификации и проведения тестов на ЛЧ. Выделение микобактерий обеспечивает постановку точного диагноза туберкулеза или заболевания, вызванного нетуберкулезными микобактериями.

Использование жидких сред в системе ВАСТЕС MGIT 960 существенно сокращает время получения результатов и способствует стандартизации, обеспечивающей достоверность исследований.

Все положительные культуры должны быть исследованы для дифференциации МБТК от НТМБ и неспецифической микрофлоры перед постановкой теста на ЛЧ. Лаборатории, проводящие определение ЛЧ, должны, как минимум, дифференцировать МБТК от других микобактерий.

Современные методики, используемые для первичной дифференциации МБТК от НТМБ, включают иммунохроматографические тесты (определение фракции белка MPT64, специфичного для МБТК) и методы, основанные на ПЦР, в настоящее время являющиеся золотым стандартом для видовой идентификации НТМБ.

Применение современных молекулярно-генетических методов для диагностики туберкулеза и микобактериальных инфекций

Основными достоинствами молекулярно-генетических методов является высокая скорость проведения исследования (от 2 до 48 часов), высокая чувствительность при выявлении возбудителя в диагностическом материале (от 50 до 500 клеток МБТК в образце), высокая специфичность анализа (до 99%) и относительная дешевизна исследования.

Методы молекулярной диагностики в настоящее время позволяют:

В течение 1 дня с применением базового метода ПЦР – определять наличие в диагностическом материале микобактерий туберкулеза.

РАЗДЕЛ 1. Лекционные материалы

223

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Втечение 1–3х дней в зависимости от применяемой технологии (гибридизация, ПЦР в режиме реального времени) определять лекарственную чувствительность выявленного патогена к противотуберкулезным препаратам основного и резервного ряда.

Втечение 1–3х дней проводить идентификацию культуры микобактерий до вида.

Оптимальный комплекс исследований включает:

выявление микобактерий методами люминесцентной микроскопии и/или молекулярно-генетическими методами

выявление/исключение МЛУ ТБ-определение устойчивости к изониазиду и рифампицину молекулярно-генетическими методами

исключение/подтверждение диагноза МЛУ или ШЛУ туберкулеза, определение спектра устойчивости к основным и резервным препаратам молекулярно-генетическими методами

выделение культур на плотных и жидких средах

подтверждение принадлежности выделенных культур к комплексу микобактерий туберкулеза молекулярно-генетическим и/или иммунологическим методами

определение спектра лекарственной чувствительности на жидких средах с применением автоматических анализаторов к основным и резервным препаратам

определение вида и лекарственной чувствительности НТМБ Молекулярные методы не исключают необходимость исполь-

зования общепринятых культуральных методов и методов фенотипического определения лекарственной устойчивости.

Молекулярно-генетические методы подходят для внедрения на уровне центральных региональных лабораторий с возможностями обеспечения необходимой инфраструктуры. В лабораториях более низкого уровня, не обеспеченных соответствующей лабораторной базой, возможно применение картриджной технологии, не требующей зонирования помещений.

Методом, на котором основана вся молекулярно-генетическая диагностика, направленная на выявление, идентификацию и определение ЛЧ возбудителя туберкулеза и микобактериозов, является полимеразная цепная реакция (ПЦР), в основе которой лежит амплификация специфического участка генома исследуемого патогена.

Метод ПЦР лежит в основе других молекулярно-генетических методик, использующих продукты амплификации нуклеиновых

224

кислот: секвенирование, гибридизация на стриповых мембранах и

 

 

микрочипах.

 

Во фтизиатрии молекулярно-генетические методы используют

 

для:

 

– выявления возбудителя туберкулеза в диагностическом мате-

 

риале;

 

– определения ЛЧ M.tuberculosis к противотуберкулезным препа-

 

ратам;

 

– видовой идентификации микобактерий

 

– выявления штаммовых различий и проведения масштабных мо-

 

лекулярно-эпидемиологических исследований.

 

В качестве диагностического материала, как и в случае культу-

 

ральных исследований, могут быть использованы все виды биоло-

 

гических жидкостей и биоптатов. Предварительная обработка ди-

 

агностического материала проводится в соответствии с методикой,

 

принятой в микробиологической лаборатории, выполняющей ис-

 

следование на туберкулез.

 

Характеристика наборов реагентов, используемых при проведении

 

амплификации нуклеиновых кислот для бактерий рода Mycobac-

 

terium. В настоящее время для анализа с помощью молекулярно-

 

генетических методов утверждены и рекомендованы к использо-

 

ванию наборы реагентов российских и зарубежных

 

производителей, перечисленные:

 

– ПЦР-РВ с праймерами, фланкирующими вставочную после-

 

довательность 6110 для выявления ДНК бактерий МБТК в клини-

 

ческом материале и культурах микроорганизмов.

 

– ПЦР-РВ для дифференциации микобактерий M.tuberculosis,

 

M.bovis и M.bovis BCG в клиническом материале и культурах мик-

 

роорганизмов.

 

– ПЦР-РВ для выявления ДНК бактерий МТБК с одновремен-

 

ным определением устойчивости к рифампицину из клинического

материалы

цину и изониазиду.

материала.

 

– ПЦР-РВ для определения устойчивости МТБК к рифампи-

 

ПЦР с дальнейшей гибридизацией на биологических микро-

1. Лекционные

чипах для определения устойчивости к рифампицину, изониазиду

и фторхинолонам.

– ПЦР с дальнейшей гибридизацией на стриповых мембранах

для определения устойчивости к рифампицину и изониазиду, этам-

бутолу, фторхинолонам, аминогликозидам и циклическим пепти-

РАЗДЕЛ

дам.

 

 

 

 

225

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

ПЦР для бактерий МБТК с дальнейшей гибридизацией на стриповых мембранах с целью дифференциации внутри МБТК из клинического материала и культур (выявление M.tuberculosis,

M.africanum, M.bovis, M.microti, M.canettii).

ПЦР с дальнейшей гибридизацией на стриповых мембранах для определения и идентификации наиболее клинически значимых видов микобактерий: МТБК, НТМБ – M.avium, M.intracellulare, M.kansasii, M.malmoense.

ПЦР с дальнейшей гибридизацией на стриповых мембранах для идентификации 31-го вида НТМБ из культур.

Необходимо учитывать, что успех любой тест-системы, использующей молекулярно-генетические методы для диагностики туберкулеза, в первую очередь, зависит от качества исследуемого материала и от того, каким методом производится выделение ДНК. Микобактерии относятся к группе внутриклеточных патогенов, имеющих трехслойную клеточную стенку с пептидогли- кано-арабиногалактановым комплексом с высоким содержанием (до 60%) липидов и восков, кроме того, биологические образцы могут содержать много компонентов, ингибирующих термостабильную ДНК-полимеразу. В связи с этим, для выделения ДНК из диагностического материала используются многостадийные методы выделения на основе сорбентов. Использование малоэффективных упрощенных методов не допускается. Одношаговые методы возможно использовать только для выделения ДНК из культур и положительных пробирок BACTEC MGIT 960.

Требования к организации работ

Исследование материала, содержащего или подозрительного на наличие бактерий рода Mycobacterium, связано с необходимостью одновременного обеспечения и соблюдения персоналом правил биологической безопасности и требований к организации

ипроведению работ с целью предотвращения контаминации нуклеиновыми кислотами и (или) ампликонами исследуемых проб помещений и оборудования.

Исследования проводятся в организациях, имеющих лицензию

исанитарно-эпидемиологическое заключение о возможности проведения данных работ, выданных в установленном порядке.

Контроль качества молекулярно-генетических исследований

В лаборатории, использующей молекулярно-генетические методы в диагностических целях, проводят внутрилабораторный контроль качества проводимых исследований с периодичностью,

226

зависящей от объема выполняемой работы и определяемой руководителем лаборатории, но не реже одного раза в квартал.

Лаборатория должна принимать участие в мероприятиях ФСВОК не реже 1 раза в год. Внутрилабораторный и внешний контроль качества исследований осуществляют путем анализа шифрованных аттестованных контрольных панелей, содержащих "положительные" и "отрицательные" пробы.

Качество лабораторных исследований обеспечивается

использованием промышленно изготовленных наборов и реагентов

использованием сертифицированного оборудования, разрешенного для применения в РФ как изделия медицинского назначения

поэтапным внедрением собственных систем управления качеством в соответствии с приказом МЗ РФ от 07.02.2000 №45 и рекомендациями ГОСТ Р ИСО 15189–2006, ГОСТ Р 53022.1-

2008, ГОСТ Р 53022.3-2008, ГОСТ Р 53022.4-2008, ГОСТ Р 53079.1-2008, ГОСТ Р 53079.22008, ГОСТ Р 53079.3-2008, ГОСТ Р 53079.4-2008 при организационно-методической поддержке научно-методических центров и Федеральных рефе- ренс-лабораторий

участием в соответствующих разделах ФСВОК.

Критерии выбора диагностических тестов для выявления больных туберкулезом

При выборе для диагностики туберкулеза адекватных реальным условиям алгоритмов и технологий необходимо руководствоваться следующими принципами:

Имеющиеся методы и технологии лабораторной диагностики

 

 

туберкулеза не являются взаимоисключающими.

 

• Метод микроскопии идентифицирует кислотоустойчивые бак-

 

 

терии, но не МБТК.

материалы

Применение традиционных микробиологических методов не-

 

обходимо для получения культуры с целью идентификации и

 

постановки теста на лекарственную чувствительность. Все по-

 

первых результатов лекарственной устойчивости по мутациям,

Лекционные1.

 

ложительные культуры должны быть идентифицированы для

 

 

подтверждения МБТК или НТМБ.

 

Молекулярные тесты, основанные на ПЦР, используются для

 

 

прямого скрининга при выявлении заболевших и получения

 

 

определяющим устойчивость к противотуберкулезным препа-

РАЗДЕЛ

 

ратам.

 

 

227