Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

4 курс / Оториноларингология / Иммуноцитологические_исследования_в_оториноларингологии_Арефьева

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
16.82 Mб
Скачать

5.МЕТОДЫ ЗАБОРА И ОБРАБОТКИ МАТЕРИАЛА

Внастоящее время для забора исследуемого материала используется множество способов, каждый из которых обладает своими преимуществами и недостатками. Известны следующие методы забора материала (Шевры-

гин Б.В., 1998):

метод отпечатков (непосредственное прикладывание к слизистой оболочке поверхности предметного стекла);

метод перепечатков (материал забирают зондом, валиком, кото-

рыми затем делают отпечатки на предметном стекле);

метод последовательных смывов и промываний;

метод соскоба;

пункционный метод (позволяющий получить материал из глу-

боких тканей);

метод отпечатки кусочками тканей, удаленных дли гистологиче-

ских исследований.

Содержание изучаемых клеток в образцах зависит от способа получе-

ния материала (табл. 1.) и места забора образцов (табл. 2.) (Settipane G.A., 1999).

Таблица 1

Содержание клеток в биологических образцах в зависимости от способа получения материала (по Settipane,G.A.)

на примере слизистой оболочки носа

 

 

Методика забора

 

Определяемые клетки

 

 

 

 

 

отделяемое

 

соскоб

 

биопсия

 

(секрет)

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Мерцательный эпителий

нет

 

да

 

да

Бокаловидные клетки

нет

 

да

 

да

Эозинофилы

да

 

да

 

да

Базофилы

да

 

да

 

да

Тучные клетки

редко

 

да

 

да

Нейтрофилы

да

 

да

 

да

Бактерии

часто

 

редко

 

редко

Подслизистый слой

нет

 

нет

 

да

 

 

 

 

 

 

 

50

 

 

 

 

Таблица 2

Клеточный состав риноцитограмм в зависимости от места забора образцов (по Guy A. Settipane)

 

Место забора

Характеристика

 

 

Нижняя носовая раковина:

Много нейтрофилов, редко встречаются эозино-

передняя поверхность

филы

средняя треть

Респираторный эпителий с эозинофилъными и

 

 

базофильными клетками

 

 

Средняя носовая раковина

Большое содержание эозинофилов

 

 

Верхняя носовая раковина

Трудно визуализируется, возможна стимуляция

 

 

назального кардиального рефлекса

 

 

Перегородка

Кровотечение, редко – эозинофилы

 

 

 

Наиболее распространенный эксфолиативный метод – метод мазков-пе-

репечатков, при котором для исследования используются лишь свободно ле-

жащие или готовые отторгнуться с поверхности слизистой оболочки клетки. Метод нетравматичный, хорошо переносится больными.

Для приготовления мазка перепечатка материал забирают ватным туп-

фером из-под средней носовой раковины или из лакун небных миндалин. За-

бранный материал вращательными движениями без надавливания наносят на предварительно обезжиренное предметное стекло. Полученные мазки высу-

шивают на воздухе. Фиксация проводится в 96% этаноле в течение 1 минуты.

Мазок окрашивают по методу Романовского-Гимза. Отмывание от краси-

теля производят дистиллированной водой. После высушивания образец изу-

чают под малым увеличением (х150) для определения качества окраски и ко-

личества клеток в мазке, затем микроскопируют под иммерсией при большем увеличении (х630).

Также возможно исследование материала, полученного из естествен-

ных полостей, например околоносовых пазух. Способ забора осуществляется следующим образом: промывные жидкости из пазухи получают по транс-

назальному катетеру. В зависимости от цели исследования материал забирают перед, во время или после проведения лечебных манипуляций. Промывные

51

Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/

жидкости центрифугируют 10 минут при 1500 об/мин, надосадочную жид-

кость удаляют и осадок перемешивают, каплю центрифугата наносят на пред-

метное стекло и аккуратно без нажима размазывают с последующим высу-

шиванием. Фиксация, окрашивание и микроскопия проводятся по выше-

описанному методу.

Иммуноцитологические исследования (иммуноцитограммы) в отори-

ноларингологии включают в себя изучение клеточного представительства слизистой оболочки носа, лакун небных миндалин, промывных жидкостей из пораженных пазух и отделяемого из уха. Просчитывают 200 клеток, опреде-

ляя процентное количество нейтрофилов, лимфоцитов, макрофагов, эозино-

филов, цилиндрического эпителия, плоского эпителия, безъядерной цито-

плазмы плоского эпителия.

Обязательным условием при изучении иммуноцитограмм является под-

счет абсолютного количества клеток в мазке (цитоз мазка), так как определе-

ние относительных показателей (процентного количества клеток) может дать ложное представление об истинном характере процесса. Например, если относительное количество нейтрофилов в риноцитограмме составляет 90%,

то при общем цитозе в 50 клеток – абсолютное количество составит 45

нейтрофилов, что не является признаком воспаления (у практически здоро-

вых лиц в мазке может находиться до 100 нейтрофилов). При цитозе в 1000

клеток абсолютное количество нейтрофилов составит 900 клеток, что интер-

претируется как воспалительный процесс.

И, наоборот, низкое процентное содержание нейтрофилов не является по-

казателем нормы, так как при высоком цитозе показатели абсолютного содер-

жания клеток в мазке будут повышены.

Изучение деструктивных процессов В клетках проводят по методу Л.А. Матвеевой (1986) с определением среднего показателя деструкции клеток (CПД), индекса цитолиза клеток (ИЦК), индекса деструкции клеток

(ИДК) по следующим формулам:

52

СПД= (1х n1+2х n2+3х nЗ+4х n4):100

ИЦК= n4: (n0+n1+n2+n3+n4)

ИДК5= (n1+n2+n3+n4): 100, где

0, 1, 2, 3, 4 — номера классов деструкции;

n0, n1, n2, nЗ, n4 — количество клеток соответствующего класса.

Деструкцию клеток оценивают по методике Л.А. Матвеевой (1986) (табл. 3).

Нулевой класс деструкции включает в себя целые клетки с нормальной структурой ядра и цитоплазмы (рис. 26, 27, 36, 37, 45, 46).

При первом классе деструкции ядро сохраняет нормальную структуру,

а цитоплазма подвергается частичному (не более половины) деструктивному повреждению (рис. 28, 29, 38, 39, 47).

Второй класс деструкции характеризуется частичным деструктивным повреждением ядра и значительным (более половины, но не полной) деструк-

цией цитоплазмы (рис. 30, 31, 40, 41).

При третьем классе деструкции ядро подвергается значительной (но не-

полной) деструкции, цитоплазма полностью деструктирована (рис. 32, 33, 42,

43, 46).

Ядро и цитоплазма клеток четвертого класса деструкции полностью де-

структированы (рис. 34, 35, 44, 47).

Помимо этого, определяют индекс модуляции цилиндрического эпи-

телия (отношение количества модулированных клеток к общему количеству цилиндрического эпителия), процент метаплазии цилиндрического эпителия в плоский (количество плоского эпителия и чешуек).

53

Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/

Таблица 3

Деструкция клеток

Фагоцитарную активность нейтрофилов исследуют при наличии мик-

рофлоры в мазке, вычисляя процент фагоцитирующих нейтрофилов, содер-

жащих микробные клетки (рис. 48).

Среди фагоцитирующих нейтрофилов учитывают процент целых нейтрофилов, содержащих внутри клетки микроорганизмы, и процент раз-

54

рушенных нейтрофилов (l–4-гo классов деструкции), в протоплазме кото-

рых сохранились непереваренные микроорганизмы, и рассчитывают показа-

тель незавершенности фагоцитоза по формуле:

Nd/(Nc+Nd) x 100, где

Nd – число деструктированных нейтрофилов, содержащих в протоплазме не-

переваренные бактерии;

Nc – число целых нейтрофилов, содержащих микроорганизмы.

Показатель незавершенного фагоцитоза выражают в процентах.

Целые нейтрофилы с сохранённой структурой, содержащие внутри-

клеточно бактерии, расцениваются как адекватно фагоцитирующие клетки (рис. 49), деструктированные нейтрофилы (клетки с поврежденной мембраной и разрушенным ядром) с наличием микроорганизмов внутри клетки – это клетки, не способные их переварить (рис. 50).

Рис. 26. Целые нейтрофилы (0 класс деструкции) в назальной слизи больного острым гнойным риносинуситом (х630)

55

Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/

Рис. 27. Целые нейтрофилы (0 класс деструкции) промывных жидкостей из воспаленной пазухи больного хроническим гнойным риносинуситом (х630)

Рис. 28. Нейтрофилы со слизистой оболочки носа 1-го класса деструкции (х630)

56

Рис. 29. Нейтрофилы промывных жидкостей из воспаленных пазух 1-го класса деструкции (х630)

Рис. 30 Нейтрофилы назальной слизи 2-го класса деструкции (х630)

57

Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/

Рис. 31. Нейтрофилы промывных жидкостей из воспаленных пазух 2-го класса деструкции (х630)

Рис. 32. Нейтрофилы назальной слизи: 1 – 2-й класс деструкции;

2 – 3-й класс деструкции

58

Рис. 33 Нейтрофилы назальной слизи: 1 – 2-й класс деструкции;

2 – 3-й класс деструкции

Рис. 34. Нейтрофил со слизистой оболочки носа

4-го класса деструкции (х630)

59

Рекомендовано к покупке и изучению сайтом МедУнивер - https://meduniver.com/