- •Рецензенты:
- •1.2. Статус клинико-диагностической лаборатории
- •1.4. Организация рабочих мест и оснащение клинико-диагностической лаборатории
- •1.5. Правила безопасной работы в лаборатории
- •1.5.1. Санитарно-противоэпидемический режим в клинико-диагностической лаборатории
- •1.5.2. Средства индивидуальной защиты
- •1.5.3. Правила обеззараживания использованного биологического материала
- •1.5.4. Способы и средства дезинфекции и стерилизации изделий медицинского назначения в кдл
- •1.5.5. Противопожарная безопасность в кдл
- •1.5.6. Правила безопасной работы с едкими веществами (кислоты, щелочи)
- •1.5.7. Первая помощь пострадавшим в лаборатории
- •2.2. Средства пробоподготовки в лаборатории. Дозирующие устройства
- •2.3. Центрифугирование
- •2.4. Перемешивающие и термостатирующие устройства
- •2.5. Весоизмерительная техника
- •2.6. Лабораторные реагенты
- •Правила хранения химических реактивов
- •2.7. Правила приготовления растворов
- •Например, широко используемый для работы с клетками крови фосфатный буфер (рН 5,8-8,2) приготавливается следующим образом:
- •2.7.1. Определение рН растворов
- •2.7.2. Фильтрование
- •2.7.3. Определение плотности растворов
- •2.7.4. Измерение температуры растворов
- •2.8. Оборудование клинико-диагностической лаборатории
- •3.2. Запрос на анализ
- •3.3. Взятие материала
- •3.6. Выбор метода и режима исследования
- •3.7. Обеспечение качества лабораторных исследований
- •3.7.1. Система управления качеством лабораторных исследований
- •3.8. Представление результатов лабораторных исследований
- •3.9. Принципы оценки результатов лабораторных исследований
- •3.9.2. Референтные интервалы лабораторных показателей
- •4.1.1. Основные условия измерений при работе с фотометрической аппаратурой
- •4.1.2. Способы измерений, расчета и представления результатов фотометрии
- •4.2.1. Способы детекции результатов иммунохимической реакции
- •4.2.2. Краткий обзор некоторых иммунохимических тестов
- •4.2.3. Радиоиммунологический анализ
- •4.2.4. Иммуноферментный анализ
- •4.2.5. Иммуноблотинг
- •4.3. Методы фракционирования биологических жидкостей
- •4.3.2. Электрофорез
- •Иммуноэлектрофорез
- •Электрофорез с последующей иммунофиксацией
- •4.4. Методы микроскопии в клинико-диагностической лаборатории
- •4.4.1. Методы световой микроскопии
- •4.4.2. Современные микроскопические приборы
- •Инвертированные микроскопы проходящего света
- •Люминесцентный микроскоп
- •4.4.3. Уход за микроскопом
- •4.5. Сухая химия
- •4.6. Молекулярно-биологические методы исследований
- •4.6.1. Применение пцр в клинической практике
- •4.6.2. Пцр в реальном времени
- •Глава 1. Введение
- •Глава 2. Цель, задачи, критерии контроля качаства
- •Глава 3. Контрольные материалы
- •Глава 4. Этапы лабораторных исследований, подлежащие контролю качества
- •Глава 5. Проведение внутрилабораторного контроля
- •Глава 6. Стадии внутрилабораторного контроля
- •Глава 1. Введение
- •Глава 2. Цель и задачи
- •Глава 3. Организация внешнего контроля качества
- •Глава 4. Мероприятия внешнего контроля качества
- •Глава 5. Статистическая обработка и оценка результатов внешнего контроля качества
Иммуноэлектрофорез
В данную группу объединены методы, конечный этап разделения которых основан на специфической реакции связывания антигена пробы с антителом добавляемой в носитель сыворотки, что позволяет определить состав исходной смеси антигенов. Существует несколько десятков модификаций иммуноэлектрофореза. Рассмотрим некоторые из них.
Классический иммуноэлектрофорез. На первом этапе производят разделение белков в забуференном агаровом или агарозном геле, а затем латерально, параллельно разделенным компонентам прорезают щели, которые заполняют антисывороткой. Выдерживают в течение некоторого времени для диффузии компонентов (обычно ночь). Взаимодействие антиген-антитело обнаруживается по дугам преципитации (рисунок 4.14). Метод позволяет выявить антигенный состав сложной смеси белков и идентифицировать отдельные компоненты смеси с помощью моноспецифических антисывороток. В клинике используется для типирования парапротеинов сыворотки и выявления белков Бенс-Джонса. Недостаток метода – отсутствие возможности количественного анализа.
Рисунок 4.14 – Схема классического варианта иммуноэлектрофореза
Процесс включает следующие стадии: 1) электрофоретическое разделение белков (антигенов) в геле; 2) внесение иммунной сыворотки в канавку, сформированную в геле; 3) диффундирование АГ и АТ в геле навстречу друг другу, в результате чего в месте их взаимодействия (при условии соответствия АГ и АТ) возникают дуги преципитации. Процесс иммунодиффузии продолжается около 24 часов во влажной камере; 3) промывка пластины геля для удаления белков, которые не участвовали в преципитации; 4) сушка и окрашивание образцов специальными красителями. Результат оценивают по количеству, положению и форме зон преципитации.
Иммуноэлектрофорез методом переноса. Основан на принципе классического иммуноэлектрофореза. Отличие состоит в том, что первичное электрофоретическое разделение производится на ацетатцеллюлозе, затем ацетатцеллюлозу переносят на поверхность чашки с агаром и на расстоянии 3-5 мм параллельно зоне электрофоретического разделения помещают полоски фильтровальной бумаги, смоченные соответствующей антисывороткой. При взаимодействии антигена и специфических антител образуются дуги преципитации. Преимущества метода – возможность более легкой идентификации отдельных белков (описанная методика уменьшает плотность дуг преципитации).
Ракетный имуноэлектрофорез (двумерный) происходит по схеме, представленной на рисунке 4.15.
Рисунок 4.15 – Схема проведения ракетного электрофореза
Электрофорез происходит в геле агарозы, содержащем специфические антитела. При этом антигены (Ag) движутся по направлению к аноду и взаимодействуют с АТ в геле. Это приводит к образованию длинных ракетоподобных участков преципитации, которые легко увидеть при окрашивании геля. Процесс завершается, конца зона преципитации образует на конце острие. Длина и площадь зоны преципитации пропорциональны концентрации исследуемого антигена.
Описанный метод позволяет провести количественное определение концентрации антигена, сравнивая тестовые и контрольные образцы, одновременно подвергшиеся электрофорезу. Общая продолжительность реакции 3-18 часов. Используется специальная электрофоретическая камера с охлаждением. Существует модификация данного метода с применением ацетат-целлюлозных мембран.