4 курс / Дерматовенерология / Коллаген_в_косметической_дерматологии_Хабаров_В_Н
.pdfПирогова М.М., Помыткин И.А. Целлюлит и архитектура коллагена в коже: можно ли вернуть нормальную структуру и функцию кожи препаратами интерлейкина-1α? // Косметика и медицина. 2016. № 4. С. 341-346.
Столярская Е. Избавляемся от целлюлита легко и эффективно. М. : ЛабиринтПресс, 2002.
Турова Е.А. Об этиологии и патогенезе целлюлита // Вестн. эстетической медицины. 2008. Т. 7, № 4. С. 74-83.
Турова Е.А., Зубкова С.А. Патогенез целлюлита - современный научный взгляд // Мезотерапия. 2012. Т. 18, № 2. С. 192-197.
Шишкинская Е.В. Критерии выбора мезопрепарата для антицеллюлитных программ // Инъекционная косметология. 2016. № 4. С. 46-48.
Alameddine H.S., Morgan J.E. Matrix metalloproteinases and tissue inhibitor of metalloproteinases in inflammation and fibrosis of skeletal muscles // J. Neuromuscul. Dis. 2016. Vol. 3, N 4. P. 455-473. Alexander C.M., Kasza I., Yen C.L., Reeder S.B. et al. Dermal white adipose tissue: a new component of the thermogenic response // J. Lipid Res. 2015. Vol. 56, N 11. P. 2061-2069.
Alizadeh Z., Halabchi F., Mazaheri R., Abolhasani M. et al. Review of the mechanisms and effects of noninvasive body contouring devices on cellulite and subcutaneous Fat // Int. J. Endocrinol. Metab. 2016. Vol. 14, N 4. Article ID e36727.
Arner E., Westermark P.O., Spalding K.L., Britton T. et al. Adipocyte turnover: relevance to human adipose tissue morphology // Diabetes. 2010. Vol. 59, N 1. P. 105-109.
Arner P., Sinha I., Thorell A., Rydén M. et al. The epigenetic signature of subcutaneous fat cells is linked to altered expression of genes implicated in lipid metabolism in obese women // Clin. Epigenetics. 2015. Vol. 7. P. 93.
Ascher B., Fellmann J., Monheit G. ATX-101 (deoxycholic acid injection) for reduction of submental fat // Expert Rev. Clin. Pharmacol. 2016. Vol. 9, N 9. P. 11311143.
Bertossi D., Conti G., Bernardi P. et. al. Classification of fat pad of the third medium of face // Aesthet. Med. 2015. Vol. 1. P. 103-109. Boyette L.B., Tuan R.S. Adult stem cells and diseases of aging // J. Clin. Med. 2014. Vol. 3, N 1. P. 88-134.
Buechler C., Krautbauer S., Eisinger K. Adipose tissue fibrosis // World J. Diabetes. 2015. Vol. 6, N 4. P. 548-553.
Chen D.L., Cohen J.L., Green J.B. Injectable agents affecting subcutaneous fats // Semin. Cutan. Med. Surg. 2015. Vol. 34, N 3. P. 134-137.
Craig V.J., Zhang L., Hagood J.S., Owen C.A. Matrix metalloproteinases as therapeutic targets for idiopathic pulmonary fibrosis // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 2015. Vol. 53, N 5. P. 585-600.
Медицинские книги
@medknigi
Crewe C., An Y.A., Scherer P.E. The ominous triad of adipose tissue dysfunction: inflammation, fibrosis, and impaired angiogenesis // J. Clin. Invest. 2017. Vol. 127, N 1. P. 74-82.
Dayer C,, Stamenkovic I. Recruitment of matrix metalloproteinase-9 (MMP-9) to the fibroblast cell surface by lysyl hydroxylase 3 (LH3) triggers transforming growth factor-P (TGF-P) activation and fibroblast differentiation // J. Biol. Chem. 2015. Vol. 290, N 22. P. 13 763-13 778.
De Godoy J.M., Groggia M.Y., Ferro Laks L., Guerreiro de Godoy M. de F. Intensive treatment of cellulite based on physiopathological principles // Dermatol. Res.
Pract. 2012. Article ID 834280. DiSpirito J.R., Mathis D. Immunological contributions to adipose tissue homeostasis //
Semin. Immunol. 2015. Vol. 27, N 5. P. 315-321. Divoux A., Tordjman J., Lacasa D., Veyrie N. et al. Fibrosis in human adipose tissue:
composition, distribution, and link with lipid metabolism and fat mass loss //
Diabetes. 2010. Vol. 59, N 11. P. 2817-2825.
Driskell R.R., Jahoda C.A., Chuong C.M., Watt F.M. et al. Defining dermal adipose tissue // Exp. Dermatol. 2014. Vol. 23, N 9. P. 629-631.
Dulauroy S., Di Carlo S.E., Langa F., Eberl G. et al. Lineage tracing and genetic ablation of ADAM12(+) perivascular cells identify a major source of profibrotic cells during acute tissue injury // Nat. Med. 2012. Vol. 18. P. 1262-1270.
El-Gowelli H.M., El-Sabaa B., Yosry E., El-Saghir H. Histopathological and ultrastructural characterization of local neuromuscular damage induced by repeated phosphatidylcholine/deoxycholate injection // Exp. Toxicol. Pathol. 2016. Vol. 68, N 1. P. 39-46.
Emanuele E., Bertona M., Geroldi D. A multilocus candidate approach identifies ACE and HIF1A as susceptibility genes for cellulite // J. Eur. Acad. Dermatol. Venereol.
2010. Vol. 24, N 8. P. 930-935.
Emanuele E., Minoretti P., Altabas K., Gaeta E. et al. Adiponectin expression in subcutaneous adipose tissue is reduced in women with cellulite // Int. J. Dermatol. 2011. Vol. 50, N 4. P. 412-416.
Ezure T., Amano S. Negative regulation of dermal fibroblasts by enlarged adipocytes through release of free fatty acids // J. Invest. Dermatol. 2011. Vol. 131. P. 20042009.
Ezure T., Amano S. Involvement of upper cheek sagging in nasolabial fold formation
//
Skin Res. Technol. 2012. Vol. 18. P. 259-264.
Ezure T., Amano S. Increment of subcutaneous adipose tissue is associated with decrease of elastic fibres in the dermal layer // Exp. Dermatol. 2015. Vol. 24. P. 924929.
Медицинские книги
@medknigi
Friedmann D.P., Vick G.L., Mishra V. Cellulite: a review with a focus on subcision //
Clin. Cosmet. Investig. Dermatol. 2017. Vol. 10. P. 17-23. Gaur M., Dobke M., Lunyak V.V. Mesenchymal stem cells from adipose tissue in
clinical applications for dermatological indications and skin aging // Int. J. Mol.
Sci. 2017. Vol. 18, N 1. pii: E208. Gesta S., Guntur K., Majumdar I.D., Akella S. et al. Reduced expression of collagen VI
alpha 3 (COL6A3) confers resistance to inflammation-induced MCP1 expression in
adipocytes // Obesity (Silver Spring). 2016. Vol. 24, N 8. P. 1695-1703. Giralt M., Villarroya F. White, brown, beige/brite: different adipose cells for different
functions? // Endocrinology. 2013. Vol. 154, N 9. P. 2992-3000. Guillermier C., Fazeli P.K., Kim S., Lun M. et al. Imaging mass spectrometry
demonstrates age-related decline in human adipose plasticity // JCI Insight. 2017.
Vol. 2, N 5. Article ID e90349.
Horikawa S., Ishii Y., Hamashima T., Yamamoto S. et al. PDGFRa plays a crucial role in connective tissue remodeling // Sci. Rep. 2015. Vol. 5. Article ID 17948.
Hwang S.R., Kim I.J., Park J.W. Formulations of deoxycholic acid for therapy: a patent review (2011-2014) // Expert Opin. Ther. Pat. 2015. Vol. 25, N 12. P. 14231440.
Iwayama T., Steele C., Yao L., Dozmorov M.G. et al. PDGFRa signaling drives adipose tissue fibrosis by targeting progenitor cell plasticity // Genes Dev. 2015.
Vol. 29, N 11. P. 1106-1119.
Jang J.E., Ko M.S., Yun J.Y., Kim M.O. et al. Nitric oxide produced by macrophages inhibits adipocyte differentiation and promotes profibrogenic responses in preadipocytes to induce adipose tissue fibrosis // Diabetes. 2016. Vol. 65.
P. 2516-2528.
Jayasinghe S., Guillot T., Bissoon L., Greenway F. Mesotherapy for local fat reduction //
Obes. Rev. 2013. Vol. 14, N 10. P. 780-791. Jedrychowski M.P., Liu L., Laflamme C.J., Karastergiou K. et a;. Adiporedoxin, an
upstream regulator of ER oxidative folding and protein secretion in adipocytes //
Mol. Metab. 2015. Vol. 4, N 11. P. 758-770. Jones D.H., Carruthers J., Joseph J.H., Callender V.D. et al. REFINE-1, a multicenter,
randomized, double-blind, placebo-controlled, phase 3 trial with ATX-101, an injectable
drug for submental fat reduction // Dermatol. Surg. 2016. Vol. 42, N 1. P. 38-49. Kasza I., Suh Y., Wollny D., Clark R.J. et al. Syndecan-1 is required to maintain
intradermal fat and prevent cold stress // PLoS Genet. 2014. Vol. 10, N 8. Article
Медицинские книги
@medknigi
ID e1004514.
Kępczyńska M.A., Zaibi M.S., Alomar S.Y., Trayhurn P. PCR arrays indicate that the expression of extracellular matrix and cell adhesion genes in human adipocytes is regulated by IL-1P (interleukin-1P) // Arch. Physiol. Biochem. 2017. Vol. 123, N 1. P. 61-67.
Khan M.H., Victor F., Rao B., Sadick N.S. Treatment of cellulite: Part I.
Pathophysiology // J. Am. Acad. Dermatol. 2010a. Vol. 62, N 3. P. 361-370. doi: 10.1016/j.jaad.2009.10.042. Khan M.H., Victor F., Rao B., Sadick N.S. Treatment of cellulite: Part II. Advances
and controversies // J. Am. Acad. Dermatol. 2010b. Vol. 62, N 3. P. 373-384; quiz 385-386.
Kim W.S., Park B.S., Sung J.H., Yang J.M. et al. Wound healing effect of adiposederived stem cells: a critical role of secretory factors on human dermal fibroblasts // J. Dermatol. Sci. 2007. Vol. 48, N 1. P. 15-24.
Kruglikov I., Trujillo O., Kristen Q., Isac K. et al. The facial adipose tissue: a revision // Facial Plast. Surg. 2016. Vol. 32, N 6. P. 671-682.
Kruglikov I.L. General theory of body contouring // J. Cosmet. Dermatol. Sci. 2014. Vol. 4. P. 117-127.
Kruglikov I.L., Scherer P.E. Skin aging: are adipocytes the next target // Aging. 2016.
Vol. 8. P. 1457-1469.
Kruglikov I.L., Wollina U. Soft tissue fillers as nonspecific modulators of adipogenesis //
Exp. Dermatol. 2015. Vol. 24. P. 912-915. Laudes M. Role of WNT signalling in the determination of human mesenchymal
stem cells into preadipocytes // J. Mol. Endocrinol. 2011. Vol. 46, N 2.
P. R65-R72.
Lee J.C., Daniels M.A., Roth M.Z. Mesotherapy, microneedling, and chemical peels //
Clin. Plast. Surg. 2016. Vol. 43, N 3. P. 583-595. Li Y., Zhang W., Gao J., Liu J. et al. Adipose tissue-derived stem cells suppress
hypertrophic scar fibrosis via the p38/MAPK signaling pathway // Stem Cell Res.
Ther. 2016. Vol. 7, N 1. P. 102.
Lim Y.C., Chia S.Y., Jin S., Han W. et al. Dynamic DNA methylation landscape
defines brown and white cell specificity during adipogenesis // Mol. Metab. 2016.
Vol. 5, N 10. P. 1033-1041. Liu M., Lei H., Dong P., Fu X. et al. Adipose-derived mesenchymal stem cells from
the elderly exhibit decreased migration and differentiation abilities with senescent
Медицинские книги
@medknigi
properties // Cell Transplant. 2017 Apr 26. Louis F., Pannetier P., Souguir Z., Le Cerf D. et al. A biomimetic hydrogel functionalized
with adipose ECM components as a microenvironment for the 3D culture of human
and murine adipocytes // Biotechnol. Bioeng. 2017. Vol. 114, N 8. P. 1813-8124.
Mansilla E., Díaz Aquino V., Zambon D., Marin G.H. et al. Could metabolic syndrome,
lipodystrophy, and aging be mesenchymal stem cell exhaustion syndromes? // Stem
Cells Int. 2011. Article ID 943216. Marangoni R.G., Masui Y., Fang F., Korman B. et al. Adiponectin is an endogenous
anti-fibrotic mediator and therapeutic target // Sci. Rep. 2017. Vol. 7, N 1. Article ID 4397.
Martins V., Gonzalez De Los Santos F., Wu Z., Capelozzi V. et al. FIZZ1-induced myofibroblast transdifferentiation from adipocytes and its potential role in dermal
fibrosis and lipoatrophy // Am. J. Pathol. 2015. Vol. 185, N 10. P. 2768-2776. Mashiko T., Mori H., Kato H., Kuno S. et al. Semipermanent volumization by an
absorbable filler: onlay injection technique to the bone // Plast. Reconstr. Surg.
Glob. Open. 2013. Vol. 1, N 1. pii: e4-e14. McCulloch L.J., Rawling T.J., Sjöholm
K., Franck N. et al. COL6A3 is regulated by
leptin in human adipose tissue and reduced in obesity // Endocrinology. 2015.
Vol. 156, N 1. P. 134-146. Na Y.K., Ban J.J., Lee M., Im W. et al. Wound healing potential of adipose tissue stem
cell extract // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2017. Vol. 485, N 1. P. 30-34. Omi T., Sato S., Kawana S. Ultrastructural assessment of cellulite morphology: clues to
a therapeutic strategy? // Laser Ther. 2013. Vol. 22, N 2. P. 131-136. Palmer A.K., Kirkland J.L. Aging and adipose tissue: potential interventions for diabetes
and regenerative medicine // Exp. Gerontol. 2016. Vol. 86. P. 97-105. Pellegrinelli V., Carobbio S., Vidal-Puig A. Adipose tissue plasticity: how fat depots
respond differently to pathophysiological cues // Diabetologia. 2016. Vol. 59, N 6.
P. 1075-1088.
Perfilyev A., Dahlman I., Gillberg L., Rosqvist F. et al. Impact of polyunsaturated and saturated fat overfeeding on the DNA-methylation pattern in human adipose tissue: a randomized controlled trial // Am. J. Clin. Nutr. 2017. Vol. 105, N 4.
P. 991-1000.
Petti C., Stoneburner J., McLaughlin L. Laser cellulite treatment and laser-assisted lipoplasty of the thighs and buttocks: combined modalities for single stage contouring of the lower body // Lasers Surg. Med. 2016. Vol. 48, N 1. P. 14-22.
Медицинские книги
@medknigi
Pianez L.R., Custódio F.S., Guidi R.M., de Freitas J.N. et al. Effectiveness of carboxytherapy in the treatment of cellulite in healthy women: a pilot study // Clin. Cosmet. Investig. Dermatol. 2016. Vol. 9. P. 183-190.
Rehan V.K., Sugano S., Wang Y., Santos J. et al. Evidence for the presence of lipofibroblasts in human lung // Exp. Lung Res. 2006. Vol. 32, N 8. P. 379-393.
Rivera-Gonzalez G.C., Shook B.A., Andrae J., Holtrup B. et al. Skin adipocyte stem cell self-renewal is regulated by a PDGFA/AKT-signaling axis // Cell Stem Cell. 2016. Vol. 19, N 6. P. 738-751.
Rossi A.M., Katz B.E. A modern approach to the treatment of cellulite // Dermatol. Clin. 2014. Vol. 32, N 1. P. 51-59.
Rutkowski J.M., Davis K.E., Scherer P.E. Mechanisms of obesity and related pathologies // FEBS J. 2009. Vol. 276. P. 5738-5746.
Rydén M. On the origin of human adipocytes and the contribution of bone marrowderived cells // Adipocyte. 2016. Vol. 5, N 3. P. 312-317.
Sadick N.S., Dorizas A.S., Krueger N., Nassar A.H. The facial adipose system: its role in facial aging and approaches to volume restoration // Dermatol. Surg. 2015. Vol. 41, suppl. 1. P. S333-S339.
Sanchez-Gurmaches J., Hung C.M., Guertin D.A. Emerging complexities in adipocyte origins and identity // Trends Cell Biol. 2016. Vol. 26, N 5. P. 313-326.
Santosa S., Jensen M.D. The sexual dimorphism of lipid kinetics in humans // Front. Endocrinol. (Lausanne). 2015. Vol. 6. P. 103.
Sasaki G.H. Single treatment of grades II and III cellulite using a minimally invasive 1,440-nm pulsed Nd:YAG laser and side-firing fiber: an institutional review boardapproved study with a 24-month follow-up period // Aesthetic Plast. Surg. 2013.
Vol. 37, N 6. P. 1073-1089.
Scallan J.P., Zawieja S.D., Castorena-Gonzalez J.A., Davis M.J. Lymphatic pumping: mechanics, mechanisms and malfunction // J. Physiol. 2016. Vol. 594, N 20.
P. 5749-5768.
Sherratt M.J. Body mass index and dermal remodeling // Exp. Dermatol. 2015. Vol. 24.
P. 922-923.
Shook B., Rivera Gonzalez G., Ebmeier S., Grisotti G. et al. The role of adipocytes in tissue regeneration and stem cell niches // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2016. Vol. 32.
P. 609-631.
Smith U., Kahn B.B. Adipose tissue regulates insulin sensitivity: role of adipogenesis, de novo lipogenesis and novel lipids // J. Intern. Med. 2016. Vol. 280, N 5.
P. 465-475.
Медицинские книги
@medknigi
Stout M.B., Justice J.N., Nicklas B.J., Kirkland J.L. Physiological aging: links among adipose tissue dysfunction, diabetes, and frailty // Physiology (Bethesda). 2017.
Vol. 32, N 1. P. 9-19.
Sun K., Park J., Gupta O.T., Holland W.L. et al. Endotrophin triggers adipose tissue fibrosis and metabolic dysfunction // Nat. Commun. 2014. Vol. 5. Article
ID 3485.
Sun K., Tordjman J., Clément K., Scherer P.E. Fibrosis and adipose tissue dysfunction //
Cell Metab. 2013. Vol. 18, N 4. P. 470-477. Tausch I., Kruglikov I. The benefit of dual-frequency ultrasound in patients treated by
injection lipolysis // J. Clin. Aesthet. Dermatol. 2015. Vol. 8, N 8. P. 42-46.
Tchkonia T., Morbeck D.E., von Zglinicki T., van Deursen J. et al. Fat tissue, aging,
and cellular senescence // Aging Cell. 2010. Vol. 9. P. 667-684. Tchoukalova Y.D., Votruba S.B., Tchkonia T., Giorgadze N. et al. Regional differences
in cellular mechanisms of adipose tissue gain with overfeeding // Proc. Natl Acad.
Sci. USA. 2010. Vol. 107, N 42. P. 18 226-18 231. Vegiopoulos A., Rohm M., Herzig S. Adipose tissue: between the extremes // EMBO
J. 2017. Vol. 36, N 14. P. 1999-2017. Wei W.H., Dong X.M., Liu C.G. In vitro investigation of self-assembled nanoparticles
based on hyaluronic acid-deoxycholic acid conjugates for controlled release doxorubicin: effect of degree of substitution of deoxycholic acid // Int. J. Mol. Sci.
2015. Vol. 16, N 4. P. 7195-7209. Wollina U. Midfacial rejuvenation by hyaluronic acid fillers and subcutaneous adipose
tissue - a new concept // Med. Hypotheses. 2015. Vol. 84, N 4. P. 327-330. Wollina U. Facial rejuvenation starts in the midface: three-dimensional volumetric
facial rejuvenation has beneficial effects on nontreated neighboring esthetic units //
J. Cosmet. Dermatol. 2016. Vol. 15, N 1. P. 82-88.
Медицинские книги
@medknigi
Заключение
Высочайший уровень экспериментальных работ в области клеточной биохимии, молекулярной биологии, генетики и эпигенетики, иммуноги-стохимии за последние 20-30 лет кардинально изменил облик современной медицины, которая во многих её разделах обрела статус естественной науки. Уже никого не удивляет появление молекулярной медицины, медицинской физики, физикохимической медицины и т.п. Эти названия отражают влияние физических и химических наук на современную медицину.
В настоящей монографии сделана попытка с различных позиций рассмотреть на примере семейства коллагеновых белков всё многообразие процессов, протекающих в коже - самом большом органе человеческого организма.
Особенность соединительной ткани заключается в малом количестве клеточных структур и большой массе межклеточного вещества, организованного в чётко упорядоченный биополимерный матрикс. Сравнительно недавно стало понятно, что такие физические характеристики, как растяжимость и прочность коллагеновых фибрилл межклеточного матрикса дермы, влияют на регулировку клеточных функций. В качестве доказательства биомеханического контроля функций фибробластов можно привести феномен ускорения заживления повреждений кожи на определённой стадии раневого процесса внешними механическими давлениями повязок, бинтов, накладок. Связано это с одной важнейшей особенностью, которая заключается в образовании фокальных (локальных) контактов клеток с коллагеновыми волокнами. Это приводит к увеличению площади цитоплазматической мембраны и росту активности прямого (в клетку) и обратного (из клетки) транспорта ключевых метаболитов. Эффективность протекания этих процессов непосредственно влияет на состояние кожных покровов. Некоторые матриксные структуры обладают пьезоэлектрическими свойствами и могут трансформировать электрические сигналы в механические и наоборот. Таким образом организуется очень важная биомеханическая регуляторная система взаимодействий «матрикс-клетка» и «клетка-матрикс». Сигналы из межклеточного вещества контролируют дифференцировку, полярность, миграцию, выживаемость клеток, которые выражаются в активации/замедлении синтезов фибробластами молекул для обновления матрикса. Динамический баланс между синтезом и распадом матриксных структур дермы играет решающую роль в сохранении здоровой кожи.
Фрагментация биополимеров межклеточного вещества физическими и химическими факторами приводит к формированию жидкокристаллических структур. Обладая способностью к самоорганизации, спонтанному образованию упорядоченных состояний и высокой чувствительностью реагирования на сверхнизкие интенсивности физических сигналов и сверхмалые дозы химических реагентов, жидкокристаллические структуры могут влиять на биологические свойства ткани. Эта тема отдельных исследований, которые
Медицинские книги
@medknigi
могут дать новую информацию об эффектах, происходящих при физических воздействиях на кожу в аппаратной косметологии и при использовании различных инъекционных методик в антивозрастной терапии.
Вполне ожидаемо появление в ближайшей перспективе в арсенале врачейдерматокосметологов новых методов антивозрастной терапии, основанных на физических воздействиях на кожу и ПЖК. Использование лазерного излучения, радиочастотных токов, ультразвука, хотя и отличается аппаратурным оформлением, энергией и интенсивностью действия, глубиной проникновения в различные слои кожи, в сущности эксплуатирует одну особенность организма - отвечать синтезом коллагеновых белков на травматические (локальный нагрев) процессы. Такие процедуры сопровождаются частичной денатурацией белков и поэтому показаны возрастным пациентам со стареющей кожей, содержащей повышенное количество дефектных коллагеновых структур. К сожалению, очень часто коммерческий интерес значительно опережает уровень научных исследований эффективности и безопасности применения подобных деструктивных методов физиотерапии. Существует тонкая грань, с переходом которой нарушается координация процессов синтеза и распада коллагеновых белков, что чревато развитием патологических состояний.
Методы инъекционной косметологии (особенно это относится к биоревитализации комплексными препаратами ГК) в большинстве своём менее травматичны и основываются на молекулярных механизмах воздействия биоактивных соединений на биохимические процессы, протекающие в коже. Многие аминокислоты, витамины, короткие пептиды, микроэлементы имеют несомненный терапевтический потенциал в борьбе с признаками старения кожных покровов. Появившиеся в последнее время экспериментальные работы, основанные на методах иммуногистохимического анализа, по влиянию «малых» биоактивных молекул на экспрессию отдельных генов, кодирующих синтез некоторых белков (коллаген I, III типов, ММР и др.), позволяют надеяться на создание препаратов нового поколения для различных возрастных групп пациентов. Безусловно, это сложнейший поисковый процесс - выделить из огромного числа биоактивных молекул соединения, которые наиболее подходят для конкретного случая. Подобные работы ведутся в некоторых научных центрах. Например, в ведущем американском Институте Брода в Кембридже (штат Массачусетс) собирают данные о том, как меняется активность генов в различных культурах клеток человека, обработанных «малыми» молекулами, как синтезированными, так и природного происхождения. Создание чего-то подобного для целей косметической дерматологии, несомненно, представляет глобальный научный и практический интерес.
Медицинские книги
@medknigi