4 курс / Дерматовенерология / Коллаген_в_косметической_дерматологии_Хабаров_В_Н

Gonzalez-Rodriguez A.J., Lorente-Gual R. Current indications and new applications of intense pulsed light // Actas Dermosifiliogr. 2015. Vol. 106, N 5. P. 350-364.

Gorisse L., Pietrement C., Vuiblet V., Schmelzer C.E. et al. Protein carbamylation is a hallmark of aging // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2016. Vol. 113, N 5. P. 1191-1196.

Greco T.M., Antunes M.B., Yellin S.A. Injectable fillers for volume replacement in the aging face // Facial Plast. Surg. 2012. Vol. 28, N 1. P. 8-20.

Gurtner G.C., Werner S., Barrandon Y., Longaker M.T. Wound repair and regeneration // Nature. 2008. Vol. 453, N 7193. P. 314-321.

Gutowski K.A. Hyaluronic acid fillers: science and clinical uses // Clin. Plast. Surg. 2016. Vol. 43, N 3. P. 489-496.

Hantash B.M., Ubeid A.A., Chang H., Kafi R. et al. Bipolar fractional radiofrequency treatment induces neoelastogenesis and neocollagenesis // Lasers Surg. Med. 2009. Vol. 41. P. 1-9.

Hersant B., SidAhmed-Mezi M., Chossat A., Meningaud J.P. Multifractional microablative laser combined with spatially modulated ablative (SMA) technology for facial skin rejuvenation // Lasers Surg. Med. 2017. Vol. 49, N 1. P. 78-83.

Hinz B. Myofibroblasts // Exp. Eye Res. 2016. Vol. 142. P. 56-70.

Hiraoka C., Toki F., Shiraishi K., Sayama K. et al. Two clonal types of human skin fibroblasts with different potentials for proliferation and tissue remodeling ability // J. Dermatol. Sci. 2016. Vol. 82, N 2. P. 84-94.

Ho S., Marçal H., Foster L.J. Towards scarless wound healing: a comparison of protein expression between human, adult and foetal fibroblasts // Biomed. Res. Int. 2014. Article ID 676493.

Holly A.C., Melzer D., Pilling L.C., Fellows A.C. et al. Changes in splicing factor expression are associated with advancing age in man // Mech. Ageing Dev. 2013. Vol. 134. P. 356-366.

Hsu W.L., Lu J.H., Noda M., Wu C.Y. et al. Derinat protects skin against ultraviolet- B (UVB)-induced cellular damage // Molecules. 2015. Vol. 20, N 11. P. 20 297-20 311.

Hu W., Ma Z., Jiang S., Fan C. et al. Melatonin: the dawning of a treatment for fibrosis? // J. Pineal Res. 2016. Vol. 60, N 2. P. 121-131.

Husain Z., Alster T.S. The role of lasers and intense pulsed light technology in dermatology // Clin. Cosmet. Investig. Dermatol. 2016. Vol. 9. P. 29-40.

Ivanov V., Ivanova S., Kalinovsky T., Niedzwiecki A. et al. Inhibition of collagen synthesis by select calcium and sodium channel blockers can be mitigated by ascorbic acid and ascorbyl palmitate // Am. J. Cardiovasc. Dis. 2016. Vol. 6, N 2. P. 26-35.

Key D.J. Сomprehensive thermoregulation for the purpose of skin tightening using a novel radiofrequency treatment device: A preliminary report // J. Drugs Dermatol. 2014. Vol. 13. P. 185-189.

Медицинские книги

@medknigi

Khavinson V.Kh., Linkova N.S., Kukanova E.O., Orlova O.A. Molecular mechanisms of functional activity decreasing of the skin cells with its aging // Usp. Fiziol. Nauk. 2016. Vol. 47, N 2. P. 62-76.

Khavkin J., Ellis D.A. Aging skin: histology, physiology, and pathology // Facial Plast. Surg. Clin. North Am. 2011. Vol. 19, N 2. P. 229-234.

Kim J.A., Van Abel D. Neocollagenesis in human tissue injected with a polycaprolac- tone-based dermal filler // J. Cosmet. Laser Ther. 2015. Vol. 17, N 2. P. 99-101.

Kim K.O., Lee Y., Hwang J.W., Kim H. et al. Wound healing properties of a 3-D scaffold comprising soluble silkworm gland hydrolysate and human collagen // Colloids Surf. B. 2014. Vol. 116. P. 318-326.

Kim Z.H., Lee Y., Kim S.M., Kim H. et al. A composite dermal filler comprising cross-linked hyaluronic acid and human collagen for tissue reconstruction // J. Microbiol. Biotechnol. 2015. Vol. 25, N 3. P. 399-406.

Klein A., Elson M. The history of substances for soft tissue augmentation // Derm. Surg. 2000. Vol. 26. P. 1096.

Kligman A.M., Grove G.L., Hirose R., Leyden J.J. Topical tretinoin for photoaged skin // J. Am. Acad. Dermatol. 1986. Vol. 15, N 4. Pt 2. P. 836-859. Kruglikov I.L. Neocollagenesis in non-invasive aesthetic treatments // J. Cosmet. Dermatol. Sci.

Appl. 2013. Vol. 3. P. 1-5.

La Gatta A., De Rosa M., Frezza M.A., Catalano C. et al. Biophysical and biological characterization of a new line of hyaluronan-based dermal fillers: a scientific rationale to specific clinical indications // Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl. 2016. Vol. 68. P. 565-572.

Landau M., Fagien S. Science of hyaluronic acid beyond filling: fibroblasts and their response to the extracellular matrix // Plast. Reconstr. Surg. 2015. Vol. 136, N 5. Suppl. P. 188S-195S.

Leask A. CCN2 in skin fibrosis // Methods Mol. Biol. 2017. Vol. 1489. P. 417-421. Lee J.C., Lorenc Z.P. Synthetic fillers for facial rejuvenation // Clin. Plast. Surg. 2016. Vol. 43, N 3. P. 497-503.

Lee J.H., Choi Y.S., Kim S.M., Kim Y.J. et al. Efficacy and safety of porcine collagen filler for nasolabial fold correction in Asians: a prospective multicenter, 12 months follow-up study // J. Korean Med. Sci. 2014. Vol. 29, suppl. 3. P. S217-S221.

Lee S.M., Stewart C.L., Miller C.J., Chu E.Y. The histopathologic features of

Integra® Dermal Regeneration Template // J. Cutan. Pathol. 2015. Vol. 42, N 5. P. 368-369.

Li T., Yan X., Jiang M., Xiang L. The comparison of microRNA profile of the dermis between the young and elderly // J. Dermatol. Sci. 2016. Vol. 82, N 2. P. 75-83.

Liang J., Pei X., Zhang Z., Wang N. et al. The protective effects of long-term oral administration of marine collagen hydrolysate from chum salmon on collagen matrix homeostasis in the chronological aged skin of Sprague-Dawley male rats // J. Food Sci. 2010. Vol. 75. P. H230-H238.

Медицинские книги

@medknigi

Lighthouse J.K., Small E.M. Transcriptional control of cardiac fibroblast plasticity // J. Mol. Cell. Cardiol. 2016. Vol. 91. P. 52-60.

Maquart F.X., Pasco S., Ramont L., Hornebeck W. et al. An introduction to matrikines: extracellular matrix-derived peptides which regulate cell activity. Implication in tumor invasion // Crit. Rev. Oncol. Hematol. 2004. Vol. 49, N 3. P. 199-202.

Martin M.T., Vulin A., Hendry J.H. Human epidermal stem cells: Role in adverse skin reactions and carcinogenesis from radiation // Mutat. Res. 2016. Vol. 770, pt B. P. 349-368.

Matarasso S.L. Injectable collagens: lost but not forgotten - a review of products, indications, and injection techniques // Plast. Reconstr. Surg. 2007. Vol. 120, N 6. Suppl. P. 17S-26S.

Mathangi Ramakrishnan K., Babu M., Mathivanan M. et al. Advantages of collagen based biological dressings in the management of superficial and superficial partial thickness burns in children // Ann. Burns Fire Disasters. 2013. Vol. 26, N 2. P. 98104.

Meaike J.D., Agrawal N., Chang D., Lee E.I. et al. Noninvasive facial rejuvenation. Part 3: Physician-directed-lasers, chemical peels, and other noninvasive modalities // Semin. Plast. Surg. 2016. Vol. 30, N 3. P. 143-150.

Medved F., Wurm A., Held M. Facial microcirculatory and biomechanical skin properties after single high energy (Er):YAG laser application // Lasers Surg. Med. 2017 Aug 11.

Mehta R.C., Fitzpatrick R.E. Endogenous growth factors as cosmeceuticals // Dermatol. Ther. 2007. Vol. 20, N 5. P. 350-359.

Minkis K., Alam M. Ultrasound skin tightening // Dermatol. Clin. 2014. Vol. 32, N 1. P. 71-77.

Mirastschijski U., Haaksma C.J., Tomasek J.J., Agren M.S. Matrix metalloproteinase inhibitor GM 6001 attenuates keratinocyte migration, contraction and myofibroblast formation in skin wounds // Exp. Cell Res. 2004. Vol. 299, N 2. P. 465-475.

Moon S.H., Lee Y.J., Rhie J.W., Suh D.S. et al. Comparative study of the effectiveness and safety of porcine and bovine atelocollagen in Asian nasolabial fold correction // J. Plast. Surg. Hand Surg. 2015. Vol. 49, N 3. P. 147-152.

Morry J., Ngamcherdtrakul W., Yantasee W. Oxidative stress in cancer and fibrosis: Opportunity for therapeutic intervention with antioxidant compounds, enzymes, and nanoparticles // Redox Biol. 2016. Vol. 11. P. 240-253.

Morton L.M., Phillips T.J. Wound healing and treating wounds: differential diagnosis and evaluation of chronic wounds // J. Am. Acad. Dermatol. 2016. Vol. 74, N 4. P. 589-605.

Nanchahal J., Hinz B. Strategies to overcome the hurdles to treat fibrosis, a major unmet clinical need // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2016. Vol. 113, N 27. P. 72917293.

Медицинские книги

@medknigi

Nanthakumar C.B., Hatley R.J., Lemma S., Gauldie J. et al. Dissecting fibrosis: therapeutic insights from the small-molecule toolbox // Nat. Rev. Drug Discov. 2015. Vol. 14, N 10. P. 693-720.

Natarajan V., Krithica N., Madhan B., Sehgal P.K. Preparation and properties of tannic acid cross-linked collagen scaffold and its application in wound healing // J. Biomed. Mater. Res. B Appl. Biomater. 2013. Vol. 101. P. 560-567.

Neary R., Watson C.J., Baugh J.A. Epigenetics and the overhealing wound: the role of DNA methylation in fibrosis // Fibrogenesis Tissue Repair. 2015. Vol. 8. P. 18.

Nestor M., Andriessen A., Berman B., Katz B.E. et al. Photobiomodulation with nonthermal lasers: Mechanisms of action and therapeutic uses in dermatology and aesthetic medicine // J. Cosmet. Laser Ther. 2017. Vol. 19, N 4. P. 190-198.

Nigdelioglu R., Hamanaka R.B., Meliton A.Y., O'Leary E. et al. TGF-в promotes de novo serine synthesis for collagen production // J. Biol. Chem. 2016. Vol. 291. P. 27 239-27 251. pii: jbc.M116.756247.

Nusgens B.V., Humbert P., Rougier A., Colige A.C. et al. Topically applied vitamin C enhances the mRNA level of collagens I and III, their processing enzymes and tissue inhibitor of matrix metalloproteinase 1 in the human dermis // J. Invest. Dermatol. 2001. Vol. 116. P. 853-859.

Omi T., Numano K. The role of the CO2 laser and fractional CO2 laser in dermatology // Laser Ther. 2014. Vol. 23, N 1. P. 49-60.

Petersen W., Rahmanian-Schwarz A., Werner J.O., Schiefer J. et al. The use of collagen-based matrices in the treatment of full-thickness wounds // Burns. 2016. Vol. 42, N 6. P. 1257-1264.

Phillip J.M., Aifuwa I., Walston J., Wirtz D. The mechanobiology of aging // Annu. Rev. Biomed. Eng. 2015. Vol. 17. P. 113-141.

Ping C., Xueliang D., Yongxuan L., Lin D. et al. A retrospective study on the clinical efficacy of the intense pulsed light source for photodamage and skin rejuvenation // J. Cosmet. Laser Ther. 2016. Vol. 18, N 4. P. 217-224.

Proksch E., Segger D., Degwert J., Schunck M. et al. Oral supplementation of specific collagen peptides has beneficial effects on human skin physiology: a double-blind, placebo-controlled study // Skin Pharmacol. Physiol. 2014. Vol. 27. P. 47-55.

Pugazhenthi K., Kapoor M., Clarkson A.N., Hall I. et al. Melatonin accelerates the process of wound repair in full-thickness incisional wounds // J. Pineal Res. 2008. Vol. 44, N 4. P. 387-396.

Purohit T., He T., Qin Z., Li T. et al. Smad3-dependent regulation of type I collagen in human dermal fibroblasts: Impact on human skin connective tissue aging // J. Dermatol. Sci. 2016. Vol. 83, N 1. P. 80-83.

Qian L.W., Fourcaudot A.B., Yamane K., You T. et al. Exacerbated and prolonged inflammation impairs wound healing and increases scarring // Wound Repair Regen. 2016. Vol. 24, N 1. P. 26-34.

Медицинские книги

@medknigi

Quan T., Wang F., Shao Y., Rittie L. Enhancing structural support of the dermal micro-environment activates fibroblasts, endothelial cells, and keratinocytes in aged human skin in vivo // J. Invest. Dermatol. 2013. Vol. 133. P. 658-667.

Ren X., Ge M., Qin X., Xu P. et al. S100a8/NF-xB signal pathway is involved in the 800-nm diode laser-induced skin collagen remodeling // Lasers Med. Sci. 2016. Vol. 31, N 4. P. 673-678.

Rodríguez S.A., Grochová D., McKenna T., Borate B. et al. Global genome splicing analysis reveals an increased number of alternatively spliced genes with aging // Aging Cell. 2016. Vol. 15, N 2. P. 267-278.

Romana-Souza B., Santos Lima-Cezar G., Monte-Alto-Costa A. Psychological stressinduced catecholamines accelerates cutaneous aging in mice // Mech. Ageing Dev. 2015. Vol. 152. P. 63-73.

Ruiz-Esparza J., Gomez J.B. The medical face lift: a noninvasive, nonsurgical approach to tissue tightening in facial skin using nonablative radiofrequency // Dermatol. Surg. 2003. Vol. 29. P. 325-332.

Schmid D., Belser E., Meister S. Use of Soy Isoflavones for Stimulation of Skin Collagen Synthesis. Switzerland : Mibelle Biochemistry, 2008.

Schulz J.N., Nüchel J., Niehoff A., Bloch W. et al. COMP-assisted collagen secretion - a novel intracellular function required for fibrosis // J. Cell Sci. 2016. Vol. 129, N 4. P. 706-716.

Schwartzfarb E., Kirsner R.S. Understanding scarring: scarless fetal wound healing as a model // J. Invest. Dermatol. 2012. Vol. 132, N 2. P. 260. Shibuya S., Ozawa Y., Watanabe K., Izuo N. et al. Palladium and platinum nanoparticles attenuate aging-like skin atrophy via antioxidant activity in mice // PLoS One.

2014. Vol. 9, N 10. Article ID e109288. Stellavato A., Corsuto L., D'Agostino A., La Gatta A. et al. Hyaluronan Hybrid Cooperative Complexes as a Novel Frontier for Cellular Bioprocesses Re-Activation //

PLoS One. 2016. Vol. 11, N 10. Article ID e0163510. Tracy L.E., Minasian R.A., Caterson E.J. Extracellular matrix and dermal fibroblast function in the healing wound // Adv. Wound Care (New Rochelle). 2016. Vol. 5, N 3. P. 119-136.

Tremaine A.M., Avram M.M. FDA MAUDE data on complications with lasers, light sources, and energy-based devices // Lasers Surg. Med. 2015. Vol. 47, N 2. P. 133140.

Turlier V., Delalleau A., Casas C., Rouquier A. et al. Association between collagen production and mechanical stretching in dermal extracellular matrix: in vivo effect of cross-linked hyaluronic acid filler. A randomised, placebo-controlled study // Dermatol. Sci. 2013. Vol. 69. P. 187-194.

Uitto J., Kouba D. Cytokine modulation of extracellular matrix gene expression: relevance to fibrotic skin diseases // J. Dermatol. Sci. 2000. Vol. 24, suppl. 1. P. S60S69.

Медицинские книги

@medknigi

Volkova N.V., Glazkova L.K., Khomchenko V.V., Sadick N.S. Novel method for facial rejuvenation using Er:YAG laser equipped with a spatially modulated ablation module: an open prospective uncontrolled cohort study // J. Cosmet. Laser Ther. 2017. Vol. 19, N 1. P. 25-29.

Wakade D.V., Nayak C.S., Bhatt K.D. A study comparing the efficacy of monopolar radiofrequency and glycolic acid peels in facial rejuvenation of aging skin using

histopathology and ultrabiomicroscopic sonography (UBM) - an evidence-based study // Acta Medica (Hradec Kralove). 2016. Vol. 59, N 1. P. 14-17. Walmsley G.G., Maan Z.N., Wong V.W., Duscher D. et al. Scarless wound healing: chasing the holy grail // Plast. Reconstr. Surg. 2015. Vol. 135, N 3. P. 907-917. Wang F., Garza L.A., Kang S., Varani J. et al. In vivo stimulation of de novo collagen production caused by crosslinked hyaluronic acid dermal filler injections in photodamaged human skin // Arch. Dermatol. 2007. Vol. 143. P. 155-163.

Wells A., Nuschke A., Yates C.C. Skin tissue repair: matrix microenvironmental influences // Matrix Biol. 2016. Vol. 49. P. 25-36.

Werschler W.P., Werschler P.S. Long-term efficacy of micro-focused ultrasound with visualization for lifting and tightening lax facial and neck skin using a customized vectoring treatment method // J. Clin. Aesthet. Dermatol. 2016. Vol. 9, N 2. P. 27-33. Wong V.W., Rustad K.C., Akaishi S., Sorkin M. et al. Focal adhesion kinase links mechanical force to skin fibrosis via inflammatory signaling // Nat. Med. 2012. Vol. 18. P. 148-152.

Wu D., Zhou B., Xu Y., Yin Z. et al. Impact of intense pulsed light irradiation on cultured primary fibroblasts and a vascular endothelial cell line // Exp. Ther. Med. 2012. Vol. 4. P. 669-674.

Wynn T.A., Ramalingam T.R. Mechanisms of fibrosis: therapeutic translation for fibrotic disease // Nat. Med. 2012. Vol. 18, N 7. P. 1028-1040.

Wynn T.A., Vannella K.M. Macrophages in tissue repair, regeneration, and fibrosis // Immunity. 2016. Vol. 44, N 3. P. 450-462

Yoon H.K., Chen K., Baylink D.J., Lau K.H. Differential effects of two protein kinase inhibitors, tryphostin and genistein, on human bone cell proliferation // Tissue Int. 1998. Vol. 63. P. 243-249.

Yoon Y.J., Friedman S.L., Lee Y.A. Antifibrotic therapies: where are we now? // Semin Liver Dis. 2016. Vol. 36, N 1. P. 87-98.

Zague V. A new view concerning the effects of collagen hydrolysate intake on skin properties // Arch. Dermatol. Res. 2008. Vol. 300. P. 479-483.

Zelickson B.D., Kist D., Bernstein E., Brown D.B. et al. Histological and ultrastructur-al evaluation of the effects of a radiofrequency-based nonablative dermal remodeling device: a pilot study // Arch. Dermatol. 2004. Vol. 140, N 2. P. 204-209.

Zeybel M., Luli S., Sabater L., Hardy T. et al. A Proof-of-concept for epigenetic therapy of tissue fibrosis: inhibition of liver fibrosis progression by 3-deazaneplanocin A // Mol. Ther. 2017. Vol. 25, N 1. P. 218-231.

Медицинские книги

@medknigi

Zhang Y., Strehin I., Bedelbaeva K., Gourevitch D. et al. Drug-induced regeneration in adult mice // Sci. Transl. Med. 2015. Vol. 7, N 290. P. 290ra92.

Zielins E.R., Brett E.A., Luan A., Hu M.S. et al. Emerging drugs for the treatment of wound healing // Expert Opin. Emerg. Drugs. 2015. Vol. 20, N 2. P. 235-246.

Медицинские книги

@medknigi

Глава 6. Коллаген в жировой соединительной ткани

Основными компонентами жировой ткани являются адипоциты, фиброзная ткань, кровеносные сосуды. Количество и объём адипоцитов определяют толщину подкожного слоя жировой ткани. В зависимости от своего типа жировое депо содержит в различной степени развитые внеклеточные структуры. Эти структуры включают ГК, а также межклеточную (интерцеллюлярную) и околоклеточную (перицеллюляр-ную) фиброзную ткань. Как правило, до последнего времени жировой клетчатке специалисты косметической дерматологии уделяли не столь пристальное внимание, как дермальному слою и эпидермису кожи. Хотя совершенно очевидно, что дистрофия жировой ткани и связанные с ней потери объёма - одна из основных причин ухудшения внешнего вида кожи. Для стареющего лица характерен ряд типичных возрастных изменений, связанных с уменьшением эластичности кожи и мышц и значительным ухудшением механофизических характеристик жировой ткани.

В настоящее время опубликован целый ряд научных исследований, результаты которых будут приведены далее, определяющих важнейшую роль коллагеновых белков в структуре ПЖК. Было замечено, что триглицериды, занимающие фактически большую часть объёма жировой ткани, играют лишь второстепенную роль в её механических свойствах, а определяющую играет перицеллюлярный и межклеточный фиброз, основными компонентами которого являются коллагены I, III, IV и VI типов. Перицеллюлярный фиброз ПЖК влияет не только на механические свойства самого жира, но и определяет общий внешний вид кожных покровов. Локальное изменение жировой ткани приводит к образованию морщин, а это означает, что старение кожи имеет не только хронологические или фотоиндуцированные причины, а может развиваться в результате трансформации ПЖК. Таким образом, с позиции эстетической медицины жировая ткань представляет собой очень перспективный объект применения различных антивозрастных процедур.

6.1. СТРУКТУРА ЖИРОВОЙ ТКАНИ

В организме здорового взрослого человека жировая (адипозная) ткань представлена двумя основными классами: кожно-подкожная (ПЖК, гиподерма) и нутряная (висцелярный жир) и может составлять до 40% общей массы (Palmer, Kirkland, 2016). В обоих классах она сформирована двумя фракциями клеток: адипоцитами (также называемыми липоци-тами) и так называемыми стромоваскулярными (SVF) клетками - про-гениторными (включая стволовые), лимфацитами, эндотелиальными, перицитами (окружающими капилляры) и относительно небольшим количеством фибробластов (Palmer, Kirkland, 2016). Общее количество жировых клеток остаётся примерно постоянным вплоть до начала старения человека, а их обновление происходит непрерывно со скоростью около 10% от общего количества в год (Guillermier et al., 2017). Различают три типа адипоцитов: белый, коричневый и промежуточный

Медицинские книги

@medknigi

(бежевый) (Giralt, Villarroya, 2013). Мы будем далее говорить только о белых адипоцитах кожи и ближайшего подкожного слоя.

При физиологической норме белые адипоциты находятся в покое и не делятся. Однако, если организму нужен запас дополнительной энергии, они способны увеличивать свой объём в четыре раза, после чего переходить в стадию деления. Это их свойство называют пластичностью жировой ткани (Pellegrinelli et al., 2016). Морфологически белые адипоциты представляют собой шарообразные клетки со средним диаметром 100 нм, у которых практически весь объём цитоплазмы заполнен так называемой жировой каплей, а ядро сплющено и расположено рядом с клеточной мембраной. Жировая капля состоит в основном из триглицеридов и эфиров холестерола, которые после расщепления входят в метаболический цикл с целью производства энергии.

Процесс формирования адипоцитов из клеток-предшественников (преадипоцитов) называется адипогенезом. К настоящему времени для преадипоцитов не выявлено какой-то единственной исходной клеточной линии (прогениторной линии) (Rydén, 2016). Твёрдо установлено, однако, что адипоциты могут образовываться из различных видов стволовых клеток, а также из фенотипически различных типов фибробластов (Sanchez-Gurmaches, Guertin, 2014). В жировой ткани преади-поциты составляют до 50% всех клеток (Tchkonia et al., 2010). Поскольку адипогенез и гомеостаз адипоцитов в дермальной жировой клетчатке (ДЖК) и в ближайшем подкожном слое различаются, эти два вида жировой ткани принято рассматривать в отдельности (Driskell et al., 2014). У волосатых млекопитающих (например, мышей) они разделены гистологически хорошо различимым мышечным разделительным слоем (panniculus carnosus), но у человека этот слой представлен лишь тонкой плёнкой, называемой поверхностной мускулярно-апоневротической системой

(рис. 6.1).

Медицинские книги

@medknigi