Добавил:
Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

Практическая+иммунодиагностика+2020

.pdf
Скачиваний:
38
Добавлен:
10.03.2021
Размер:
3.32 Mб
Скачать

при решении вопроса о необходимости наблюдения в противотуберкулезном диспансере позволит объективная оценка состояния ребенка, эпидемиологического анамнеза, а также проведение пробы с АТР.

Абсолютным критерием, свидетельствующим об инфицировании вирулентными МБТ, является положительная реакция на введение туберкулина (проба Манту с 2 ТЕ) у детей, не привитых вакциной БЦЖ (БЦЖ-М). Высока вероятность инфицированияМБТудетей,привитыхнеэффективно,когда ПВЗ-рубчик на введенную вакцину БЦЖ (БЦЖ-М) не сформировался или его размер составляет 1–2 мм. В практической работе наиболее сложно провести дифференциальную диагностику вирулентного инфицирования и поствакцинной аллергии у детей младшего возраста (до 3 лет жизни), так как в раннем возрасте наиболее часто на результат проведенной туберкулиновой пробы Манту с 2 ТЕ оказывают влияние различные неспецифические внешние и внутренние факторы.

Поствакцинная аллергия оценивается при динамическом наблюдении, характеризуется, как правило, меньшей интенсивностью и имеет тенденцию к постепенному угасанию в сравнении с инфекционной аллергией. В этих случаях проба с АТР отрицательная. Постинфекционная туберкулиновая аллергия при динамическом наблюдении может колебаться в интенсивности, но она более стабильна и обычно не имеет тенденции к угасанию. В таких ситуациях проба с АТР имеет положительный или сомнительный результат.

Для поствакцинной аллергии характерны сомнительные и нерезко выраженные положительные реакции на 2 ТЕ с размером инфильтрата 2–11 мм. Положительные туберкулиновые реакции с инфильтратом 12–16 мм, которые могут имитировать инфекционную аллергию, чаще отмечаются у повторно привитых против туберкулеза (БЦЖ или БЦЖ-М) детей и подростков при наличии выраженных ПВЗ-рубчи- ков (6–9 мм и более). В этом случае постановка пробы с АТР разрешит большую часть сомнений, если ее результат будет

71

отрицательным. Отрицательный результат с АТР при положительной пробе Манту с 2 ТЕ является ПВА.

Проведение дифференциальной диагностики поствакцинной и инфекционной аллергии – задача фтизиатрической службы. Вопрос о дифференциальной диагностике ПВА и ПИА возникает, как правило, на втором-третьем году жизни ребенка и сохраняется после ревакцинации в 7-летнем возрасте.

Сомнение в интерпретации результатов туберкулиновой чувствительности возникает при появлении положительной реакции у ребенка на втором году после наличия у него отрицательной реакции в 12-месячном возрасте. В другом случае необходимость в дифференциальной диагностике между ПВАиПИАнеобходимаприсохраняющейсяположительной реакции на 2 ТЕ у ребенка старше 5 лет на цифрах 10−12 мм. Во всех случаях ребенок нуждается в углубленном обследовании для правильной интерпретации результатов туберкулиновых проб.

Первая положительная реакция на туберкулин у детей

ввозрасте до 3 лет может быть проявлением ПВА, но в этом же возрасте выявление первой положительной реакции на туберкулин по пробе Манту с 2 ТЕ при наличии у него контакта с больным туберкулезом является поводом для направления в ПТД. При первом положительном результате пробы с 2 ТЕ степень выраженности туберкулиновой аллергии и эффективность вакцинации против туберкулеза не имеют существенного значения, причем с увеличением возраста эта значимость уменьшается. Избежать случаев как гиподиагностики, так и гипердиагностики (инфицирование МБТ, поствакцинной аллергии) поствакцинной туберкулиновой аллергии позволяют объективная оценка состояния ребенка, анализ имеющегося эпидемиологического анамнеза, постановка ДИАСКИНТЕСТА, а также динамическое наблюдение

в«0» группе диспансерного наблюдения.

72

Т а б л и ц а 2

Дифференциальная диагностика поствакцинной и инфекционной аллергии

Критерий

ПВА

ПИА

 

 

 

Жалобы

-

±*

 

 

 

Anamnesis morbi

Связь с БЦЖ

В течение последних

6–12 мес.

 

 

Размер ПВЗ**

Большой (≥5мм)

Маленький (<5мм)

 

 

 

Время, прошедшее

Недавно

Отдалено по времени

с момента вакцинации

 

 

Контакт с больным

Отсутствует

Установлен / неуста-

туберкулезом

новлен

 

Аnamnesis vitae

Группы риска

Группы риска имеются

отсутствуют

 

 

Status praesens

Соответствует возраст-

Отставание в ФР, НПР,

ным нормам

лимфаденопатия

 

Status localis:

 

 

 

 

 

Размер папулы

Зависит от ПВЗ

Не зависит от ПВЗ

 

 

 

Цвет папулы

Бледный

Яркий

 

 

 

Границы

Нечеткие («размытые»)

Четкие

 

 

 

Длительность

До 2 недель

Более 2 недель

сохранения следа

(до 4 нед.)

 

Примечания: * − жалобы на увеличение частоты простудных заболеваний, исчезновение интересов к обучению или хобби, снижение работоспособности, потливость в момент засыпания и т.д. в течение последних 3−12 мес.;

** − при одинаковом размере папулы на введение туберкулина и размере ПВЗ 10 мм больше вероятность, что выявленная повышенная чувствительность на туберкулин является следствием ПВА, а при размере ПВЗ менее 4 мм – ПИА.

73

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

При проведении дифференциальной диагностики поствакцинной и инфекционной аллергии помимо перечисленных в таблице признаков нужно помнить, что интенсивность чувствительности к туберкулину зависит не только и не столько от степени специфической сенсибилизации организма, сколько от состояния макроорганизма. В дифференцировании ПВА и ПИА помогают тесты, проводимые in vitro.

ТЕСТЫ, ПРОВОДИМЫЕ IN VITRO

Иммуноферментный анализ (ИФА) в диагностике туберкулезной инфекции играет вспомогательную роль. Этот метод позволяет определить наличие и уровень концентрации различных биологических молекул. Он относится к иммунологическим методам, позволяющим косвенно предположить о наличии в организме МБТ. Серологические реакции (реакция пассивной гемагглютинации, преципитации), определяющие антитела к антигенам МБТ, «ушли» в историю. Серологические методы имеют определенные ограничения из-за использования в тест-системах антигенов, имеющихся не только у МБТ [8]. В сравнении с другими методами наиболее перспективным считают твердофазный ИФА для определения ПТАТ, отражающий повышенную чувствительность и специфичность. Этот метод пригоден к автоматизации и стандартизированным исследованиям, что делает возможным проведение массовых анализов [7, 21]. Ряд авторов считают, что данный метод может служить дополнительным критерием диагностики туберкулеза [7, 15, 21, 43, 47]. В то же время имеются сообщения о наличии ПТАТ у здоровых и больных другими заболеваниями [3, 4].

За рубежом используют тест для определения антител к липоарабиноманану – белку, имеющемуся только у живых

74

МБТ [45]. Тест используют у ВИЧ-инфицированных пациентов из-за угнетения у них клеточного звена и преобладания гуморального иммунного ответа [9].

При проведении твердофазного ИФА определяемый антиген заранее вносится в лунку планшета (рис.13), изучаемая сыворотка закапывается в лунку. При наличии антител в сыворотке происходит реакция антиген-антитело, которая обнаруживается при добавлении в ячейки антитела против иммуноглобулинов (антител) человека, меченных ферментом (флюорохромом) (рис.13). Если в исследуемой сыворотке присутствуют определяемые антитела, то они на этом этапе выступят в роли антигенов, с которыми прореагируют меченые антитела. Добавление хромогенного вещества (красителя) позволит учесть реакцию по окрашиванию в ячейках (рис.13). Интенсивность окраски при этом пропорциональна количеству фермента, а следовательно, количеству антител. При измерении оптической плотности жидкости в ячейке сравнивают ее с контрольным образцом и подсчитывают концентрацию антител. То есть в сыворотке обнаруживают антитела определенного класса IgG или IgE к определенному антигену.

Рис. 13. Схема проведения ИФА

75

QuantiFERON-TB (квантифероновый) тест проводится

втрех пробирках. Первую пробирку используют для определения фонового уровня INF-γ, влияния гетерофильных антител или неспецифического INF-γ в образцах крови. Во вторую добавляют митоген, способный активировать Т-лим- фоциты, в третью – туберкулезный антиген. Ее используют как контрольную. Концентрацию INF-γ в первой пробирке вычитают из концентрации INF-γ в пробирке с туберкулезным антигеном (третья пробирка) и в пробирке с митогеном (вторая пробирка). Если во второй пробирке с митогеном низкий ответ на «контакт» (<0,5МЕ/мл), значит, отсутствует INF-γ, т.е. результат расценивается как отрицательный. Следует подчеркнуть, что это может быть при недостаточном количестве лимфоцитов (например, при глубоком иммунодефиците), снижении их активности при нарушении техники подготовки к пробе, или неспособности лимфоцитов пациента продуцировать INF-γ.

QuantiFERON-TB тест является непрямым методом выявленияМБТ(включаязаболевание),ипредназначендляиспользования в сочетании с оценкой риска наличия инфекции, кли- нико-рентгенологическимиилабораторнымиисследованиями.

Другой тест, подобный иммуноферментному анализу, называется T-SPOT.TB (Т-лимфоциты образуют точки

впланшете при наличии МБТ). Замечено, что результат не оценивает степень активности МБТ.

Результаты теста T – SPOT.ТВ должны оцениваться только в совокупности со всей доступной клинической информацией, включающей результаты анализа бактериологических методов, культивирования клеток, рентгеноскопию грудной клетки и клинические симптомы (лихорадка, недомогание, потеря веса, кашель и т.д.).

76

Антигенпрезентирующаяклетка(денд-

ритнаяклетка илимакрофаг)

Антигенспецифический Т-лимфоцит

(лимфоцит, сенсибилизированный к антигенам ESAT-6 и CFP-10)

Антигены: ESAT-6 и CFP-10

Антигенпрезентирующаяклетканесет

на себе антигены ESAT-6 и CFP-10

Антигенпрезентирующаяклеткапред-

ставляетантигены: ESAT-6 и CFP-10 Т-лимфоцитам, сенсибилизированным к этим антигенам, т.е.встречавшиесяс этими антигенами ранее

Врезультатеэтогоконтакта

выделяетсяINF-γ

внесение последовательно в пробирки реагентов и исследуемой сыворотки

Антигены взаимодействуют

сАПК

Кним добавляют сыворотку

пациента. При наличиив исследуемойсыворотке сенсибилизированных этими антигенами Т-лимфоцитов, происходит «контакт»

Уровень INF-γсчитывает

аппарат (концентрацию определяют поуровню

свечения)

77

Схема 1. Проведение теста QuantiFERON-TB

78

1. Первичные антитела

для наборов форматов Setsи Pairs: покрыть микропланшеты первичными антителамик соответствующемуцитокину. Длянаборов формата ELISPOTKit: перейтик этапу 3.

2. Блокирование

блокировать несвязанные сайтыс помощью протеина.

3. Добавить клетки

инкубировать клеткив лункахс антигеном, митогеном ит.п.

4.Отмыть

удалитьклетки.

5.Вторичные антитела

добавить биотинилированные вторичные антицитокиновые антитела.

79

6. Фермент-авидин

добавить стрептавидин-пероксидазу.

7. Инкубировать с субстратом

добавить субстрати контролировать формирование окрашенных точек.

8. Анализировать с помощью световогомикроскопа

или специализированного прибора Immunospot®

Series I Analyzer (CTL Analyzers LLC).

Вид сверху налунку (точка –spot (англ.).

Считают количествоточек:

положительныйрезультатприналичии8 точек. сомнительный: 5−7 точек отрицательный: менее 5 точекилиих отсутствие.

Рис.15. Проведение теста T-SPOT.TB

ФГБУ Уральский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии

Минздрава России

Биолог А.В. Ершова:

Зав. клинико-диагностической лаборатории – О.В. Фадина:

Внимание! Данный результат не является диагнозом. Требуется консультация врача фтизиатра и аллерголога-иммунолога.

Фото 2. Внешний вид бланка с положительным результатом обследования

ФГБУ Уральский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии

Минздрава России

Биолог А.В. Ершова:

Зав. клинико-диагностической лаборатории – О.В. Фадина:

Внимание! Данный результат не является диагнозом. Требуется консультация врача фтизиатра и аллерголога-иммунолога.

Фото 3. Внешний вид бланка с сомнительным результатом

80