- •1.Нативный мазок кала на простейшие.
- •2.Мазок кала окрашенный р-ром Люголя.
- •3.Метод формалин-эфирного обогащения.
- •4.Метод Фюллеборна
- •5.Метод Калантарян
- •6.Толстый мазок по Като
- •7.Метод закручивания по Шульману.
- •8.Обнаружение личинок по Берману.
- •9.Метод Горячева.
- •10.Обнаружение личинок гельминтов в фекалиях культивированием (Метод Харада и Мори).
- •11.Исследование крови, желчи, мокроты, мочи.).
- •12.Толстая капля крови. Приготовление и окраска.
- •13.Исследование фекалий на шистосомы.
- •14.Исследование мышц на трихинеллез.
- •15.Забор и исследование проб воды для исследования на наличие яиц гельминтов и цист простейших.
- •16.Забор и исследование проб почвы, пыли с объектов окружающей среды для исследования на наличие яиц гельминтов и цист простейших.
- •17.Забор и исследование проб пищевых продуктов для исследования на наличие яиц гельминтов и цист простейших.
- •18.Методика забора материала на энтеробиоз: соскоб перианально-ректальный.
- •19.Методика забора материала на энтеробиоз: отпечаток липкой лентой.
- •20.Мазок периферической крови на малярию: приготовление и окраска.
- •21.Серологическая диагностика токсоплазмоза.
- •22.Серологическая диагностика пневмоцистоза.
- •Планшет брать только за боковые поверхности!
- •23.Метод определения жизнеспособности яиц гельминтов
- •24.Сбор и доставка испражнений в лабораторию.
- •25.Макроскопический метод исследования на гельминты.
- •26. Дифференциальная диагностика члеников бычьего и свиного цепней.
- •27. Взятие и исследование соскоба кожи для обнаружения чесоточных клещей.
- •28. Взятие и исследование соскоба кожи для обнаружения клещей-железниц.
13.Исследование фекалий на шистосомы.
При обработке фекалий яйца шистосом обнаруживают в осадке после отстаивания или центрифугирования.
Метод осаждения. В коническом стакане вместимостью 200 мл смешивают 1 г фекалий с 1—2 мл растворителя (смесь 50 % водного раствора глицерина и изотонического раствора хлорида натрия в соотношении 1:1).
После размешивания доливают растворитель до объема посуды и дают отстояться в течение 20—30 мин. Надосадочную жидкость сливают, осадок исследуют под микроскопом. Для лучшей концентрации осадок вновь взбалтывают с растворителем в том же стакане, оставляют еще на 10 мин. Осадок забирают пастеровской пипеткой, помещают 2 капли на предметное стекло и исследуют.
Метод Ритчи. В сосуде вместимостью 150 мл смешивают 2 г фекалий с 10 мл изотонического раствора хлорида натрия и помещают в центрифужную пробирку вместимостью 15 мл. Пробирку закрывают пробкой и встряхивают 30 с. Затем пробку удаляют, а содержимое центрифугируют 2 мин при 2000 об/мин.
После этого надосадочную жидкость сливают, добавляют к осадку 10 мл 10% раствора формалина, тщательно смешивают и дают отстояться 5 мин. Добавляют 3—4 мл эфира, закрывают пробирку пробкой, встряхивают для получения однородной массы, удаляют пробку и центрифугируют повторно 2 мин.
В результате в пробирке образуется 4 слоя: 1) осадок на дне пробирки с яйцами шистосом; 2) слой формалина; 3) слой фекального детрита; 4) слой эфира. Аппликатором удаляют детрит, сливают надосадочную жидкость (смесь формалина с эфиром), осадок с придонного слоя забирают пастеровской пипеткой и переносят иа предметное стекло, исследуют под малым увеличением микроскопа.
14.Исследование мышц на трихинеллез.
Исследование мышц. При подозрении на трихинеллез исследуют мышцы больного или трупа, а также остатки мяса, предположительно послужившего причиной заражения человека.
С целью трихинеллоскопии мышцу разрезают на очень мелкие кусочки и помещают в компрессорий Он представляет собой два широких толстых стекла, скрепляемых по типу пресса двумя винтами. Волокна мышц в нем при сдавливании располагаются тонким слоем и хорошо просвечивают при исследовании под малым увеличением микроскопа (трихинеллоскопа, см. рис. 10.8, а).
Личинок трихинелл обнаруживают в виде спиралевидно свернутых червячков, находящихся в лимонообразных или округлых капсулах внутри мышечных волокон.
Более эффективен, хотя и более сложен, метод переваривания мышц. 10 г мелко измельченных мышц заливают 20—25-кратным количеством искусственного желудочного сока (1 л дистиллированной воды, 10 мл концентрированной хлороводородной кислоты и перед использованием—30 г пепсина). Смесь помещают в термостат при температуре 42—47 °С на 3,5—4 ч или на 12—16 ч при температуре 37 °С. Личинки, в большинстве жизнеспособные, в свободном состоянии выявляются среди массы остатков переваренных мышечных волокон (рис. 10.9).
Механическое перемешивание или использование магнитной мешалки улучшают ход переваривания и повышают эффект выявления личинок.
Для осаждения личинок после переваривания мышц применяют пробирки вместимостью 50 мл. Через 20—30 мин после отстаивания жидкость осторожно сливают, осадок помещают на предметное стекло в желобок из пластилина и исследуют при малом увеличении микроскопа или трихинеллоскопа. Определяют интенсивность инвазии: количество личинок до 200 на 1 г мышечной ткани — умеренно интенсивная инвазия; до 500 — интенсивная; свыше 500 — сверхинтенсивная.