АкушерствоКонопельцев, И. Г. История болезни

Проба с 2,5%-ным раствором мастоприма. Препарат готовят следующим образом: 2,5 г мастоприма вносят в мерную колбу или мерный цилиндр на 100,0 мл и доливают до метки дистиллированной водой, нагретой до 30-35○С. Раствор перед применением взбалтывают до равномерного распределения осадка. При температуре окружающей среды ниже 16○С в растворе выпадает обильный осадок.

Перед проведением анализа такой раствор необходимо подогреть в термостате или водяной бане до 30-35○С. Срок годности раствора при температуре 16-22○С в течение 3-х месяцев.

В луночки МКП-1 вносят 1,0 мл тщательно перемешанного секрета и добавляют к нему 1,0 мл 2,5%-ного раствора мастоприма. Секрет с реактивом перемешивают в течение 10…15 секунд. Смесь из пластинки неоднократно поднимают палочкой вверх на 5…7 см, после чего в течение не более 60 секунд проводят оценку результатов.

При отрицательной реакции жидкость однородная, желе не образуется. Такое молоко не имеет примеси анормального или примесь его составляет не более 3%.

Положительная реакция – образуется желеобразный сгусток, степень которого оценивается в крестах.

Один крест (+) – слабое желе, смесь секрета с реактивом тянется за палочкой в виде нити, на дне уже заметна небольшая выемка. Такой секрет содержит в среднем 4-6% анормального молока и до 500 тыс./мл СК.

Два креста (++) – более выраженный желеобразный сгусток при перемешивании которого хорошо видна выемка, но желе из луночки ещё не удаётся выбросить. Такой секрет содержит в среднем 8-12% анормального молока и от 500 тыс./мл до 1 млн./мл СК.

Три креста (+++) – хорошо сформированный желеобразный сгусток, который легко можно выбросить палочкой из луночки пластинки. Такой секрет содержит выше 15% анормального молока и свыше 1 млн./мл СК.

Вискозиметрический метод. Для вычисления количества СК используют прибор ВМЛК-1 (вискозиметр молока лабораторный капиллярный), Соматос и др. Метод основан на взаимодействии препарата мастоприм с соматическими клетками секрета, в

результате чего изменяется его консистенция. По продолжительности истечения смеси через капилляр прибора с помощью таблицы определяют количество СК в секрете.

Таблица 17 - Корреляция между временем истечения смеси и количеством соматических клеток в секрете вымени у коров

При проведении анализа в сосуд для приготовления смеси наливают 5 мл 3,5%-ного раствора мастоприма и 10 мл исследуемого секрета, тщательно перемешанного, профильтрованного через четыре слоя марли. После включения прибора смесь перемешивается в течение 30 секунд. С момента окончания перемешивания открывается капилляр, начинается истечение смеси молока с раствором мастоприма и одновременно включается таймер, который показывает продолжительность истечения жидкости в секундах. Зафиксировав время истечения смеси, сосуд следует 2-3 раза промыть дистиллированной водой и 4-5 раз продуть резиновой грушей. После очистки сосуда прибор считается подготовленным для дальнейших исследований.

Во время исследования температура секрета и воздуха в помещении, где проводится работа, должна быть 10…30○С. Кислотность секрета должна находиться в пределах 16…21○Т. При этом пробу секрета исследуют в течение 2-х часов с момента его получения.

Для приготовления раствора мастоприма 3,5%-ой концентрации вносят 3,5 г препарата в колбу и доливают 96,5 мл дистиллированной воды, подогретой до 30…36○С. Раствор перемешивают до равномерного распределения осадка и хранят в

течение суток при температуре 10…30○С.

От животных, у которых сборное молоко сомнительно и положительно прореагировало с одним из указанных выше реактивов, получают секрет из каждой четверти молочной железы на МКП и подвергают его исследованию с реактивами принятыми для определения косвенного количества СК в секрете из долей вымени.

Показания быстрых диагностических тестов не имеют самостоятельного значения для постановки окончательного диагноза на субклинический мастит и поэтому они в обязательном порядке должны подтверждаться пробой отстаивания, центрифугирования или бактериологическими исследованиями.

Проба отстаивания. Пробу отстаивания проводят путём отбора молока из четвертей вымени, которые реагировали сомнительно и положительно с одним из реактивов, содержащих ПАВ. Проведение пробы. В конце доения (не позднее 2 часов от момента окончания доения) в пробирку надаивают 10…15 мл секрета и ставят на 16…18 часов в холодильник при температуре 4…8○С или другое прохладное место, чтобы избежать прокисания секрета. Пробу просматривают при дневном свете и обращают внимание на наличие осадка, высоту слоя сливок, их внешний вид и цвет секрета. Пробу считают положительной при наличии осадка на дне пробирки высотой 0,1 см и более, а также при появлении осадка до 0,1 см с одновременым изменением цвета секрета и характера сливок (слизистые, хлопьевидные, тягучие).

Проба центрифугирования по А.И. Варганову и др. В

бактериологическую пробирку вносят 10…15 мл молока и центрифугируют при 1,5 тыс. об/мин в течение 3 минут. Оценка результатов исследования идентичена, как и в случае с пробой отстаивания. Основное преимущество предлагаемой пробы заключается в оперативном получении результатов исследования и в значительном сокращении затрат времени на её проведение.

ВВЕДЕНИЕ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ВЕЩЕСТВ В ЦИСТЕРНУ МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ У КОРОВ

Во время проведения процедуры фиксируют правую тазовую конечность хвостом животного. Для этого хвостом обкручивают коленный сустав той конечности со стороны, которой поражена доля

вымени и умеренно хвост тянут назад. Во время сдаивания секрета из поражённой маститом четверти в специальную посуду следует располагаться с противоположной стороны. После сдаивания верхушку соска протирают ватным тампоном, смоченным 70% спиртом или йодированным аналогом.

Шприц-тубу с готовым препаратом (нафпензал LC, орбенин LC и др.) или противомаститное средство, расфасованное во флаконы, подогревают до температуры тела животного и в зависимости от дозы набирают в стерильный 10-ти или 20-граммовый шприц. Затем сосок левой рукой отгибают в сторону, чтобы было видно отверстие соскового канала, через который вытекает струйка содержимого цистерны. После этого канюлю шприца сверлящими

поскольку они оказывают раздражающее воздействие на паренхиму, усугубляя течение патологического процесса.

Приложение 2

ВЕТЕРИНАРНАЯ АНДРОЛОГИЯ

Методика исследования препуция. Исследование препуция складывается из наружного осмотра, пальпации крайней плоти и свободной части полового члена, постоскопии, рентгеноскопии или рентгенографии.

Наружный осмотр и пальпацию проводят одновременно. При осмотре обращают внимание на возможные места повреждения кожи, состояние стенки и волосяного покрова, свисающего из препуция, на форму и величину препуциального отверстия, наличие новообразований. Пальпацией стенки препуция устанавливают границы отёка, наличие уплотнений в стенке, новообразований на слизистой оболочке и на головке полового члена. Чтобы более точно выявить опухоль на головке пениса, его фиксируют рукой через кожу впереди мошонки, а затем другой рукой пальпируют половой член от места фиксации до его конечной части. Если стенка препуция не отёчна, то хорошо пальпируются все утолщения на половом члене. В одних случаях при надавливании на опухоль полового члена выявляется очень сильная болезненность, а в других она отсутствует. В первом случае обнаруживается злокачественное образование, во втором - доброкачественная опухоль. Пальпируя препуций, обращают внимание на разного рода истечения из его полости. В случаях гнойного воспаления слизистой оболочки вытекает густой со специфическим запахом гной. При стриктуре препуция из его полости выдавливается или моча с примесью хлопьев или гной жидкой консистенции с запахом мочи.

Постоскопия. Для её выполнения необходимо подготовить: лобный рефлектор, уретроскоп, влагалищное зеркало для быков длиной 20…25 см и шириной браншей 2 см, для баранов – длиной 12 см, шириной 1,5 см, шары Ричардсона и резиновые трубки длиной 20…25 см с диаметром 5…8 см. Резиновые трубки тщательно моют тёплой водой с мылом, стерилизуют кипячением, хранят в 1%-ном растворе кристаллической карболовой кислоты или лизола. После использования их стерилизуют повторно.

Перед введением инструментов в полость препуция необходимо провести туалет кожи начальной его части. Волосы вокруг отверстия выстригают, кожу моют тёплой водой с мылом или раствором калия перманганата в разведении 1:1000. При наличии язв на поверхности кожи вокруг препуциального отверстия с них удаляют корочки

подсохшего экссудата, увлажняют поверхность изотоническим раствором натрия хлорида и с поверхности язвы делают несколько кляч-препаратов на предметных стёклах с целью изучения клеточного состава и микрофлоры. При необходимости берут материал для бактериологического исследования. Затем поверхность язвы смазывают спиртовым раствором йода или бриллиантовым зелёным и только после этого приступают к инструментальному исследованию полости препуция.

Для осмотра слизистой оболочки в начальную часть препуция вставляют влагалищное зеркало на глубину 4…5 см, раскрывают его

инаправляют луч света от рефлектора в глубину полости. Постепенно продвигая зеркало вглубь, осматривают всю слизистую оболочку. При необходимости, раскрыв зеркало пошире, берут содержимое для бактериологических исследований или проводят лечебные процедуры. При резком сужении препуциальной полости для осмотра используют уретроскоп. У баранов через уретроскоп можно увидеть расположение уретрального отростка полового члена.

Рентгенологическое исследование проводят с помощью соответствующих аппаратов. Данные исследования позволяют выявить различные изъязвления на слизистой оболочке, новообразования, наличие инородных тел и т.д.

Методика ректального исследования добавочных половых желёз быка и барана. Животное помещают в станок, фиксируют тазовые конечности, из прямой кишки удаляют фекальные массы. После этого правую руку вводят в прямую кишку до лонного сращения и находят мочевой пузырь, определяют степень его наполнения, толщину стенки и осторожно, смещая руку вправо, подводят её под пузырь с тем, чтобы выявить наличие мочевых камней. На дорсальной поверхности мочевого пузыря в мочеполовой складке лежат ампулы спермиопроводов, которые под острым углом сходятся в области шейки пузыря. Поверхность ампул гладкая, на ощупь они упругие и эластичные. Их длина составляет около 8…12 см, а толщина - 1…2 см. Вниз от ампул тянутся к внутреннему брюшному кольцу спермиопроводы толщиной 3…6 мм, они гладкие

иупругие. Позади ампул к телу подвздошной кости пузырьковидные железы длиной 10… 12 см, шириной 2…5 см, они неподвижные, бугристые, величина каждого бугорка 1,5…2 см. При надавливании они уменьшаются и становятся уплощёнными. В случае воспаления бугристость может увеличиваться до кулака взрослого человека.

Позади слияния ампул и пузырьковидных желёз на мочеполовом канале лежит поперечное возвышение шириной 2…3 см, высотой 1…1,5 см, плотной консистенции и гладкое – это тело предстательной железы, от которой назад идёт уретральная мышца и при поглаживании которой иногда наступает эрекция. При поражении простаты или наличии камней в уретре при выполнении этой процедуры животные испытывают боль и изгибают спину. На уровне седалищной дуги сбоку от мочеполового каннала под бульбоуретральной мышцей лежат куперовы железы, которые можно пропальпировать. Если большим пальцем надавить сбоку на мочевой канал, на уровне седалищной дуги, то выше верхнего края бульбоуретральной мышцы можно отыскать часть куперовых желёз, где происходит вскрытие абсцесса при гнойном куперите.

У баранов исследование через прямую кишку проводят указательным пальцем. При этом удаётся обнаружить только рассыпную часть простаты и куперовы железы.

Оценку качества свежеполученной спермы проводят по ГОСТ 20909 1-20909.6-75, где описаны методы: отбора проб, микробиологических, морфологических, биологических, физических и биохимических исследований.

Таблица 18 – Основные показатели (в среднем) спермы производителей

Средние значения рН спермы у клинически здоровых производителей: бык и баран - 6,9; хряк и жеребец – 7,4; кобель – 6,8.

Свежеполученная неразбавленная сперма производителей должна иметь коли-титр не ниже 0,1; коли-титр смывов с препуция – не ниже 0,01; в ней не должно содержаться патогенной микрофлоры. Использование спермы запрещается, если коли-титр её ниже 0,1, она содержит вирусы, хламидии, микоплазмы, патогенные грибы или контаминирована патогенными бактериями (плазмокоагулирующие

стафилококки, гемолитические стрептококки, сальмонеллы, синегнойная палочка, протей и др.).

Общее число микробных тел должно быть не выше 5000 в 1 см3 спермы (Инструкция по технологии работы организаций по искусственному осеменению и трансплантации эмбрионов сельскохозяйственных животных.- М., 2000).

Таблица 19 – Сперма быков неразбавленная свежеполученная (ГОСТ

23745-79)

ПРИМЕНЕНИЕ РАСТВОРОВ НОВОКАИНА В АНДРОЛОГИИ

Техника блокады полового члена у жеребца по И.И. Магда. Для блокады необходима инъекционная игла длиной до 10 см и толщиной 0,75 мм. Левой рукой нащупывают седалищную вырезку и легким усилием пальцев смещают ткани промежности влево от срединной линии. Правой рукой вкалывают иглу справа, отступая на ширину пальца от срединной линии против седалищной дуги, придавая направление сверху вниз, сзади наперёд и справа налево. Глубина вкола 2…3 см. Когда кончик иглы коснется кости, инъецируют 20 мл 3%-ного раствора новокаина. Через 5…7 минут у большинства лошадей из препуция начинает выпадать половой член.

Техника блокады полового члена у быка по И.И. Воронину. При этой анестезии производят двустороннюю блокаду. Для анестезии нужны 2 иглы: направляющая игла Боброва и инъекционная игла длиной 12-15 см. Инъекционная игла должна свободно входить в канал направляющей иглы. Точка вкола находится в седалищно-прямокишечной ямке соответствующей стороны на середине заднего контура крестцовоседалищной связки (на середине расстояния от поперечно-реберного отростка 1-го хвостового позвонка до седалищного бугра. В найденной точке делают прокол кожи иглой Боброва. После прокола кожи иглу продвигают вперед и вниз по направлению к вершине соответствующего локтевого бугра под углом 40° к поверхности крестца. Иглу вводят на всю глубину. Затем в просвет иглы Боброва вставляют инъекционную иглу и

погружают её на глубину, равную расстоянию от поперечно-реберного отростка 1-го хвостового позвонка до седалищного бугра. К инъекционной игле присоединяют шприц и легким давлением на поршень инъецируют 2030 мл 2%-ного раствора новокаина (взрослому быку). После этого удаляют инъекционную иглу, а затем извлекают и направляющую иглу так, чтобы её конец остался под кожей. Придав игле Боброва горизонтальное положение, продвигают её на 3-4 см в краниальном направлении в подсвязочное пространство. Затем через канал направляющей иглы вводят в пристеночное клеточное пространство 20 мл анестезирующего раствора. Во время введения раствора инъекционную иглу постепенно извлекают и слегка смещают во фронтальной плоскости. Этой инъекцией осуществляется блокада геморроидальных нервов и срамного нерва. После этого обе иглы извлекают. Таким же путём производят блокаду и с другой стороны.

В результате блокады расслабляется половой член, в результате чего сигмовидный его изгиб расправляется, а головка выходит за пределы препуциального мешка. Блокада продолжается 1,5-2,5 часа. В отдельных случаях животное после блокады может лечь. Однако это явление спустя 2…3 часа проходит, и бык встает самостоятельно. После операции половой член вправляют в полость препуциального мешка, а на свисающую часть крайней плоти надевают на 2 часа резиновое кольцо или завязывают отрезком бинта, что будет препятствовать самопроизвольному выпадению полового члена до полного восстановления чувствительности.

Техника блокады полового члена у барана по И.И. Воронину. Техника анестезии аналогична анестезии у быка. Для анестезии необходима игла длиной 10 см. Седалищно-прямокишечная ямка у барана открывается после приподнимания и отведения в сторону хвоста. Точка вкола иглы находится в указанной ямке на уровне середины длины хорошо прощупываемого заднего края крестцово-седалищной связки. После прокола кожи иглу продвигают в тазовую полость касательно внутренней поверхности крестцово-седалищной связки под углом 300 к горизонтальной плоскости. Иглу вводят на глубину, равную длине заднего края крестцовоседалищной связки, и инъецируют 10…15 мл 1,5…2%-ного раствора новокаина. Этой инъекцией блокируется срамной нерв у ветви тазового сплетения. Затем иглу извлекают, оставляя кончик под кожей, и придают ей горизонтальное положение. После введения на указанную глубину инъецируют 5 мл анестетика для блокады геморроидальных нервов и ветвей крестцового сплетения. Аналогично блокируются нервы с противоположной стороны. Анестезия наступает через 5-7 минут и длится до 2 часов.

Техника блокады полового члена у хряка по И.И. Воронину. Через 15-

20 минут после введения нейроплегика, когда животное успокоится, приступают к выполнению блокады. Для блокады необходима инъекционная игла длиной 10 см. Точка вкола находится в седалищно-

прямокишечной ямке на уровне середины заднего края крестцовоседалищной связки. После прокола кожи инъецируют 2-5 мл анестезирующего раствора для обеспечения дальнейшего безболезненного продвижения иглы. Иглу продвигают в тазовую полость краниовентрально касательно внутренней поверхности крестцово-седалищной связки. Игла должна проходить свободно, не встречая на пути сопротивления плотных тканей. Глубину вкола определяют моментом соприкосновения конца иглы с внутренним краем малой седалищной вырезки. Достигнув указанной глубины, иглу слегка оттягивают назад и под легким давлением вливают 20 мл 2%-ного раствора новокаина. Во время инъекции иглу смещают в сагиттальной плоскости для создания более широкой зоны обезболивания. Этим приемом блокируются срамной нерв и ветви крестцового сплетения. Затем иглу извлекают настолько, чтобы её конец остался под кожей, придают ей горизонтальное положение и продвигают краниально на глубину, как и в первом положении. В эту точку инъецируют 10 мл анестетика. В процессе инъекции иглу смещают в горизонтальной плоскости, блокируя геморроидальные нервы и ветви крестцового сплетения. Блокировав нервы с одной стороны, аналогичным образом осуществляют блокаду нервов с противоположной стороны. Анестезия наступает через 10-15 минут и продолжается до 2-х часов. Полного самопроизвольного выхождения концевой части полового члена из препуциального мешка после выполнения блокады не наступает, он легко извлекается из препуциального мешка рукой.

Пудентальная анестезия у собак по И.А. Калашнику. Техника анестезии. В зависимости от нрава собаки анестезия выполняется как на стоячем животном, так и на зафиксированном в боковом положении. Операционное поле готовят по общепринятой методике. Хвост отводят в сторону. Пальпацией находят углубление между каудовентральным краем хвостового и внутреннего запирательного мускулов, оно находится на расстоянии 1-3 см сбоку от ануса. В указанной точке перпендикулярно к поверхности кожи вводят иглу и продвигают её на глубину 0,5-1 см в толщу рыхлой соединительной ткани. При соприкосновении иглы с нервами животное реагирует беспокойством. Присоединяют шприц и инъецируют 3…10 мл 1%-ного раствора новокаина, стремясь путем поворотов иглы распределить раствор на большем пространстве. Подобным образом анестезию выполняют на другой стороне. Через 10 минут обезболиваются ткани ануса, кожа промежности, каудомедиальная поверхность бёдер, наружные половые органы, каудальная часть кожи мошонки, за исключением верхнего края ануса, который иннервируется средним геморроидальным нервом. У самцов наблюдается выхождение полового члена из препуциального мешка, а у самок - расслабление вульвы. Продолжительность анестезии до 80 минут.