Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
55-Praktikum-CeLL-BiO-Karpenka-Lazariev.doc
Скачиваний:
10
Добавлен:
19.02.2016
Размер:
1.71 Mб
Скачать

Лабораторна робота № 4.3.

Вивчення постійних мікропрепаратів тканин нервової системи

Рисунок 9 Мозок

Мета роботи

Вивчення функціональної диференціації клітин

Рисунок Тимус , тонкий зріз, оптичне мікрофото

Завдання

Вивчення постійних мікропрепаратів тканин нервової системи та залоз.

Теоретичні відомості

Контрастування корпускулярних об'єктів

Корпускулярними об'єктами можна назвати частинки вірусів, фагів, виділені клітинні компоненти (рибосоми, мембрани, вакуолі і т.д.), макромолекули.

Одним з широко розповсюджених методів контрастування біологічних об'єктів є оттенение металами. В цьому випадку в спеціальних вакуумних установках проводиться термічне випаровування металу. При цьому атоми металу розлітаються від місця випаровування за прямими траєкторіях. Зустрічаючись з об'єктом, вони осідають на ньому у вигляді шару, його товщина буде більше в місцях, перпендикулярних напрямку польоту частинок металу. У ділянках, де об'єкт екранує пучок частинок, виникнуть «тіні». Таким чином, напилення частина об'єкта має більшу щільність, ніж напилення підкладка (фон), і тому об'єкт буде видно. Цей метод широко застосовується не тільки для контрастування вірусів, рибосом, а й для досить тонких молекул нуклеїнових кислот. Мінус цього методу в тому, що він приводить до збільшення розмірів об'єкта на товщину напиленого шару, який в кращому випадку досягає 10-15 А. Інший недолік його в тому, що він дає інформацію тільки про зовнішній вигляд і обсязі частинок. Для контрастування оттенением використовується платина, паладій, їх сплави, уран.

Обладнання, матеріали і методи.

Мікроскопи, предметні скельця, скельця з лункою, скляні палички, петлі, покривні скельця. піпетки градуйовані на 2мл, 5 мл, 10мл, камера Горяєва, пробірки, чашки Петрі, мірні колби на 100 – 200 мл

Мікропрепарати – тонкі зрізи тканин людини та тварин

Порядок виконання роботи і рекомендації

  • Отримати постійні препарати – тонкі зрізи тканин тварин та людини

  • При наявності фарбованих за різними методиками препаратів, підготувати до мікроскопії всю групу зрізів.

  • Налаштувати освітлення і зображення в мікроскопі.

  • Мікроскопувати зразки на різних ступенях збільшення.

  • При дослідженні внутрішньої структури клітин слід віддавати перевагу найбільшому ступеню збільшення, що забезпечує імерсійний об’єктив х90.

  • При роботі з групою зрізів візуалізувати одну й ту саму ділянку, використовуючи кілька препаратів що фарбовано за різними методиками.

  • Мікрозображення занести в протокол лабораторної роботи, додати масштабну лінійку.

  • Для перевірки масштабу зображень провести калібрування за сіткою камери Горяєва.

  • В кінці роботи ретельно видалити залишки імерсійної олії з об’єктиву мікроскопа і препаратів.

Контрольні запитання

  • Прокаріотична та еукаріотична клітина: які їх спільні риси, чим відрізняються?

  • Порівняти тваринну та рослинну клітини.

  • Субклітинні елементи.

  • Підготовка проб для мікроскопії в клітинній біології: основні підходи.

Лабораторна робота № 4.4.

Вивчення постійних мікропрепаратів крові, лімфоїдних тканин

Мета роботи

Вивчення функціональної диференціації клітин

Завдання

Вивчення постійних мікропрепаратів крові, лімфоїдних тканин

Теоретичні відомості

Ультрамікротомія

При вивченні об'єктів в електронному мікроскопі виникає ще одне ускладнення - це їх товщина. Справа в тому, що при проходженні пучка електронів через об'єкт частина електронів поглинається, що приводить до нагрівання об'єкта і до його деформації. Тому необхідно мати тонкі об'єкти (не вище 0,1 мкм). Інше обмеження полягає в тому, що навіть якщо ми будемо розглядати незмінних об'єкти великої товщини (близько 0,5-1 мкм), що в принципі можливо (наприклад, в мегавольтной електронному мікроскопі, див. нижче), то на кінцевому зображенні будуть нашаровуватися проекції структур, розташованих на різних рівнях по товщині об'єкта. Тим самим вивчати в трансмісійних мікроскопах внутрішню будову цілих клітин погано і незручно. Вихід із цього становища аналогічний тому, що було знайдено для світлової мікроскопії, - робити зрізи дуже малої товщини, ультратонкі зрізи (0,05-0,10 мкм). Процедура їх виготовлення в принципі подібна стій, що використовується в світловій мікроскопії. Клітини і тканини для цього спочатку фіксують. В якості фіксаторів використовуються буферні розчини глутарового альдегіду або чотириокису осмію. Найбільш часто застосовується подвійна фіксація: спочатку глутаровий альдегід, а потім осмій, який як важкий метал контрастує клітинні структури. Потім, після зневоднення, тканини просочуються епоксидними смолами або іншими пластиками в рідкою, мономерний формі. При полімеризації таких пластмас просочений ними об'єкт виявляється ув'язненим в тверді блоки, які вже можна різати на тонкі зрізи. Тут виникають дві проблеми: де взяти ідеальні ножі, вади яких не позначалися б при вивченні клітин на майже молекулярних рівнях, і як виготовити зрізи товщиною в соті частки мікрона. Перша задача була вирішена таким чином: виявилося, що ідеально гострою і без зазубрин ріжучої поверхнею володіють відколи скла. Але скляні ножі дуже недовговічні, їх використовують тільки один раз. Застосовують алмазні ножі: це спеціальним чином заточені дрібні алмази, вони служать протягом декількох років.

Рисунок Бронх, тонкий зріз, оптичне мікрофото

Обладнання, матеріали і методи.

Мікроскопи, предметні скельця, скельця з лункою, скляні палички, петлі, покривні скельця. піпетки градуйовані на 2мл, 5 мл, 10мл, камера Горяєва, пробірки, чашки Петрі, мірні колби на 100 – 200 мл

Мікропрепарати – тонкі зрізи тканин людини та тварин

Порядок виконання роботи і рекомендації

  • Отримати постійні препарати – тонкі зрізи тканин тварин та людини

  • При наявності фарбованих за різними методиками препаратів, підготувати до мікроскопії всю групу зрізів.

  • Налаштувати освітлення і зображення в мікроскопі.

  • Мікроскопувати зразки на різних ступенях збільшення.

  • При дослідженні внутрішньої структури клітин слід віддавати перевагу найбільшому ступеню збільшення, що забезпечує імерсійний об’єктив х90.

  • При роботі з групою зрізів візуалізувати одну й ту саму ділянку, використовуючи кілька препаратів що фарбовано за різними методиками.

  • Мікрозображення занести в протокол лабораторної роботи, додати масштабну лінійку.

  • Для перевірки масштабу зображень провести калібрування за сіткою камери Горяєва.

  • В кінці роботи ретельно видалити залишки імерсійної олії з об’єктиву мікроскопа і препаратів.

Контрольні запитання

  • порівняти мікротом, ультрамікротом.

  • Що таке імерсійна система?

  • Вкажіть товщину зрізів, що отримують на мікротомі та ультра мікротомі.

Рисунок 6. Ендоплазматичний ретикулум, електронна

мікрофотографія, збільшення х 65 000

Обладнання, матеріали, посуд, інвентар для вивчення біології клітини.

Газовий хроматограф.

Полярограф.

Мікроскопи (ЛОМО (Микмед-1 з об’єктивом 75х – 80х, імерсійними об’єктивами) – 10 шт.

Масштабна сітка для окуляра мікроскопа – 10 шт.

Окулярний мікрометр – 10 шт.

Для забарвлення живих мікробних клітин потрібні барвники – нейтральний червоний, нейтральний фіолетовий, митіленовий синій, фуксин, еозін, ерітрозін, зелений янус у концентраціях – 0,001 – 0,0001%.

Щоб дослідитириродну форму, величину, будову мікроорганізмів, їх окремих структур (позаклітинна слизь) використовують негативні препарати – рідку туш, 3% водний розчин конго червоного, 10% розчин нігрозину і інші барвники які не проникають в мікробні клітини.

Для забарвлення ядер використовують основні барвники – червоного кольору (фуксин основний, сафранін, тіонін), сині (Вікторія, мітіленовий синій), фіолетові (генциан фіолетовий, кристалічний фіолетовий), зелені – малахітовий зелений, метиленовий зелений), чорний (індулін).

Розчин судану 3.

Льодова оцтова кислота.

Хлороформ.

Формалін.

Карболова кислота (фенол).

Карболовий фуксин Циля.

Гліцерин.

Танін.

Бром тимоловій синій

Покривні скельця – 3 упаковки. Предметні скельця – 100 шт. Сірники – 10 упаковок.

Марля. Шматки тканини.

Соляна кислота.

Мікробіологічні петлі – 15 шт.

Спиртівки – 15 шт.

Спирт – 5 л.

Піпетки градуйовані на 2мл, 5 мл, 10мл – по 20 шт.

Піпетки на 50мл, 100мл – по 7 шт.

Камера Горяєва – 7шт.

Пробірки – 50 шт.

Чашки Петрі – 50 шт.

Мірні колби на 100 – 200 мл – 15 шт. Мікробні культури -

Йод – 3 г.

Кохери – 15 шт.

Колби 2л, 3л, 5л. – по 5 шт.

Скляні бутиля – 5л, 10л, 20л – по 5 шт. Олівець по склу – 2 шт.