- •Гистологическая техника, цитология и общая эмбриология. У чебно-методическое пособие по самостоятельной внеаудиторной и аудиторной работе студентов лечебного и педиатрического факультетов.
- •Содержание
- •Тема 18
- •Тема 27
- •Предисловие
- •Тема этапы приготовления гистологического препарата. Методы и техника микроскопии.
- •Методические рекомендации по внеаудиторной самостоятельной работе студентов необходимый исходный уровень знаний
- •Литература для самоподготовки
- •Задания
- •Cитуационные задачи
- •Контрольные воросы
- •Методические рекомендации по самостоятельной аудиторной работе студентов
- •Взятие материала
- •II. Фиксация – метод обработки живого объекта фиксирующими веществами с целью сохранения прижизненной структуры органа или ткани.
- •III. Промывка в воде – для водорастворимых фиксаторов и в спирте – для спирторастворимых фиксаторов.
- •VI. Резка
- •VII. Депарафинизация.
- •VIII. Окрашивание
- •X. Заключение в бальзам.
- •I. Устройство микроскопа.
- •II. Техника микрокопирования.
- •I.Цито- и гистохимические методы исследования
- •II. Электронная микроскопия
- •II a. Подготовка материала для электронно-микроскопического исследования
- •Самостоятельная контрольная работа № 1
- •Самостоятельная контрольная работа № 2
- •На рисунке представлен оптический микроскоп. Цифрами отмечены детали.
- •Самостоятельная контрольная работа № 3
- •Тема клетка и неклеточные структуры
- •Методические рекомендации по внеаудиторной самостоятельной работе студентов необходимый исходный уровень знаний
- •Литература для самоподготовки
- •Задания
- •Cитуационные задачи
- •Контрольные воросы
- •Методические рекомендации по самостоятельной аудиторной работе студентов
- •Самостоятельная контрольная работа № 1
- •Самостоятельная контрольная работа № 2
- •Самостоятельная контрольная работа № 3
- •Тема ядро клетки. Деление клетки.
- •Методические рекомендации по внеаудиторной самостоятельной работе студентов необходимый уровень знаний
- •Литература для самоподготовки
- •Задания
- •Cитуационные задачи
- •Контрольные вопросы
- •Методические рекомендации по самостоятельной аудиторной работе студентов
- •Самостоятельная контрольная работа №2.
- •Самостоятельная контрольная работа № 3
- •Тема. Общая и сравнительная эмбриология.
- •Методические рекомендации по внеаудиторной самостоятельной работе студентов
- •Литература для самоподготовки
- •Задания
- •Cитуационные задачи
- •Контрольные вопросы
- •Методические рекомендации по самостоятельной аудиторной работе студентов
- •Самостоятельная контрольная работа. Вариант № 1
- •Самостоятельная контрольная работа. Вариант № 2
- •Самостоятельная контрольная работа. Вариант № 3
VI. Резка
Резку осуществляют на приборе под названием микротом.
Основной элемент микротома – стальной нож.
Микротом может находиться внутри прибора, который поддерживает постоянную t ≈ - 18-200. Он носит название криостат. Этот прибор широко используется для экспресс–диагностики во время хирургических операций, для научных исследований, для гистохимических методов исследования, так как этапы фиксации и уплотнения осуществляются одновременно благодаря замораживанию при низких температурах и существенно экономят время исследования.
После резки парафиновый срез помещают в каплю воды на предметное стекло и слегка подогревают на термостолике, чтобы срез расправился. Далее оставляют стекло до полного высыхания воды.
VII. Депарафинизация.
Прежде чем окрашивать гистологический срез, необходимо освободиться от парафина и наводнить препарат, так как обычные гистологические красители водные. Препарат на предметном стекле погружают в следующие растворы:
ксилол I → ксилол II → 960 I → 960 II → 700 → Н2О
VIII. Окрашивание
Препарат окрашивают сначала ядерным красителем, затем цитоплазматическим.
Виды красителей:
А) ядерные (основные)
гематоксилин (окрашивает ядро в синий цвет)
железный гематоксилин
азур II (в фиолетовый цвет)
кармин (в красный цвет)
сафранин (в красный цвет)
метиловый синий (в синий цвет)
толуидиновый синий (в синий цвет)
тиониновый синий (в синий цвет)
Б) цитоплазматические (кислые)
эозин – окрашивает цитоплазму в розовый цвет
эритрозин
оранжевый «G»
кислый фуксин – в красный
пикриновая кислота – в желтый
конго красный- в красный
В) специальные
судан III – окраска липидов и жиров в оранжевый цвет
осмиевая кислота – окраска липидов и жиров в черный цвет
орсеин – окраска эластических волокон в коричневый цвет
азотнокислое серебро – импрегнация нервных элементов в темно-коричневый цвет
Структуры клетки, окрашиваемые кислыми красителями называются оксифильными (ацидофильными) – окрашивание в розовый цвет.
Структуры клетки, окрашиваемые основными красителями называются базофильными – окрашивание в синий цвет.
Структуры клетки, окрашиваемые как основными, так и кислыми красителями одновременно называются нейтрофильными – окрашивание в фиолетовый цвет.
IX. Просветление осуществляют в следующих растворах:
Н2О → 700 → 960 I→ 960 II→ ксилолI → ксилол I
X. Заключение в бальзам.
Используют канадский бальзам, так как его коэффициент преломления равен коэффициенту преломления стекла. После нанесения бальзама срез покрывают покровным стеклом. После высушивания гистологический препарат готов для проведения гистологического анализа.
Микроскоп
Рисунок 1. Приготовление гистологических препаратов для световой микроскопии.
ТЕХНИКА РАБОТЫ С МИКРОСКОПОМ
Основным прибором, который используют студенты на занятиях, является световой микроскоп. Он позволяет получить увеличенное и обратное изображение объекта.