4.5. Иммунитет и специфическая профилактика

У переболевших животных образуется прочный, практически пожизненный иммунитет. Животные-реконвалесценты или привитые живыми вакцинами во время беременности так­же сообщают иммунитет потомству продолжительностью до 11 мес. Такой иммунитет раз­вивается в результате не только передачи AT с молозивом и молоком, но и проникновения вакцинного вируса в развивающийся эмбрион. Установлено снижение иммунного ответа на вакцину против чумы КРС у животных, перенесших экспериментальный тейлериоз.

Применение живых вакцин. В настоящее время для профилактики чумы КРС исполь­зуют живые культуральные вакцины из аттенуированных шт.TCRV, ЛТ и К37/70. Шт. ЛТ получен во ВНИИВВиМ Н.И. Митиным, В.Н. Сюриным и др. путем адаптации японского лапинизированного шт.ЛЗ ВЧ КРС в культуре клеток почки теленка. Вирус прошел 1271 пассаж на кроликах и 60 пассажей в культуре клеток, в том числе 8 пассажей методом предельных разведений, для выделения генетически однородной и стабильной популяции. Шт.ЛТ безвреден для КРС и овец различных породных групп и возрастов. Сухая вакцина ЛТ обладает более высокой терморезистентностью по сравнению с вакциной из шт.TCRV. Она является генетически стабильной ввиду длительного пассирования вируса через организм кролика, что гарантирует полную безвредность препарата для КРС. В Индии с целью замены культуры клеток почки теленка при массовом производстве вакцины аттенуированный штамм вируса был адаптирован к культуре клеток почки ягненка. Эта вакцина стандартизирована, её изготовляют в 11 странах Африки, 14 странах Азии и 2 странах Ев­ропы. Культуральная вакцина из шт.Kobete-02 не снижала биологическую активность ниже рекомендуемого ВОЗ и МЭБ уровня в условиях 5°С в течение 2-х лет, при 25°С - 56 дн, при 37°С-7дн.

Живые вакцины против чумы КРС исключительно эффективны и высокоэкономичны. У привитых животных может наблюдаться невысокая лихорадка, появляющаяся спустя 4-11 дн после прививки и продолжающаяся 1-11 дн. После однократной прививки (100 ИД₁₀₀) иммунитет наступает через 72 ч и продолжается 7-8 лет. Для стран с жарким клима­том разработана и изготовляется более терморезистентная вакцина. Использовали шт.Плоурайт, адаптированный к культуре клеток Vero и лиофилизированный с различными стабилизаторами. Получена вакцина, сохраняющая активность согласно рекомендации ФАО при 37°С в течение 4-х нед. Вакцину против чумы КРС можно использовать для иммунизации овец и коз, которые могут иметь субклиническую инфекцию. Японская вакцина из шт.На-камура III (лапинизированного) проявляет в ряде случаев абортогенные свойства. По дан­ным японских исследователей шт.LA-AKO успешно используется в качестве вакцинного, он индуцирует AT против шт.Kabete О LA-AKO, а сыворотка на шт.LA-AKO более пред­почтительна для определения и идентификации ВЧ КРС.

Положительно зарекомендовала себя вторая отечественная живая вакцина из шт.К-37/70, с помощью которой в 1991-1992 г. удалось оборвать вспышку инфекции в ряде районов Тувы. С использованием культуры клеток СПЖВ разработана более экономичная технология вакцины против чумы КРС из шт.К 37/70.

Инактивированные вакцины. Несмотря на общепризнанную эффективность живых вакцин против чумы КРС, идея создания инактивированного препарата не канула в лету. Так, для иммунизации овец против чумы КРС предложена инактивированная ГОА-вакцина с сапонином. Все овцы, иммунизированные данной вакциной, как в цельном виде, так и в разведениях 1:3 и 1:9, противостояли контрольному заражению вирусом чумы КРС на 14-е сут после вакцинации.

Инактивированные вакцины, по-видимому, необходимо использовать для создания буферной зоны и на заключительном этапе искоренения инфекции после применения вирус-вакцины для ограничения возможного вирусоносительства. Инактивированная вакцина на основе аттенуированного шт.ЛТ ВЧ КРС, выращенного в перевиваемой клеточной линии почки сайгака, и применения в качестве инактиванта ионов меди, индуцирует достаточно напряженный иммунитет, вызывая образование ВНА, которые сохранялись в титре 1:19 в течение 12 мес. Испытания инактивированной вакцины против чумы КРС по срокам наступления иммунитета показали, что однократная вакцинация в дозе 3 мл защищает живот­ных от контрольного заражения на 3 и 5-е сут после иммунизации. У животных, иммунизи­рованных за 1 сут до заражения, отмечается 2-5-дневная задержка гибели от чумы КРС.

Генно-инженерные вакцины. При использовании достижений генной инженерии созданы новые типы вакцин: субьединичная, синтетическая и векторная или рекомбинантная. Наиболее перспективна рекомбинантная, состоящая из живого вируса (например оспы) или бактерий (E.coli, дрожжи), в которых интегрирован ген, кодирующий протективный АГ ВЧ.

Чаще для интеграции берут сайты тимидинкиназы или гемагтлютинина (Н). В Японии сконструированы 3 типа рекомбинантной вакцины. Вакцина, имеющая модифицированный ген Н с промотором МР7,5 К, наиболее иммуногенна. ВНА к вирусам оспы и чумы персистируют более года (23, 42). В США также получены рекомбинанты инфекционного вируса оспы, экспрессирующие гены ГА и растворимых поверхностных белков, включая белок слияния Fo ВЧ КРС. У привитых животных продуцировались ВНА, которые защищали животных при заражении вирусом в дозе в 1000 раз больше летальной. Вакцину применяют путем скарификации. Она термостабильна, безопасна.

Серологическая оценка поствакцинального иммунитета. В результате сравни­тельного изучения эффективности 3 реакций (РН, РНГА и РТГА) для выявления AT у жи­вотных, иммунизированных культуральной вакциной против чумы, было установлено, что наиболее выраженная корреляция титров AT наблюдалась между РН и РТГА, взятых через 2-3 нед после вакцинации. В ответ на прививку живой вирусвакциной из шт.ЛТ КС и ВН AT обнаруживаются на протяжении года. Максимальный титр их через 1 мес достигает 1:80 и 1:160-1:640 соответственно. Через год после прививки титр AT соответственно снижается до 1:10-1:20 и 1:40-1:80. В ряде случаев ВНА обнаруживаются через 18 мес в титре 1:60-1:320 к 200 ТЦД₅₀. Материнские AT сообщают иммунитет телятам на 6-7 мес, поэтому ак­тивную иммунизацию их можно проводить после этого срока. В тех случаях, когда титр ВНА и КСА равен 1:10 и выше, животные, как правило, устойчивы к экспериментальной инфекции ВЧ в дозе 10³ ЛД₅₀. Однако следует иметь в виду, что отсутствие КСА не свиде­тельствует об отсутствии специфического иммунитета, так как эти AT у вакцинированных и переболевших животных исчезают раньше, чем специфическая резистентность и ВНА. Нет также прямой корреляции между специфической резистентностью вакцинированных живот­ных и титром ВНА как в первые дни (3-5) после вакцинации, когда резистентность живот­ных обусловлена феноменом интерференции, так и в последующие, когда резистентность при отсутствии КСА и ВНА, видимо, обусловлена механизмами клеточного иммунитета.

37