- •Лабораторная работа №1
- •III. Демонстрация.
- •III. Демонстрация.
- •II. Работа, выполняемая студентами.
- •III. Демонстрация.
- •Лабораторная работа №4 Питание микроорганизмов, питательные среды Дыхание микроорганизмов
- •I. Вопросы для обсуждения.
- •II. Работа, выполняемая студентами.
- •III. Демонстрация.
- •III. Демонстрация.
- •II. Работа, выполняемая студентами.
- •III. Демонстрация.
- •III. Демонстрация.
- •VI семестр
- •Морфология бактерий
- •Биохимические особенности грамотрицательных палочек
- •Характер колоний и морфология клеток микроорганизмов, выросших на фильтрах, пропитанных средой Гетчинсона
- •Лабораторная работа №2
- •Лабораторная работа №3 Генетические рекомбинации у микроорганизмов
- •I. Вопросы для обсуждения.
- •II. Работа, выполняемая студентами.
- •Летальное действие мутагенов на
- •Изменчивость под действием мутагенов
- •Лабораторная работа № 5
- •Лабораторная работа № 6
- •II. Работа, выполняемая студентами.
- •III. Демонстрация.
- •Лабораторная работа № 8
- •III. Демонстрация.
- •1. Постановка реакции агглютинации.
- •III. Демонстрация.
II. Работа, выполняемая студентами.
1.Учет результатов определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом бумажных дисков.
2. Ситуационная задача Определение активности антибиотиков методом серийных разведений (выполняет бригада студентов).
Постановка эксперимента: серийные разведения антибиотиков готовят в пробирках с МПБ, для чего берут 7 стерильных пробирок. В первую вносят 1,8 мл МПБ, в остальные 6 пробирок – 1 мл МПБ. Затем в первую пробирку вносят 0,2 мл антибиотика (в определенной концентрации, выраженной в ЕД) и готовят серию последовательных разведений. В последнюю пробирку (контроль) антибиотик не добавляют. Каждую пробирку (включая контрольную) засевают 0,1 мл культуры, содержащей 1000 микробных клеток в 1 мл, инкубируют 24 ч при 370С. Исходную взвесь тест-культуры готовят по 500 млн. стандарту мутности. Учет результатов проводят на через 24 часа. . Отмечают в протоколе то разведение исследуемого антибиотика (ЕД), которое приводит к отсутствию роста тест-культуры, т.е. минимальную ингибирующую концентрацию антибиотика (МИК). Затем производят высев на МПА материал из пробирок, где нет роста микроорганизмов. Термостатируют при 370С 24 часа (для выявления цидного или статического действия этой концентрации антибиотика).
III. Демонстрация.
1.Таблицы спектра и механизма действия химиотерапевтических средств.
2. Различные химиотерапевтические препараты в товарной упаковке
Определение антимикробной активности антибиотиков по ГФ XI
Основано на их способности угнетать рост микроорганизмов. Осуществляется методом диффузии в агар на плотной питательной среде. Этот метод основан на сравнении размеров зон угнетения роста тест-микробов, образующихся при испытании растворов Государственного стандартного образца антибиотиков и испытуемого препарата. В качестве тест-микробов используют определенные штаммы различных грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов (Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Bac. cereus var. mycoides, Bac. pumilis, Bordetella bronchiseptica, Pseudomonas aeruginosa) и дрожжи Candida utilis. Хранение, выращивание и методы посева этих микробов изложены в ГФ XI, вып. 2 (стр. 218-222).
Антимикробная активность антибиотиков выражается в единицах действия – ЕД, для большинства антибиотиков 1 ЕД соответствует 1 мкг активного вещества (кислоты или основания).
Методика определения антимикробной активности
В чашки Петри, установленные на столиках со строго горизонтальной поверхностью, разливают расплавленные питательные среды в два слоя, причем для нижнего слоя используют незасеянные среды, для верхнего – среду, предварительно засеянную соответствующим тест-микробом в таком количестве, которое обеспечит максимальный рост микроба и четкость зон угнетения его роста.
Шесть стерильных цилиндров высотой 10 ± 0,1 мм и внутренним диаметром 6,0 ± 0,1 мм из нержавеющей стали или алюминия расставляют на поверхности засеянной среды на равном расстоянии друг от друга и от края чашки. Вместо цилиндров могут быть использованы лунки диаметром от 6 до 8 мм, сделанные в толще агара с помощью стерильного сверла.
В цилиндры или лунки каждой чашки вносят равные объемы рабочих растворов стандартного и испытуемого образцов антибиотика. Рабочие растворы нескольких концентраций готовят из исходного (основного) раствора с концентрацией 1 мг/мл. После внесения в лунки растворов антибиотика чашки с тест-микробами выдерживают при комнатной температуре в течение 2 часов, а затем инкубируют при температуре (36±1)0С в течение 16-18 часов (для бактерий).
Диаметры зон угнетения роста тест-микроба измеряют с точностью до 0,1 мм.
Число чашек, используемых в каждом опыте, должно быть достаточным для обеспечения статистической достоверности результатов, но не менее 6 чашек.
Расчет антимикробной активности испытуемого антибиотика ведут согласно соответствующей статье ГФ XI, вып. 2 (стр.213-225).