- •Часть 1. Цитология
- •Введение
- •Лабораторная работа № 1. Способы приготовления препаратов и методы их исследования Цель занятия
- •План изучения темы
- •Теоретическая часть занятия
- •1. Микроскопия
- •1.1. Световая микроскопия
- •1.1.1. Устройство микроскопа
- •1.1.2. Приготовление гистологического препарата
- •1.1.2.1. Взятие и фиксация материала
- •1.1.2.2. Обезвоживание и уплотнение материала
- •1.1.2.3. Приготовление срезов
- •1.1.2.4.1. Типы красителей
- •1.2. Электронная микроскопия
- •Вопросы для контроля
- •Практическая часть занятия
- •Лабораторная работа № 2 Общая морфология клетки и клеточных структур Цель занятия
- •План изучения темы
- •Теоретическая часть занятия
- •1. Единство и многообразие клеток
- •1.1. Клеточная теория
- •1.2. Основные положения теории
- •2. Форма клеток и их ядер под микроскопом
- •3. Клеточные мембраны и структуры клеточной поверхности
- •3.1. Клеточные мембраны
- •3.1.1. Принцип организации мембран
- •3.1.2. Особенности плазмолеммы
- •3.1.3. Функции плазмолеммы
- •3.2. Способы трансмембранного переноса
- •3.2.1. Перенос низкомолекулярных веществ через плазмолемму
- •3.2.2. Перенос в клетку крупных соединений и частиц (эндоцитоз)
- •3.2.3. Перенос из клетки крупных соединений и частиц (экзоцитоз)
- •3.3. Компоненты мембранной системы клетки
- •Вопросы для контроля
- •Практическая часть занятия
- •Самостоятельная работа
- •Теоретическая часть занятия
- •Вакуолярная система цитоплазмы
- •1.1. Эндоплазматическая сеть (эпс)
- •1.3.1. Функция лизосом
- •1.3.2. Виды лизосом
- •1.5. Глиоксисомы
- •1.6. Секреторные, транспортные везикулы
- •Вопросы для контроля
- •Практическая часть занятия
- •План изучения темы
- •Теоретическая часть занятия
- •1.1. Строение
- •1.2. Автономность метаболизма
- •1.3. Функции
- •2. Пластиды
- •2.1. Типы пластид
- •2.1.1. Хлоропласты
- •2.1.2. Лейкопласты
- •Вопросы для контроля
- •Практическая часть занятия
- •Самостоятельная работа
- •1. Рибосомы
- •1.1. Виды и структура рибосом
- •2. Цитоскелет и его производные
- •2.1.2. Микроворсинки
- •2.3. Микротрубочки и их производные
- •2.3.1. Микротрубочки
- •2.3.2. Центриоли
- •2.3.3. Реснички и жгутики
- •Вопросы для контроля
- •Практическая часть занятия
- •Самостоятельная работа
- •Демонстрационные препараты
- •Теоретическая часть занятия
- •1. Клеточное ядро
- •1.1.3. Структура ядра
- •2. Хроматин
- •II. Состояние хроматина в разных клетках
- •2.2. Половой хроматин
- •2.3. Нуклеосомная организация хроматина
- •3. Ядрышко
- •3.1. Строение
- •4. Ядерная оболочка и матрикс
- •4.1. Ядерная оболочка
- •4.2. Ядерный матрикс
- •1.1. Клеточный цикл постоянно делящихся клеток
- •1.2. Клеточный цикл для клеток, прекращающих деление
- •1.2.1. Классификация клеток по способности к делению
- •2. Деление клеток
- •2. 1. Способы деления
- •2.1.2. Митоз
- •2.1.2.1. Стадии митоза
- •II. Метафаза
- •II. Характеристика хромосом
- •2.1.2.3. Уровни укладки хромосом
- •I. Конъюгация гомологичных хромосом и кроссинговер
- •II. Образование клеток с гаплоидным набором хромосом
- •2.1.3.3.Стадии мейоза
- •Вопросы для контроля
- •Практическая часть
- •Самостоятельная работа
- •Список рекомендуемой литературы
1.1.2.4.1. Типы красителей
Все красители, используемые в гистологической технике, подразделяются на три типа.
Тип красителя |
Пример |
Окрашиваемые структуры |
Кислые красители |
Кислоты и кислые соли: эозин(от греч. эос – заря) – искусственная краска; кислый фуксин. |
Окрашиваемые структуры называются оксифильными (имеющими сродство к кислым красителям) Это белковые компоненты цитоплазмы и неклеточные структуры (коллагеновые волокна) |
Основные красители |
Основные соли: гематоксилин (точнее, продукт его окисления - гематеин); азур 2, кармин |
Красящиеся структуры называются базофильные (сродство к основным красителям) Это структуры, богатые нуклеиновыми или иными кислотами – ядра, рибосомы, аморфный компонент межклеточного вещества |
Нейтральные красители |
Смесь двух красителей: основного (азур 2) и кислого (эозин) |
Структуры, воспринимающие кислые красители, окрасятся эозином (специфические гранулы в эозинофильных лейкоцитах) Ядра всех клеток окрашиваются азуром 2 |
Индифферент- ные красители |
Судан III, судан IV |
Суданом окрашиваются жировые капли |
Заключительным этапом на препарат наносят каплю канадского бальзама (в случае среза) или кедрового масла (на мазки крови) и накрывают покровным стеклом. |
1.1.2.5. Мазки и тотальные препараты: особенности приготовления
Примеры тотального препарата – это участки сальника или мягкой мозговой оболочки, растянутые на предметном стекле. В подобных случаях, а также при приготовлении мазков, из четырех перечисленных этапов опускаются два – уплотнение материала и приготовление среза (с последующим освобождением от уплотнителя). Остаются фиксация, окраска и заключение в консервирующую среду. |
При правильном выполнении полученные препараты могут храниться неопределенно долгое время.
1.2. Электронная микроскопия
Если в световом микроскопе увеличение составляет 100–1500 раз, то в электронном микроскопе – 10.000–100.000 раз (и выше), т. е. примерно в 100 раз больше.
1.2.1. Принцип работы электронного микроскопа
1.2.1.1.Особенности: электронная волна, электромагнитные "линзы"
В электронном микроскопе образец облучается не видимым светом, а пучком электронов. Длина же электронной волны значительно меньше, чем световой. Соответственно такая волна “чувствует” меньшие препятствия: разрешающая способность микроскопа оказывается выше. Конструктивная же особенность состоит в том, что в электронном микроскопе в качестве линз используются электромагнитные катушки. |
Внешний вид электронного микроскопа
|
1.2.1.2. Ход лучей
Ход лучей в электронном микроскопе в принципе таков же, как в световом. Источником электронов служит катод, а движущей силой – разность потенциалов между катодом и анодом. Анод расположен вблизи катода и имеет отверстие посередине, через которое проскакивают электроны. Чтобы их поток далее не ослабевал, в тубусе микроскопа создается высокий вакуум. Одна электромагнитная катушка служит в качестве конденсора (фокусирует пучки на образце); вторая катушка – в качестве объектива (принимает лучи, расходящиеся от образца); а третья катушка – в качестве окуляра, или проекционной линзы. Лучи, проходящие через последнюю катушку, попадают далее на люминесцентный экран и вызывают его свечение в месте падения электронов. |
1.2.2. Особенности приготовления препарата
Взятие материала и фиксация |
Материал берут очень маленькими кусочками (порядка 1 мм3), а фиксацию осуществляют обычно в две стадии: а) вначале глутаральдегидом (стабилизация белков), б) четырехокисью осмия (стабилизация фосфолипидов и контрастирование ткани) |
Уплотнение материала |
Образцы, как обычно, обезвоживают, а для их дальнейшего уплотнения используют эпоксидные смолы. Заливку производят в специальных формах; затвердевание смеси происходит путём её полимеризации в термостате; затвердевшие блоки имеют вид маленьких свечей |
Приготовление срезов |
Срезы делают с помощью ультратома; их толщина – 30–50 нм (ср. с микротомными срезами – 10000–20000 нм). Затем их переносят на сеточки (играющие роль предметного стекла) |
Окрашивание срезов |
Окрашивание срезов сводится к их контрастированию с помощью солей тяжелых металлов (свинца, вольфрама, урана); эти соли осаждаются на фосфолипидах мембран и поглощают электроны; поэтому соответствующие места клетки выглядят более темными |