Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
2 курс / Микробиология 1 кафедра / Доп. материалы / Микроб - материалы сайта 1часть.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
24.03.2024
Размер:
1.25 Mб
Скачать

Экзотические болезни – заболевания, не свойственные данной территории. Они могут быть следствием завоза возбудителей инфицированными людьми или животными, с пищевыми продуктами или различными изделиями.

Эпидемический очаг – место пребывания источников инфекции с окружающей территорией, в пределах которой в конкретной обстановке возможна передача возбудителей и распространение инфекционной болезни.

Природно-очаговые инфекции — особая группа болезней, имеющих эволюционно возникшие очаги в природе.

Природный очаг — биотоп на территории:

a)конкретного географического ландшафта,

b)заселённый животными, видовые различия

c)которых обеспечивают циркуляцию

d)возбудителя за счёт его передачи от одного

e)животного другому, обычно через

f)кровососущих членистоногих-переносчиков.

Конвенционные (карантинные) болезни - наиболее опасные болезни, склонные к быстрому распространению, например, чума, холера, оспа, желтая лихорадка.

Система информации и меры профилактики в этих случаях обусловлены международными соглашениями (конвенцией).

ОРГАНИЗАЦИЯ ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКОЙ РАБОТЫ. Профилактические и противоэпидемические мероприятия:

a)обезвреживание источника инфекции

b)разрыв путей передачи возбудителей

c)повышение невосприимчивости населения.

Student TJ

Вопросы для обсуждения:

1.Понятие о биологических методах исследования;

2.Цель заражения лабораторных животных;

3.Методы заражения лабораторных животных :

·Подкожное заражение;

·Накожное заражение;

·Внутрикожное заражение;

·Внутримышечное заражение;

·Внутривенное заражение;

·Внутрибрюшинное заражение;

·Заражение через пищеварительный тракт;

·Заражение через нос;

·Внутричерепное заражение;

·Заражение через прямую кишку

4.Правила проведения биологического метода; 5. Техника вскрытия лабораторных животных;

Понятие о биологических методах исследования

В диагностической работе бактериологических лабораторий часто приходится прибегать к заражению так называемых лабораторных, или опытных, животных. Методы исследования,

P.O.U. 59g

t.me/tgmu12

- 86 -

связанные с применением животных, называются биологическими или экспериментальными, а используемые для этой цели животные - экспериментальными или лабораторными. В качестве лабораторных животных наиболее широко используют беспородных белых мышей, морских свинок, кроликов, белых крыс. Специальные исследования проводят на обезьянах, кошках, собаках, крупном и мелком рогатом скоте, лошадях, некоторых видах диких животных (хомяки, суслики, хорьки, полевки), птицах, а также куриных эмбрионах.

В микробиологической практике животными пользуются для диагностики некоторых инфекционных заболеваний (туберкулез, туляремия, ботулизм и др.), для определения вирулентности и токсигенности изучаемого штамма микроба, активности приготовленных вакцин и определения их безвредности. Кроме этого лабораторные животные служат донорами, от которых можно систематически брать кровь для приготовления кровяных питательных сред и проведения специальных исследований, связанных с использованием крови и ее ингредиентов: сыворотки, плазмы, эритроцитов, лейкоцитов и т.д. В исследование берут только здоровых животных определенных массы тела и возраста.

Учитывая высокую степень риска инфицирования персонала лаборатории при интраназальном и интратрахеальном способах заражения, все манипуляции с животными проводят в боксах биологической безопасности. Особые требования по размещению, планировке, оборудованию, техническому обслуживанию и режиму работы предъявляют к аэрозольным лабораториям, проводящим ингаляционное заражение животных.

Инфекционный процесс может быть искусственно воспроизведен путем экспериментального заражения лабораторных животных накожно, внутрикожно, подкожно, внутримышечно, внуривенно, перорально, интраназально, внутритрахеально, интрацеребрально и внутрибрюшинно. Для заражения животных используют стерильные инструменты.

Методы заражения животных.

Подкожное заражение. Материал вводят в складку кожи, которую захватывают пальцами на спине, у корня хвоста (мышь), на животе (морские свинки, кролики). Прокалывают складку иглой, вводят иглу примерно наполовину, медленно вводят материал. После этого отпускают складку кожи, накладывают на иглу кусочек ваты и быстро вынимают иглу. Во избежание выхода инъецированной жидкости иглу вынимают под углом 45º. Место введения обрабатывают спиртом. Накожное заражение. На участок кожи, лишенный шерсти и продезинфицированный наносят царапину с помощью иглы или скарификатора. На царапину капают каплю заразного материала и втирают его в кожу шпателем или стеклянной палочкой.

Внутрикожное заражение. Накануне введения шерсть на боку или спине животного (кролики, морские свинки) подстригают, а затем выбривают. Тонкую иглу вводят острым углом в приподнятую складку кожи под эпидермис. Жидкость вводят в объеме 0,1-0,2 мл, при этом используют туберкулиновый шприц. В результате на месте введения поверхностный слой эпидермиса приподнимается в виде бугорка.

Внутримышечное заражение. Материал вводят длинной иглой глубоко в мышцу бедра, а у птиц

– в мышцу груди.

Внутривенное заражение. Для этого способа заражения у кроликов используют краевую вену уха, у морских свинок – ушную и яремную, у кошек и собак – яремную и бедренную, у мышей и крыс – хвостовую вену, причем перед впрыскиванием хвост животных погружают в теплую воду, чтобы вызвать гиперемию. Место введения дезинфицируют, тщательно протирают ксилолом для набухания вены. Материал вводят тонкой иглой по направлению тока крови.

Внутрибрюшинное (интраперитонеальное) заражение. Животное держат вниз головой, чтобы внутренности брюшной полости опустились к диафрагме. При этом образуется свободное место

P.O.U. 59g

t.me/tgmu12

- 87 -

для иглы. Укол делают в нижней трети живота, но не слишком низко. Это уменьшает опасность повреждения отдельных участков кишечника, мочевого пузыря и половых органов. Место инъекции дезинфицируют, берут складку кожи как при подкожном заражении, вводят в нее иглу, поворачивают под прямым углом и быстрым толчком прокалывают брюшную стенку. При таком способе заражения можно ввести большое количество заразного материала.

Заражение через пищеварительный тракт (пероральное). Наиболее простым способом является смешивание исследуемого материала или микробной взвеси с кормом, однако при этом нельзя учесть дозу инфекта. Более точные результаты получают при закапывании материала пипеткой через рот. При этом животное фиксируют в вертикальном положении, надавливанием пальцами на щеки или пинцетом открывают рот и медленно капают, давая проглотить каждую каплю. Для данного метода заражения используют также тонкий зонд, который вводят через нос. На наружный конец зонда надевают шприц. Это также позволяет дозировать вводимый материал. Мелких животных заражают при помощи шприца, на который надевают иглу с утолщением на конце в виде оливы.

Заражение через нос (интраназальное). Производят закапывание материала в нос пипеткой или иглой, надетой на шприц. Лучше такое заражение осуществлять под легким наркозом.

Внутричерепное (интрацеребральное) заражение. Мышей и крыс заражают как под наркозом так и без него. Заразный материал вводят на расстоянии 1-2 мм от точки пересечения средней линии черепа с линией, соединяющей наружные углы глаз. Место укола дезинфицируют. Для заражения используют туберкулиновый шприц с тонкой иглой. Кроликов и морских свинок заражают путем прокола тонкой кости в области надглазничной борозды. Испытуемый материал необходимо вводить медленно, чтобы не вызвать резкого повышения внутричерепного давления и предупредить обратный выход вводимого материала. У крупных животных производят трепанацию черепа.

Заражение через глаз (интроокулярное) можно проводить различными способами. Заражение через конъюктиву кролику или морской свинке проводят в задний угол глаза, капая одну каплю материала из пипетки.

При субконъюктивальном заражении тонкой иглой вводят 0,2-0,5 мл материала под конъюктиву. Образуется небольшой пузырек, который быстро рассасывается.

Заражение через прямую кишку (перректальное). Заражение производят путем введения заразного материала, суспендированного в физиологическом растворе, имеющем температуру тела, при помощи клизмы.

Вскрытие погибших животных проводится с целью извлечения пораженных органов, обнаружения возбудителя, вызвавшего гибель животного, выделения чистой культуры возбудителя и определения места его локализации.

Вскрывать животных по возможности следует сразу же после их гибели, чтобы посторонняя микрофлора не исказила результаты опыта. Применяют только стерильные инструменты: скальпели, ножницы, пинцеты.

Трупы мелких лабораторных животных кладут на спину, растягивают в стороны лапы, прикалывают их к доске или кювете с парафином. Можно использовать специальные столики, снабженные соответствующими фиксирующими приспособлениями.

Производят осмотр наружных покровов, отмечая наличие язв, выпадение шерсти, изменения цвета кожи и др.

Перед вскрытием труп животного смачивают дезинфицирующим раствором или спиртом. Инструменты переносят из стерилизатора в банку со спиртом, а перед употреблением их обжигают в пламени горелки.

P.O.U. 59g

t.me/tgmu12

- 88 -

Правила проведения биологического метода

Перед заражением животных рассаживают в банки или металлические ящики (кролики), на которые прикрепляют заранее заполненные этикетки. В этикетке указывают вид и вес животного, номер (по журналу регистрации биопроб), вид и количество (объем, доза) вводимого материала, метод инокуляции, дату заражения и фамилию экспериментатора.

Для обеспечения безопасных условий при заражении животных необходимо строго соблюдать специально разработанные методические приемы. Особые требования предъявляют к подбору шприцев.

Работа по заражению животных проводится в паре. Помощник снимает пробки с пробирок с исследуемым материалом и наклоняет ее таким образом, чтобы врач мог набрать необходимое количество. Чтобы исключить случайное выливание содержимого пробирки, желательно пользоваться пробиркой с углублением в верхней части стенки. Для того чтобы избежать попадания в шприц пузырьков воздуха, следует полностью погрузить иглу в жидкость срезом книзу и медленно продвигать поршень.

При необходимости удалить пузырек воздуха из шприца. Для этого следует с помощью пинцета насадить на иглу стерильный ватный тампон упакованный в бумажный конверт, перевести шприц в вертикальное положение иглой вверх и осторожно его выдавить. После этого пинцетом снимают с иглы тампон, погружают его в дезинфектант, а пинцет – в стакан со спиртом. Более безопасный способ набора инфицированного материала из чашки Петри или ступки.

При заражении материалом, содержащим сравнительно крупные частицы (суспензии органов исследуемых животных и человека, членистоногих, пищевых продуктов и др.), его набирают в шприц через стерильные марлевые или ватные тампоны.

После того как материал набран в шприц, категорически запрещается прикасаться рукой к игле или месту соединения ее с цилиндром.

При необходимости освободить руки работающего после набора инокулята, шприц можно положить в чашку Петри, предварительно наколов на иглу стерильный ватный или марлевый тампон. При этом шприц должен лежать устойчиво и не касаться иглой и канюлей бортика чашки. Все манипуляции, связанные с набором инфицированного материала из пробирки и заражением животных, проводят над кюветой (тазом) с дезинфицирующим раствором.

Шприц с инокулятом держат строго горизонтально между большим, средним и безымянным пальцами правой руки. Указательный палец, оставаясь свободным, не должен касаться (до момента заражения) поршня.

Использованные шприцы обеззараживают кипячением или дезинфицирующим раствором.

Техника вскрытия лабораторных животных

Трупы лабораторных животных вскрывают с целью выяснения причин гибели, выделения введенного возбудителя и изучения патологоанатомических изменений, наступающих в результате перенесенной инфекции. Вскрытие и бактериологическое исследование необходимо проводить в максимально короткие сроки после гибели животного, до проникновения в органы и ткани нормальной микрофлоры. Животное фиксируют в положении на спине, прикрепляя конечности к доске. В процессе вскрытия придерживаются следующего порядка. Вскрытие начинают с исследования наружных покровов и подкожной клетчатки. Затем проводят вскрытие, исследование и взятие материала из органов грудной полости и в последнюю очередь вскрытие, исследование и взятие материала из органов брюшной полости. Перед вскрытием тщательно обрабатывают кожу раствором какого либо антисептика. Вскрытие проводят стерильными инструментами. Делают продольный разрез кожи по прямой линии от нижней челюсти до лобка. На уровне передних и задних лапок делают боковые надрезы. Кожные лоскуты препарируют от

P.O.U. 59g

t.me/tgmu12

- 89 -

подкожной клетчатки и отворачивают в стороны, прикалывая булавками к доске. Отмечают состояние подкожной клетчатки и лимфатических узлов, при необходимости делают из них мазкиотпечатки. Грудную полость вскрывают поперечным разрезом под мечевидным отростком и двумя продольными разрезами через ребра параллельно грудине. Откладывают вырезанный лоскут и осматривают органы грудной полости, отмечая в протоколе наличие экссудата. Для посева крови из сердца его поверхность прижигают раскаленным кончиком пинцета и вводят капилляр стерильной пипетки в полость сердца. Кровь, поднявшуюся по капилляру пипетки, засевают в питательную среду. Из ткани легкого готовят мазки-отпечатки и делают посевы. После этого, сменив инструменты, переходят к исследованию органов брюшной полости, которую вскрывают продольным разрезом брюшины ножницами, не задевая кишечник. Осматривают органы брюшной полости, отмечая в протоколе наличие экссудата, величину, цвет и консистенцию печени, селезенки, надпочечников, мезентериальных лимфатических узлов. При необходимости делают посевы из этих органов на питательные среды. Для приготовления мазков-отпечатков на прижженной поверхности органа (печени, селезенки, почек) делают разрез, из глубины его вырезают небольшой кусочек ткани, берут пинцетом и прикасаются к предметному стеклу поверхностью разреза. Мазки-отпечатки фиксируют в жидком фиксаторе и окрашивают метиленовым синим. При микроскопии отмечают присутствие микроба-возбудителя в различных органах и тканях. Результаты посевов учитывают на следующий день после инкубации в термостате. Труп животного после вскрытия подлежит уничтожению. Изменения, обнаруженные при вскрытии трупа, а также результаты бактериологического исследования вносят в протокол вскрытия.

P.O.U. 59g

t.me/tgmu12

- 90 -