Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

2 курс / Биохимия / Н.Ю.Коневалова - Биохимия

.pdf
Скачиваний:
3
Добавлен:
23.03.2024
Размер:
12.76 Mб
Скачать

III стадия: ЕР Е+Р происходит очень быстро, выделяется продукт реакции, а фермент выделяется в неизменном количестве и качестве.

4.Факторы, влияющие на скорость ферментативных реакций

1.Концентрация субстрата

В1913 г. Михаэлис и Ментен показали, что скорость ферментативной реакции изменяется не пропорционально концентрации субстрата. При увеличении концентрации субстрата и постоянной концентрации фермента скорость вначале увеличивается линейно (а – реакция первого порядка), затем переходит в реакцию смешанного порядка (b), затем стремится к максимальной скорости (с – реакция нулевого порядка).

v

c

Vmax

b

vmax/2 a

Km

[s]

Для участка «а» было предложено уравнение Михаэлиса-Ментен:

v = vmax [S] . Преобразуем уравнение делением на (S): v =

 

vmax

, vmax

 

 

Ks

Ks + [S]

1+

 

 

[S]

 

максимальная скорость, [S] – концентрация субстрата, Ks – константа диссоциации фермент-субстратного комплекса.

Бриггс и Холдейн модифицировали это уравнение для всей кри-

вой – v =

vmax

, введя константу Михаэлиса Кm.

 

1+ Km

 

 

[S]

 

Кm – численно равна концентрации субстрата, при которой скорость реакции равна половине максимальной величины. Кm вы-

ражается в единицах концентрации субстрата, действительно, если Кm = [S], то по уравнению V = Vmax / (1+1)= Vмах/2.

Кm – это мера сродства данного субстрата к ферменту: если Кm

велика, это означает, что потребуется много субстрата для достижения

51

1/2 Vmах (реакция идет медленно); низкая величина Кm указывает на то, что для насыщения фермента достаточно небольшого количества суб-

страта. Итак, величина Кm большая – низкое сродство субстрата к

ферменту, Кm малая – высокое сродство субстрата к ферменту.

1/v

наклон

 

 

Km/Vmax

1/vmax

 

-1/Km

1/[s]

Нахождение величины Кm по кривой уравнения Бриггса и Холдейна неточное. Поэтому Лайнуивер и Бэрк преобразовали уравнение Бриггса и Холдейна по методу двойных обратных величин:

1

=

Km

+

1

v

vmax [S]

vmax

 

 

v

В соответствии с этим уравнением

 

 

строим график в координатах 1/V и 1/(S).

 

Получаем прямую, тангенс угла который

 

равен величине Km/Vmax; отрезок, отсека-

 

емый прямой от оси ординат – 1/Vмах; от-

 

резок, отсекаемый от оси абсцисс – 1/Кm.

 

[s]

Для регуляторных ферментов с четвертичной структурой зависимость скорости реакции от концентрации субстрата имеет S-образный характер вследствие кооперативного эффекта (незначительное изменение концентрации субстрата приводит к резкому увеличению скорости реакции).

2. Влияние концентрации фермента

v

[Е]

При условии избытка субстрата

скорость ферментативной реакции прямо пропорциональна концентрации фермента. Эта зависимость подчиняется уравнению прямой v = к[Е].

52

3. Влияние температуры

v

 

Известно, что скорость химической

Vmax

 

 

реакции увеличивается в 2 раза при повы-

 

 

 

 

шении температуры на 10°С.

 

 

Однако, из-за белковой природы фер-

 

 

ментов, повышение температуры приведет к

 

 

тепловой его денатурации и снижению ско-

37

t

рости реакции. Оптимальная температура –

 

 

это та температура, при которой скорость

реакции максимальна. Для ферментов растений tопт – 45-50°С, ферментов теплокровных – 37°С. Исключение: миокиназа мышц выдерживает нагревание до 100°С.

 

4. Влияние рН среды

v

Ферменты, как и белки,

Vmax

имеют заряженные группы. Об-

щий заряд молекулы фермента з а-

 

висит от рН среды. Зависимость

 

скорости ферментативной реакции

 

от величины рН носит колоколо-

 

образный характер. Любые откло-

 

нения вправо и влево от оптимума

 

рН изменяет заряд фермента,

7.4pH вплоть до достижения ИЭС, что

приводит к потере каталитических свойств. Большинство ферментов проявляет максимальную активность в узком диапазоне рН. Для большинства ферментов крови оптимум рН- 7,4. Для некоторых ферментов оптимум рН находится в кислой либо щелочной среде. Например, для пепсина оптимум рН-1,5, для трипсина

– 8,6.

Лекция 4

РЕГУЛЯЦИЯ АКТИВНОСТИ ФЕРМЕНТОВ. МЕДИЦИНСКАЯ ЭНЗИМОЛОГИЯ

Способы регуляции активности ферментов

Активность ферментов, а значит и скорость химической реакции, можно регулировать, изменяя следующие параметры:

53

1)Абсолютное количество фермента.

2)Условия протекания реакции (рН, t, р), количество субстрата, наличие активаторов, ингибиторов.

3)Каталитическую эффективность фермента.

1. Регуляция количества ферментов

Абсолютное количество фермента в клетке определяется скоростями его синтеза и распада.

В клетке существует два вида ферментов:

1.Конститутивные ферменты – всегда присутствуют в клетках данного организма. Они являются обязательными компонентами клетки, синтезируются с постоянной скоростью в постоянных количествах.

2.Адаптивные ферменты – их образование зависит от условий, складывающихся в клетке. Среди них выделяют индуцируемые и репрессируемые ферменты.

Индуцируемыми обычно бывают ферменты с катаболической функцией (катаболизм – процессы распада). Их образование может быть вызвано или ускорено субстратом данного фермента.

Репрессируемыми обычно бывают анаболические ферменты (анаболизм – процессы синтеза). Ингибитором (репрессором) синтеза ферментов может быть конечный продукт данной ферментативной реакции.

2.Влияние активаторов и ингибиторов на активность ферментов

Активаторы ферментов

Активаторы ферментов – вещества, которые разными путями повышают способность ферментов ускорять реакцию.

Свойства активаторов:

1.Формируют активный центр фермента (Со2+, Mg2+, Zn2+, Fe2+, Cu2+).

2.Облегчают образование фермент-субстратного комплекса

(Mg2+, Мn2+).

3.Стабилизируют нативную структуру фермента.

4.Защищают функциональные группы активного центра от п о- вреждения, например, восстанавливают SH-группы активного центра (глутатион, цистеин).

5.Воздействуют на субъединицы молекулы фермента (протеинкиназа регулируется цАМФ).

54

Активаторами обычно бывают катионы (в таблице Менделеева с 19 по 30), реже анионы. Исключение: ионы хлора и анионы других галогенов активируют пепсин, амилазу, аденилатциклазу. Активаторами могут быть белки: апопротеины АI активирует ЛХАТ, апопротеины СII ЛПЛ.

Ингибиторы ферментов

Это соединения, которые взаимодействуя с ферментом, препятствуют образованию нормального фермент-субстратного комплекса, уменьшая тем самым скорость реакции или прекращая её.

Классификация ингибиторов ферментов

Ингибиторы

неспецифические специфические

необратимые обратимые

конкурентные неконкурентные (изостерические) (аллостерические)

Неспецифические ингибиторы вызывают денатурацию фермента (соли тяжелых металлов, кислоты, щелочи). Их действие не связано с механизмом ферментативного катализа.

Специфические ингибиторы – их действие связано с механизмом ферментативного катализа.

При необратимом ингибировании образуется прочный комплекс фермента и ингибитора, и фермент частично или полностью теряет свою активность. Даже если удалить свободный ингибитор из среды, та часть молекул фермента, которая успела связаться с ингибитором,

остается угнетенной длительное время.

Примеры необратимых ингибиторов

1.Ингибиторы металлосодержащих ферментов – НСN, KCN, CO,

NaN3 – дыхательные яды, они стойко меняют валентность Fe и Сu, входящих в состав ферментов дыхательной цепи, препятствуя переносу электронов на О2.

2.Вещества, связывающие SH группы активного центра – моноиодацетат, соединения ртути и мышьяка.

3.Вещества, связывающие OH-группы серина в активном центре

55

фосфорорганические соединения – боевые отравляющие вещества.

Вслучае обратимого действия ингибитор образует с ферментом непрочный комплекс, способный распадаться, в результате чего снова

возникает активный фермент. Обратимые ингибиторы бывают конкурентные и неконкурентные.

Конкурентный ингибитор – эта молекула очень похожая на суб-

страт и фермент не может различить их, т.е. ингибитор и субстрат кон-

курируют за активный центр фермента.

В результате связывания конкурентного ингибитора с активным центром фермента падает концентрация фермент-субстратных ком-

плексов и скорость реакции уменьшается, т.к. комплекс ингибиторфермент I-Е не способен давать продукт. Однако для активного центра фермента все же лучше подходит субстрат. Поэтому при достаточно

большой концентрации субстрата его молекулы начнут вытеснять

ингибитор I из активного центра фермента, увеличится число молекул фермент-субстратного комплекса ЕS и скорость реакции увеличится. Т.е. путем увеличения концентрации субстрата можно нейтрализовать действие конкурентного ингибитора и достичь максимальной скорости реакции. Однако для ее достижения потребуется гораздо большая концентрация субстрата.

Действие конкурентных ингибиторов:

+I → EI → E + P

E

+S→ ES → E + P

Кинетика ферментативных реакций при действии конкурентных ингибиторов

V

 

1

 

 

V

+I

 

 

Vmax

 

+I

 

 

 

 

Vmax

 

 

 

2

 

 

1/Vmax=1/VmaxI

Km

KmI

[S] –1/Кm –1/KmI

1/[S]

Vmax = VmaхI

KmI > Km

Вывод: конкурентные ингибиторы увеличивают Km реакции, но не влияют на Vmax.

56

Пример конкурентного ингибирования:

COOH

 

COOH

COOH

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

CH2

 

 

 

 

CH

 

 

СДГ

 

CH2

СДГ

 

 

 

 

 

 

CH2

 

-2Н

 

CH

 

COOH

 

 

 

 

 

 

 

COOH

 

 

COOH

 

 

 

 

сукцинат

 

фумарат

 

малонат

 

СДГ – сукцинатдегидрогеназа

Сукцинат (янтарная кислота) – истинный субстрат для фермента сукцинатдегидрогеназы, который превращает ее в фумарат.

Малонат похож по строению на сукцинат и может взаимодействовать с активным центром фермента (конкурентный ингибитор), но фумарат не образуется.

В медицине широко применяются антиметаболиты. Это структурные аналоги природных субстратов (метаболитов). Антиметаболиты выступают в роли конкурентных ингибиторов ферментов, превращающих природные метаболиты. Пример: сульфаниламидные препараты:

ПАБК

 

Е

 

фолиевая

 

 

 

 

рост,

 

 

 

 

кислота

 

 

 

 

размножение бактерий

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

H2N

 

COOH

 

H2N

SO3NH2

ПАБК – парааминобензойная кислота

SA – сульфаниламиды

Для роста и размножения бактерий необходима фолиевая кислота, которая синтезируется из ПАБК (природного субстрата) под действием фермента.

Сульфаниламиды, будучи похожими по строению на ПАБК, вытесняют ее из активного центра ферментов, фолиевая кислота не синтезируется, микробы не размножаются.

Неконкурентные ингибиторы связываются не с активным центром фермента, а с каким-либо другим участком фермента (часто с аллостерическим центром). В результате активный центр фермента свободен и к нему может присоединиться субстрат, т.е. образуется комплекс ЕSI.

Механизм ингибирования состоит в том, что комплекс ЕSI медленно образует продукт и увеличение [S] не влияет на Vmах, Vmах

57

реакции будет снижена. Поскольку эти ингибиторы не мешают связыванию субстрата с активным центром – величина Кm не меняется.

Действие неконкурентных ингибиторов:

 

медленно

E + S + I → ESI

 

E + P + I

 

Кинетика ферментативных реакций при действии неконкурентных ингибиторов

V

 

Vmax

 

Vmax

+I

2

 

VmaxI

 

2

 

Km=KmI

[S]

1/V

 

 

+I

 

1/Vmax

–1/Km= –1/KmI

1/S

VmaхI<Vmax

KmI=Km

Вывод: неконкурентные ингибиторы понижают Vmax, но не вли я- ют на Km.

3. Регуляция каталитической эффективности ферментов

Это все изменения активности фермента, происходящие при по-

стоянном его количестве.

 

Химическая

Мульти -

Аллосте-

 

 

ферментные

 

 

модифи-

комплексы

рическая

 

Превращение

кация

 

регуляция

Регуляция

проферментов

 

 

 

по типу

в активные

 

 

 

обратной

ферменты

 

 

 

связи

 

 

 

 

Рассмотрим наиболее важные пути регуляции:

58

1. Превращение проферментов в активные ферменты. Ряд ферментов (например, протеолитические) синтезируются в неактивной форме – в виде проферментов. Чтобы перейти в активную форму, профермент должен подвергнуться ограниченному протеолизу (т.е. удалению части полипептидной цепи). В ходе протеолиза открывается или формируется активный центр и фермент активируется. Протеолитические ферменты синтезируются в поджелудочной железе в форме проферментов (исключается самопереваривание железы), а активация происходит только в желудочно-кишечном тракте при появлении пищи.

2. Химическая модификация. Это ковалентное присоединение или отщепление от фермента небольшой химической группы, что приводит к изменению активности фермента. Чаще всего к ферменту присоединяется или отщепляется фосфатная группа – фосфорилированиедефосфорилирование фермента. Такой способ регуляции характерен для ферментов синтеза и распада гликогена.

Фосфорилирование и дефосфорилирование проводится разными ферментами, т.е. процесс обратим в функциональном смысле (активен

неактивен), но не в химическом.

3.Мультиферментные комплексы. Это объединение нескольких ферментов, катализирующих многоступенчатую последовательность метаболических реакций. Пример: все ферменты синтеза жирных кислот объединены в единый мультиферментный комплекс – синтаза. Адекватное взаимное расположение ферментов облегчает перенос промежуточных продуктов от одного фермента к другому, что ускоряет выход конечного продукта. Кроме того, такое объединение обеспечивает более эффективный метаболический контроль.

4.Аллостерическая регуляция. Это регуляция путем взаимодействия эффекторов с аллостерическим центром фермента. Как правило, аллостерическая регуляция характерна для ферментов, имеющих субьединичное строение. Их называют аллостерическими или регулятор-

ными ферментами. Каждая субъединица такого фермента содержит свои активный и аллостерический центры. Различают гомотропные и гетеротропные регуляторные ферменты.

Гомотропные: субстрат служит и эффектором. Гетеротропные: эффекторы не являются субстратом.

В аллостерических ферментах активный центр одной субъединицы фермента оказывает влияние на активный центр другой субъединицы в той же молекуле. В результате такого взаимодействия между субъединицами связывание субстрата становится кооперативным. Т.е. кинетические свойства таких ферментов не описываются уравнением Ми- хаэлиса-Ментен и зависимость скорости реакции от концентрации суб-

страта имеет форму S-образной кривой, а не гиперболы. При этом не-

59

большое увеличение концентрации субстрата будет приводить к значительному возрастанию скорости реакции.

Для объяснения кооперативных эффектов используют 2 модели:

симметричную (Моно, Уаймен, Шанжи) и последовательную (Ко-

шланд, Немети, Филмер). Рассмотрим фермент, состоящий из двух субъединиц, имеющих свои активные центры, которые могут в третичной структуре находиться в двух конформациях – R и Т. Причем если фермент находится в R (relax – расслаблять) конформации, субстрат имеет высокое сродство к ферменту, а если в Т (tense – напрягать) – низкое сродство. Из таких субъединиц возможны следующие комбинации четвертичной структуры: RR; TT; RT.

По симметричной модели каждый мультимерный фермент может существовать в двух разных состояниях с неодинаковой четвертичной структурой, но все субъединицы в этих состояниях имеют одинаковую третичную структуру. Т.е. согласно этой модели возможны четвертичные структуры RR, TT и не может быть RT. В отсутствии субстрата преобладают формы ТТ. При связывании субстрата с Т - конформерами произойдет одновременный переход всех субъединиц в R-состояние, что вызовет значительное увеличение скорости реакции. По этой модели гомотропная регуляция всегда положительная, т.к. присоединение субстрата всегда увеличивает сродство фермента к нему – все ТТ перейдут в RR.

S+TT →RR

Последовательная модель, кроме состояний ТТ, RR допускает существование состояния TR, когда отдельные субъединицы мультимера могут в одно и то же время иметь разные третичные структуры. При этом связывание субстрата одной субъединицей вызывает изменение третичной структуры соседней субъединицы и в результате увеличивается или уменьшается их сродство к субстрату.

S+TT → TR →RR (+)

S+RR → TR → TT (-)

Т.е. по этой модели гомотропное взаимодействие может быть положительным и отрицательным.

Аллостерическая регуляция может приводить к активации или ингибированию фермента.

На базе симметричной модели: если эффектор сдвигает конформационное равновесие R T в сторону R, то субстрат будет иметь увеличенное сродство к ферменту – положительный кооперативный эффект. Следовательно, эффектор – активатор. Если эффектор сдвинул равновесие в сторону конформации Т, имеет место уменьшение сродства к ферменту – отрицательный кооперативный эффект; т.е. эффектор

ингибитор.

5.Регуляция по типу обратной связи. Характерна для последова-

60