Дезинфектология / Шкарин В.В., Шафеев М.Ш. Дезинфектология.Руководство для студентов медицинских вузов и врачей

го агара и на среду Эндо. Посевы выдерживают в термостате при темпера­ туре 37°С. Результаты учитывают через 48 ч. Дезинфекцию считают эффек­ тивной при отсутствии роста микроорганизмов.

В акушерских стационарах обязательным является бактериологичес­ кий контроль подвергнутого пастеризации грудного молока, растворов для питья и масла для обработки кожи новорожденных. Колититр пастеризо­ ванного грудного молока должен быть не ниже 11,1 см3, общее микробное число — не более 500, золотистый стафилококк должен отсутствовать в 1 мл. Растворы для питья новорожденных и масло для обработки кожи дол­ жны быть стерильными.

Контроль за состоянием аутофлоры кожи, обсемененности нательного и постельного белья больных и спецодежды персонала асептических отде­ лений проводится 1 раз в месяц лабораторией ЛПУ путем взятия проб ме­ тодом отпечатков старшей медицинской сестрой отделения. Бактериоло­ гический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук медицинского персонала проводится выборочно старшей операцион­ ной сестрой 1 раз в неделю. В смывах с рук персонала, инвентаря, санитар­ ной одежды бактерии группы кишечной палочки и золотистый стафило­ кокк должны отсутствовать.

Бактериологический контроль санитарного состояния аптек осуществ­ ляется персоналом лаборатории ЛПУ не реже двух раз в квартал. Объекта­ ми бактериологических исследований являются вода дистиллированная, инъекционные растворы до стерилизации, инъекционные растворы после стерилизации, глазные капли после стерилизации, глазные капли на сте­ рильных основах, сухие лекарственные вещества для приготовления инъ­ екционных растворов, аптечная посуда, пробки , прокладки, прочие вспо-

^ 73 ^

стерилизационной очистки средства разрешены к применению (приложе­ ние 6).

Разъемные изделия должны подвергаться предстерилизационной очи­ стке в разобранном виде.

При ручной очистке процесс включает ряд операций:

1.Замачивание в моющем растворе при полном погружении изделия в разобранном виде с обязательным заполнением всех каналов и полостей на 15—60 мин (в зависимости от применяемого средства).

При любом способе очистки ИМН могут применяться только те мою­ щие средства, которые отвечают следующим требованиям:

• хороший моющий эффект при минимальном пенообразовании;

• отсутствие пирогенности,

• отсутствие токсичности;

• хорошая смываемость с изделий;

• отсутствие коррозионного действия.

Вкачестве моющих средств в настоящее время применяют Биолот, Биолот-1, «Лотос», «Лотос-автомат», «Прогресс», «Астру», Бланизол, Септодор, «Луч», «Зифу», Векс-Сайд, «Нику-экстра».

Вместо замачивания в моющем растворе можно использовать кипяче­ ние в 1,5% растворе моющих средств или 2% растворе двууглекислого на­ трия в течение 15 мин.

2.Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона, тканевой салфетки (шприца — для каналов) в течение 0,5—1 мин. Температура раствора в процессе мойки не поддержи­ вается. Ершевание резиновых изделий не допускается.

Моющий раствор перекиси водорода с CMC , а также с двууглекис­ лым натрием можно использовать в течение суток с момента изготовле­ ния, если цвет раствора не изменился. Неизмененный раствор можно по­ догревать до 6 раз в течение рабочей смены. Появление розовой окраски свидетельствует о загрязнении раствора кровью, снижающей эффектив­ ность очистки.

3.Ополаскивание под проточной водой (0,5—10 мин). Ополаскивание осуществляется в емкостях (ванне, раковине) при по­

мощи устройств для струйной подачи воды, насадок для игл в течение вре­ мени, предусмотренного инструкцией к применяемому средству.

4.Ополаскивание дистиллированной водой в течение 0,5 мин.

5.Сушка горячим воздухом при температуре 85°С до полного исчезно­ вения влаги в воздушном стерилизаторе при открытом вентиляционном отверстии; в шкафу сушильном стерилизационном — при неплотно закры­ той дверце для колюще-режущих инструментов или на чистом полотенце.

Предстерилизационная очистка ручным способом с применением за­ мачивания в моющем растворе представлена в приложении 7.

В настоящее время существует ряд средств, позволяющих проводить одновременно, в один этап, дезинфекцию и предстерилизационную очист­ ку инструментов (Лизетол, Дюльбак макси, Виркон, Пероксимед). Исполь-

75 <^>»

не учитывается. Буроватое окрашивание появляется при наличии ржавчи­ ны и хлорсодержащих окислителей, в остальных случаях окрашивание ро­ зово-сиреневое.

При положительной амидопириновой пробе возникает сине-зеленое окрашивание. Фенолфталеиновая проба при наличии неотмытых компо­ нентов синтетических моющих средств дает розовое окрашивание. При про­ верке шприцев на наличие жировых загрязнений внутрь вносят 3—5 мл реактива с суданом-Ш, смачивая им всю внутреннюю поверхность. Через 10 с краску смывают обильной струей воды. Желтые пятна и потеки указы­ вают на наличие жировых загрязнений.

При положительных пробах вся партия контролируемых изделий под­ лежит повторной обработке до получения отрицательных результатов.

Самоконтроль в ЛПУ проводится ежедневно. Организует и осуществ­ ляет контроль старшая медицинская сестра ЦСО. Результаты контроля от­ ражают в журнале по форме № 366у.

Стерилизация

Стерилизация обеспечивает полное освобождение вещества или пред­ мета от микроорганизмов. Поскольку наибольшую устойчивость проявля­ ют споры микроорганизмов, то стерилизующими являются средства, ока­ зывающие бактерицидное, вирулицидное и спороцидное действие. Все ме­ роприятия по стерилизации проводятся согласно МУ 287-113 от 30.12.98. Стерилизуют все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, кон­ тактирующие с кровью или инъекциоными препаратами, а также медицин­ ские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со сли­ зистой оболочкой и могут вызвать ее повреждение.

Стерилизация является основой асептики.

Асептика — это система мероприятий, направленных на профилактику инфицирования ран, тканей, органов, полостей тела больного при хирурги­ ческих вмешательствах, перевязках, эндоскопических и других лечебных и диагностических манипуляциях.

Асептика тесно связана с антисептикой. В 1-й главе мы подробно оста­ навливались на отличительных признаках стерилизации и антисептики.

Под антисептикой подразумевается применение различных препара­ тов (в основном химических) для обеззараживания рук медицинского пер­ сонала, кожи операционного поля и места инъекции лекарственных средств через кожные покровы, а также непосредственно раневых поверх­ ностей. Основные требования к антисептическим средствам — широкий спектр антибактериальной активности при минимальном побочном дей­ ствии. Примером современных антисептиков является хлоргексидина биглюконат, Аминадерм, Асептинол С, Асептинол спрей, Декосепт, Кутасепт Ф, Октенидерм, Октениман, Пливасепт, Сагросепт, Стериллиум, Дегмицид.

77

Отождествлять или противопоставлять асептику и антисептику не­ правомерно. Оба эти понятия взаимосвязаны и дополняют друг друга при осуществлении комплекса мероприятий, направленных на предупрежде­ ние гнойно-септических заболеваний во всех областях лечебной деятель­ ности (хирургии, акушерства, гинекологии, педиатрии, стоматологии, уро­ логии).

Методы стерилизации изделий медицинского назначения

Стерилизация является третьим этапом обработки ИМН. Для ее про­ ведения используют физический и химический методы. Физический метод предполагает использование термических (паровой, воздушный), радиаци­ онных (гамма-излучение) способов стерилизации; химический — приме­ нение газов и растворов химических препаратов.

Радиационный способ и химический метод стерилизации называют хо­ лодными, так как процесс стерилизации идет при температуре ниже 100°С.

Методы и способы стерилизации и условия ее проведения представле­ ны в табл. 21, а классификация медицинских стерилизаторов — на рис. 6.

Физический метод стерилизации

Паровой способ

Стерилизующим агентом при паровом способе стерилизации является водяной насыщенный пар под избыточным давлением. Стерилизацию про­ водят в паровых стерилизаторах (автоклавах) в двух режимах:

1) температура 132±2°С при давлении пара 0,2 МПа (или 2 атм), время выдержки 20 мин;

2) температура 120±2°С, давление 0,11 МПа (1,1 атм), время выдержки 45 мин.

Насыщенный водяной пар под давлением быстро уничтожает микро­ бы в результате коагуляции протеина внутри бактериальной клетки. Для получения пара лучше использовать дистиллированную воду, которая сво­ бодна от солей и дает меньше осадка в аппаратах.

Паровые стерилизаторы делятся на шкафные и цилиндрические, пос­ ледние разделяются на вертикальные и горизонтальные. В вертикальные загружают и выгружают изделия сверху. Горизонтальные бывают непроход­ ные (однодверные, односторонние) и проходные (двухдверные, двухсто­ ронние). В последнее время выпускают стерилизаторы с автоматическим регулятором давления пара или с полной автоматизацией всего цикла сте­ рилизации с момента закрытия двери до окончания всего процесса.

В стерилизационную камеру закладывают стерилизационные коробки (биксы), которые изготовлены из тонкого листа металла, могут быть квад-

78

ратными или круглыми по форме, с крышкой на петлях, с фильтром или без него. В качестве фильтров используют лавсан — эффективность пылезадержания 98,7%. Биксы имеют в своих стенках отверстия, которые от­ крываются во время стерилизации и закрываются специальным поясом после стерилизации.

Паровым способом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионно-стойких метал­ лов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое белье, перевязочный