Дезинфектология / Шкарин В.В., Шафеев М.Ш. Дезинфектология.Руководство для студентов медицинских вузов и врачей

Licheniformis, B-6. Бактериальный тест представляет собой инсулиновый флакон с определенным количеством спор, вложенный в пакетик из упако­ вочной бумаги. Тест может храниться в холодильнике при температуре +4°С в течение 2 лет без значительного снижения числа спор и их термоустойчи­ вости.

Для контроля стерилизатора пакеты с бактериальными тестами нуме­ руют и размещают в тех же контрольных точках, что и химические тесты и максимальные термометры (см. табл. 24, 25). Споры в паровом стерилиза­ торе погибают через 15 мин при 120°С, в воздушном стерилизаторе через 30 мин при 160°С. Эти показатели гибели спор соответствуют требованиям международных стандартов. По окончании стерилизации пакеты с тестами вынимают из стерилизатора и в тот же день доставляют в бактериологичес­ кую лабораторию с сопроводительными документами.

Влаборатории, в асептических условиях, в каждый флакон вносят 2,0 мл питательной среды и закрывают стерильными резиновыми пробка­ ми. Далее тесты из паровых стерилизаторов инкубируют при температуре 55°С, из воздушных стерилизаторов — при температуре 37°С в течение 7 сут с ежедневным просмотром результатов. В качестве контроля обяза­ тельно используют тест, который не подвергается действию стерилизующе­ го агента. Как правило, рост тест-культуры отмечается уже на 1—2-е сутки.

Основанием для оценки эффективности работы стерилизатора служит гибель спор в тесте после стерилизации, т.е. отсутствие помутнения пита­ тельной среды. В случае помутнения готовят мазок с окрашиванием по Граму и производят высев на питательный агар для сопоставления выделен­ ной культуры с контрольной. Рост на агаре любой другой культуры и нали­ чие в мазке кокков, серраций и т.д. относят на загрязнение при посеве. При наличии роста тест-культуры и обнаружении ее в мазке ищут причины не­ удовлетворительной работы стерилизатора и осуществляют повторный его контроль.

Впроцессе контроля возможны варианты, когда результаты химичес­ кого и бактериологического тестов не совпадают.

1.Химические тесты расплавились, максимальная температура на тер­ мометрах соответствует режиму, а бактериальный тест положительный. Это говорит о том, что температура стерилизации была достигнута, но на ко­ роткое время, недостаточное для гибели тест-культуры, то есть материалы

иинструменты остались нестерильными.

2.Бактериальный тест отрицательный (тест-культура погибла), а хи­ мический тест не изменил своего агрегатного состояния. Это свидетельству­ ет о том, что температура в стерилизаторе чуть ниже температуры плавле­ ния химического теста, т.е. ниже допустимой для данного режима, но дос­ таточно высока и продолжительна для гибели тест-культуры. Инструмен­ ты и материалы в данном случае тоже считаются нестерильными.

Оперативные (физические и химические) и бактериологический мето­ ды контроля взаимно дополняют друг друга, и поэтому показателями каче­ ственной работы стерилизующей аппаратуры являются:

<^ 93

Контроль за подготов­ кой объекта к стерили­ зации

f^** 95 <"^»'

Посев исследуемых изделий желательно проводить в настольных бок­ сах с ламинарным потоком стерильного воздуха; при отсутствии таких бок­ сов — в боксированных помещениях (бокс с предбоксником). Для обеспе­ чения асептических условий производят соответствующую подготовку: поверхности помещения обеззараживают 3—6% растворами перекиси во­ дорода, облучают ультрафиолетовыми лучами с использованием бактери­ цидных ламп; в работе используют стерильный инструмент, посуду и спец­ одежду. Перед предбоксником снимают наружную мягкую упаковку с ис­ следуемых предметов, в предбокснике пакеты и стерилизационные короб­ ки протирают 6% раствором перекиси водорода и оставляют на 30 мин на стерильном лотке, после чего вносят в бокс; при поступлении изделий в мягкой двухслойной упаковке наружную снимают в предбокснике, во внут­ ренней — сразу переносят в бокс.

Контроль стерильности изделий проводят путем погружения в пита­ тельные среды целого изделия или его части; в исключительных случаях, когда контролю подвергают изделия больших размеров, пробы забирают путем смыва стерильной салфеткой, предварительно увлажненной стериль­ ным физиологическим раствором, стерильной водопроводной водой или раствором соответствующего нейтрализатора. Посев с предметов одного наименования, их частей или смывов с одного предмета проводят одновре­ менно на две питательные среды: тиогликолевую и бульон Сабуро. Первую используют для выявления бактерий — как аэробных, так и анаэробных, вторую — для выявления грибов.

Посевы в тиогликолевую среду культивируют в термостате при темпе­ ратуре 32±ГС, в бульоне Сабуро при 22±ГС. После стерилизации паро­ вым или воздушным способом посевы термостатируют в течение 7 сут, пос­ ле стерилизации радиационным, газовым способами и растворами — 14 сут. При отсутствии роста микроорганизмов во всех посевах с изделий из одной загрузки паровых, воздушных или газовых стерилизаторов, одной партии изделий, стерилизованных радиационным способом, или из одной группы изделий, подвергавшихся одномоментно стерилизации растворами в одной емкости, изделия считают стерильными. В случае прорастания посевов (по­ мутнение питательной среды, образование осадка) готовят мазки для мик­ роскопического подтверждения роста микробов. Следует иметь в виду, что рост вегетативной микрофлоры в единичных пробирках может иметь мес­ то в результате загрязнения их в процессе посева, исключение составляют стрептококки в посевах с изделий, простерилизованных радиационным спо­ собом. Однако данные разных исследований свидетельствуют, что вторич­ ное инфицирование стерильных изделий происходит после стерилизации на различных этапах: сушки, выгрузки из стерилизаторов, транспортиров­ ки и хранения. Поэтому материал подлежит повторному исследованию. Зак­ лючение о стерильности образцов, простерилизованных газовым способом, делают через 14 сут, простерилизованных паровым и воздушным способа­ ми — после 8 сут.

96

Централизованное стерилизационное отделение

Задачи и функции ЦСО

Основными задачами ЦСО являются обеспечение ЛПУ полноценно обработанными медицинскими стерильными инструментами, материала­ ми, внедрение в практику современных методов предстерилизационной очистки и стерилизации медицинских инструментов и материалов.

Стерилизационное отделение осуществляет (рис. 7 ) : а) прием использованных инструментов;

б) разборку, сортировку, очистку инструментов и ИМН; в) упаковку и стерилизацию инструментов, материала, ИМН;

г) выдачу стерильного инструментария, материала, а также изделий одноразового применения;

д) самоконтроль за качеством предстерилизационной очистки и эффек­ тивностью работы стерилизационной аппаратуры;

е) ведение документации.

Прием

использованных

ИМН

J

Разборка, сортировка, очистка ИМН

Рис. 7. Функции централизованного стерилизационного отделения Л П У

7 Заказ № 1558

Устройство и организация работы ЦСО

Ответственным за организацию ЦСО является главный врач ЛПУ. Набор помещений ЦСО и их площадь должны соответствовать СНИП

Н-69-78 ч. II: Нормативы проектирования. Централизованные стерилизационные отделения. При отсутствии возможности иметь полный набор по­ мещений можно ограничиться следующим минимумом:

•приемная;

•моечная;

•подготовительная;

•стерилизационная;

•помещение для хранения стерильного инструментария и материалов (экспедиция).

Необходимо предусмотреть разделение ЦСО на две изолированные зоны (стерильную и нестерильную) и организацию 2 потоков обработки. 1-й по­ ток — обработка и стерилизация инструментов, резиновых изделий. 2-й по­ ток — подготовка и стерилизация белья и перевязочных материалов (рис. 8).

Стерилизационная и помещение для хранения стерильного инструмен­

тария и материалов должны быть оборудованы бактерицидными лампами (ОБН-200 или ОБН-350, один облучатель на 30 м3 помещения).

Приемная. В ней осуществляют проверку количества и качества дос­ тавленных из отделений, кабинетов, участков шприцев, игл, инструмента­ рия, материалов, сортируют и регистрируют в журнале учета весь посту­ пивший для стерилизации материал. Приемную оборудуют рабочими сто­ лами, лотками, подносами, канцелярским столом, стульями.

Моечная. Здесь проводится тщательная механическая очистка инст­ рументария от остатков лекарственных веществ и крови. Она должна иметь следующее оборудование:

•столы;

•ванны для моющих растворов;

•водяные кипятильники;

•полуавтоматические или автоматические установки для промывания шприцев, игл;

•дистилляторы;

•моечные машины для инструментов;

•термометры.

Шприцы, иглы, инструментарий, изделия из резины погружают в спе­ циальные ванны с моющим раствором. Предстерилизационную очистку проводят в соответствии с разработанными методами и режимами. После очистки заведующий ЦСО или специально назначенное лицо проводят са­ моконтроль качества предстерилизационной очистки инструментария от крови, жира, щелочных компонентов моющих средств. Результаты качества предстерилизационной очистки фиксируют в журнале по утвержденной форме.

Подготовительная. В подготовительной (упаковочной) производят

^ 98 ^

С т е р и л ь н ая з о н а

Нестерильна я з о н а

подсушку и упаковку инструментария, шприцев, игл, изделий из резины. Весь инструментарий, подлежащий воздушному способу стерилизации, под­ вергают предварительной подсушке при температуре 80—90°С в течение 15— 30 мин. Перед упаковкой проверяют качество инструментария, игл, шпри­ цев.

По окончании упаковки в каждый бикс или укладку помещают хими­ ческие индикаторы для контроля эффективности стерилизации. На паке­ тах со шприцами проставляют только дату стерилизации (вручную или штампом), для остальных изделий — на бирке, прикрепленной к набору с изделиями в мягкой упаковке или к стерилизационной коробке, указыва­ ют наименование изделий, дату стерилизации и подпись лица, проводив-

шего стерилизацию. В журнале фиксируют наименование стерилизуемого изделия, фамилию лица, проводившего упаковку и стерилизацию, и дату стерилизации. Упакованные изделия передают в стерилизационную.

Стерилизационная оборудуется различными типами воздушных и па­ ровых стерилизаторов, рабочим столом. В стерилизационной должен быть бикс со стерильными простынями, которыми накрывают стерильные бик­ сы сразу же после выгрузки из стерилизатора до их охлаждения с целью предотвращения вторичного загрязнения .

Экспедиция. Здесь производят прием стерильного инструментария и материалов из стерилизационного зала; сортировку и укомплектование ин­ струментария согласно заявкам из кабинетов, отделений, участковой сети поликлиники. Простерилизованный инструментарий хранится на стелла­ жах или в шкафах, полки которых маркируют по участкам, кабинетам по­ ликлиники. Срок хранения простерилизованных изделий в экспедиции включается в общий срок хранения. Для предупреждения возможного на­ рушения целостности и стерильности пакеты с инструментарием могут укладываться в биксы так, чтобы они не прилегали близко друг к другу и не располагались слишком свободно. Для выемки стерильного материала необходимо иметь чистый комплект спецодежды (халат, матерчатые пер­ чатки, колпак, маска, бахилы), который заменяется не реже одного раза в смену.

Таким образом, при организации ЦСО в ЛПУ необходимо соблюдать ос­ новные принципы размещения и планирования его помещений (см. рис. 8):

1.Изоляция ЦСО от других помещений ЛПУ.

2.Функциональное зонирование помещений ЦСО для обеспечения рационального технологического процесса, предполагающего разделение всех помещений по территории на стерильную и нестерильную зоны.

3.Поточность процесса стерилизации с выделением отдельных пото­ ков обработки для:

•белья и перевязочного материала;

•инструментов, шприцев, игл, термолабильных изделий и перчаток.

Контроль санитарного состояния

Контроль за организацией работы в ЦСО проводят отделы контроля за ЛПУ ЦГСЭН, унитарные дезинфекционные предприятия одновременно с контролем дезинфекционного и санитарно-гигиенического режимов в ЛПУ не реже одного раза в квартал.

Контроль мероприятий по стерилизации в ЛПУ, не имеющих ЦСО, в детских учреждениях предусматривает проверку качества предстерилиза­ ционной обработки и работы стерилизационной аппаратуры; правильнос­ ти упаковки стерилизуемых изделий; соблюдения режима стерилизации, условий хранения, транспортировки и выдачи стерильных изделий; пра­ вильности ведения учетной документации, проведения самоконтроля ра­ ботниками ЛПУ.

100 ^

Объектом исследования при проведении бактериологического контроля санитарного состояния помещений ЦСО является воздух и поверхности различных предметов в стерильной и нестерильной зонах.

Поверхности. Оценка санитарного состояния ЦСО проводится на ос­ нове определения обсемененности микроорганизмами горизонтальных по­ верхностей различных предметов: рабочих столов, тумбочек, окон выдачи, полок, стеллажей, каталок, лотков, поверхностей не работающей в данный момент аппаратуры и т.д. Для правильного определения обсемененности поверхностей микроорганизмами смыв выполняют по трафарету со 100 см2 поверхности. Трафарет перед взятием каждого смыва обжигают в пламени спиртовки и кладут на поверхность, с которой будет браться смыв. При кон­ троле санитарного состояния ЦСО забирается не менее 10 смывов при каж­ дом обследовании.

Воздух. Исследование проб воздуха на общую обсемененность микро­ организмами может проводиться двумя методами.

1. Аспирационный метод дает наиболее достоверные результаты. За­ бор проб воздуха осуществляется аппаратом Кротова. Улавливание микро­ организмов основано на ударно-пробивном действии струи воздуха, направ­ ленной на питательную среду в чашке Петри.

Открытую чашку Петри устанавливают на вращающийся столик аппа­ рата Кротова, который включают на 4 мин. Через специальную щель в крыш­ ке аппарата воздух помещения засасывается и попадает на открытую чаш­ ку со средой (за 4 мин 100 л (1 м3) воздуха). Затем чашку Петри вынимают, закрывают крышкой и заворачивают в бумагу для отправки в лабораторию.

При переносе аппарата Кротова из одного помещения в другое его по­ верхность обрабатывают дезинфицирующим раствором. Столик, внутрен­ ние стенки и крышку прибора с внутренней и внешней стороны протирают спиртом (70°).

2. Седиментационный метод основан на принципе оседания микробов на открытые чашки с питательной средой. При работе этим методом необ­ ходимо максимально устранить все существующие потоки воздуха: закрыть двери, форточки, отключить вентиляцию, не ходить и т.п. Метод не дает возможности точно определить обсемененность воздуха.

Для отбора проб воздуха осторожно открывают чашки, а крышки кла­ дут таким образом, чтобы их внутренние поверхности были обращены к стерильной бумаге, в которую завернуты чашки. Открытые чашки Петри оставляют на 10 мин, затем закрывают, заворачивают в ту же бумагу и от­ правляют в лабораторию. В сопроводительном бланке на смывы и пробы воздуха обязательно указывают условия отбора: «до начала работы» или «во время работы». В лаборатории чашки помещают в термостат при тем­ пературе 370С на 24 ч, после чего их извлекают и еще сутки выдерживают при комнатной температуре. Затем подсчитывают количество выросших колоний и производят пересчет на кубический метр воздуха.

Оценка санитарного состояния ЦСО производится путем сравнения результатов исследований с показателями предельно допустимой обсеме-

^ 1 0 1 ^