- •Выбор места контроля загрязнения и поиск его источника с целью первичной оценки и отбора проб.
- •Пробоподготовка в анализе объектов окружающей среды
- •20 См) нанесены риски. Проба отбирается вращением пробоотборника за рукоятку против часовой стрелки с
- •Отбор проб донных отложений
- •Отбор проб растительности.
- •6. Отбор проб животного происхождения
- •Стабилизация, хранение, и транспортировка проб для анализа.
- •Особенности хранения биологических проб.
- •Отбор проб объектов загрязненной среды. Отбор проб воды.
- •Пробы из рек и водных потоков.
- •Пробы из природных и искусственных озер (прудов).
- •Пробы влажных осадков (дождя и снега).
- •Пробы грунтовых вод.
- •14. Пробы воды из водопроводных сетей.
- •Отбор проб воздуха. Отбор проб газа, способы и устройства для хранения газов.
- •4) Экстракция
- •Отбор проб в жидкие среды.
- •Отбор проб на твердые сорбенты
- •Криогенное концентрирование.
- •Хемосорбция.
- •24. Отбор проб в контейнеры.
- •25. Концентрирование на фильтрах.
- •26. Метод пробоподготовки сухое и мокрое озоление. Преимущества и недостатки.
- •Физико-химические методы в контроле загрязнения окружающей среды. Основные приборы и устройства для проведения анализов.
- •Экологическое нормирование. Критерии оценки качества окружающей природной среды. Нормы оценки загрязнения атмосферного воздуха, поверхностных вод и почв.
- •31.Электрохимические методы анализа
- •32. Вольтамперометрия.
- •Потенциометрические методы анализа.
- •Кислотно-основное титрование.
- •Комплексонометрическое титрование.
- •Титрование по методу осаждения.
- •Окислительно-восстановительное титрование .
- •Газовый анализ. Виды газового анализа: механические, акустические, тепловые, магнитные, оптические, ионизационные, масс-спектрометрические, электрохимические, полупроводниковые.
- •Микроскопия. Методы микроскопии.
- •Оптическая микроскопия.
- •Электронная микроскопия.
- •Рентгеновская микроскопия
- •Трансмиссионная микроскопия.
- •Растровая (сканирующая) микроскопия.
- •Сканирующая микроскопия.
- •Физические методы в мониторинге (масспектрометрия, рентгеноспектральный анализ).
- •Использование методов хроматографии в экологическом мониторинге. Способы расчета концентрации загрязняющих веществ.
- •Относится к оптическим методам анализа воды
- •Глобальные и региональные прогнозы состояния природной среды. Прогноз загрязнения природных вод, почв. Прогноз качества водных ресурсов.
- •Мониторинг за состоянием окружающей среды в местах хранения (накопления) отходов.
- •Глобальные и региональные прогнозы состояния природной среды. Прогноз загрязнения атмосферы.
Особенности хранения биологических проб.
При хранении биопроб- организменных жидкостей (моча, плазма, сыворотка крови, лимфа, слюна и др.), тканей (мышцы, жир, волосы и т.д.), органов (мозг, печень, почки, легкие и др.), растений, пищевых продуктов и т.д. необходимо учитывать их особенности. Например, работа с мочой требует постоянного контроля за изменением рН, так как она увеличивается со временем из-за действия бактерий, в ней содержащихся. Активность последних уменьшают добавлением борной кислоты и антибактериальных препаратов, однако при такой стабилизации следует учитывать возможность влияния и этих веществ на результаты анализов, применяя «холостые» опыты с введением в них таких же, как в стабилизируемой пробе, концентраций. В конечном итоге оптимальным способом стабилизации проб мочи считается добавление 1 мл ледяной уксусной кислоты к 100 мл мочи (до рН 3,3—4,3). Однако при определении ртути мочу необходимо стабилизировать не уксусной кислотой, а подкислять пробы азотной кислотой до рН, равного 1 и ниже.
К факторам, определяющим получение корректных результатов при анализе крови (плазма, сыворотки), относятся, помимо правильности отбора проб и последующей пробоподготовки, ее хранение до анализа и содержание в ней метаболитов. Если для предотвращения свертывания крови используют антикоагулянты, необходимо иметь в виду, что гепарин, применяемый для этого, вытесняет жирные кислоты из их соединений с альбумином. Это, с одной стороны, увеличивает связывание белками токсичных соединений, а с другой - влияет на накопление последних в ли-пидах. Кроме того, некоторые антикоагулянты (ЭДТА, NаF) вызывают дегидратацию эритроцитов и разбавляют плазму.
При хранении проб слюны в первую очередь следует замедлить ее ферментативную активность, так как содержащиеся в ней энзимы (ферменты амилаза, фосфатаза, эстеразы и пр.) могут повлиять на метаболи ческие изменения определяемых в ней 3В. Чтобы избежать поглощения следовых количеств, например, супертоксикантов стенками посуды, слюну рекомендуется хранить в склянках из фторопласта. Необходимо также иметь в виду, что содержащиеся в слюне белковые вещества (альбумины, липопротеиды, глобулины и др.) могут связывать анализируемые в ней токсичные вещества, например, тяжелые металлы.
С точки зрения хранения проб, одним из самых «неудобных» для анализа биообъектов является печень. Так, даже после принятия всех необходимых мер (например, глубокого замораживания) в конечном итоге не удается устранить все погрешности, связанные с хранением и пробоподготовкой образцов печени.
В общем случае химическим или бактериальным превращениям проб способствует наличие в них воды. В некоторых методиках перед хранением биопроб рекомендуется их сушка. Однако она обычно необратимо меняет их биологическую матрицу. Поэтому так называемую «сухую массу», как правило, применяют лишь для грубого сравнения данных, полученных в разных лабораториях (их данные и так должны расходиться из-за различий в технологии контроля). Так, например, большая часть ртути, мышьяка и селена при сушке теряются [6], поэтому в данном, да и в большинстве других случаев более предпочтительна лиофилизация (обычно - вакуумная сушка при пониженной температуре), в ходе которой биологический материал изменяется меньше.