перорально или через дыхательные пути, что и определяет развитие патологического процесса: расстройство функции желудочно-кишечного тракта с обезвоживанием или поражение органов дыхания, бактериемия, септические осложнения. Заболевают в первую очередь дети раннего возраста.
Иммунитет. Вырабатывается только по отношению к одному серовару сальмонелл.
Профилактика. Строгое соблюдение санитарно-гигиенического режима в лечебных учреждениях.
Специфическая профилактика. При возникновении внутрибольничной сальмонеллезной инфекции детям, контактировавшим с больным, следует давать сальмонеллезный поливалентный бактериофаг.
Лечение. Симптоматическое.
Контрольные вопросы
1.Каковы морфологические, культуральные и ферментативные свойства сальмонелл?
2.На чем основана классификация сальмонелл?
3.Какие заболевания вызывают сальмонеллы?
Микробиологическое исследование
Цель исследования: выделение возбудителей заболевания и определение серовара сальмонелл.
Материалдля исследования
1.Кровь.
2.Испражнения.
3.Моча.
4.Дуоденальное содержимое.
В зависимости от стадии болезни исследуют разный материал.
Исследованию могут быть также подвергнуты содержимое розеол, костный мозг, мокрота и материал, полученный на вскрытии - кусочки органов.
При токсикоинфекциях материалом для исследования могут служить промывные воды желудка, рвотные массы, остатки пищевых продуктов.
Способысбора материала
Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/
Способы сбора материала
Независимо от характера взятого для исследования материала с момента выделения чистой культуры исследование ведут по общей схеме.
Основныеметодыисследования
1.Бактериологический (рис. 43).
2.Серологический.
Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/
Рис. 43. Схема микробиологического исследования при брюшном тифе и паратифах в разные периоды заболевания. I - 1-й период исследования (гемокультура); II - 2-й период исследования (реакция Видаля); III- 3-й период исследования (копрокультура)
Ход исследования
Первый день исследования
Первый день исследования
Второй день исследования
Вынимают чашки из термостата (инкубация 18-24 ч) и просматривают выросшие колонии невооруженным глазом и при помощи лупы. Несколько (5- 6) подозрительных колоний выделяют на среду Олькеницкого или Рассела. Посев производят следующим образом: снятую колонию осторожно, не задевая края пробирки, вносят в конденсационную жидкость, затем штрихами засевают всю скошенную поверхность среды и делают укол в глубину столбика для выявления газообразования. Укол следует производить в центр агарового столбика.
Пробирки с посевами ставят в термостат. Если исследуемый материал был посеян на среду обогащения, то через 18-24 ч производят высев со среды обогащения на чашки с дифференциальными средами. Дальнейшее исследование ведут по общей схеме.
Таблица 32. Рост сальмонеллна дифференциально-диагностических средах
Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/
1 (На месте снятых колоний остается черный след (изменяется цвет среды).)
Третий день исследования
Вынимают пробирки с посевами из термостата и просматривают характер роста.
Всостав комбинированных сред входят лактоза, глюкоза, иногда мочевина
ииндикатор. Расщепление глюкозы происходит только в условиях анаэробиоза. Поэтому скошенная поверхность среды при расщеплении глюкозы не изменяется, а столбик окрашивается в цвет, соответствующий индикатору. Бактерии, расщепляющие лактозу и мочевину, изменяют цвет всей среды.
Есливыделенныекультурысбраживаютлактозу илирасщепляютмочевину, меняя цвет всей среды, то они не являются сальмонеллами и можно дать отрицательный ответ.
Культуру, расщепляющую только глюкозу, подвергают дальнейшему изучению: делают мазки, окрашивают их по Граму и микроскопируют. При наличии в мазках грамотрицательных палочек изучают их подвижность и ферментативные свойства.
Подвижность можно определить в висячей капле или в раздавленной капле, а также по характеру роста в полужидкой среде Гисса или в 0,2% агаре. При наличии подвижности при посеве уколом рост на среде диффузный, среда мутнеет.
Для выявления ферментативной активности производят посев на среды Гисса, МПБ, пептонную воду. В пробирки с последними средами опускают (под пробку) индикаторные бумажки для определения индола и сероводорода. Делают также посев на лакмусовое молоко.
Четвертый день исследования
Учитывают биохимическую активность по результату ферментации углеводных и других сред (см. табл. 33).
Таблица 33. Ферментативные свойства сальмонелл
Примечание. к - образование кислоты; кг - образование кислоты и газа; щ - щелочение; + наличие свойства; - отсутствие свойства.
Определив морфологические, культуральные и ферментативные свойства выделенной культуры, необходимо провести анализ антигенной структуры
(табл. 34).
Таблица 34. Сокращенная схема антигенной структуры сальмонелл (по Кауфману - Уайту)
Серологическую идентификацию сальмонелл начинают с реакции агглютинации на стекле с поливалентной О-сывороткой А, В, С, D, Е. При
Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/
отсутствииагглютинациивыделеннуюкультуру испытываютсполивалентной О-сывороткой к редким группам сальмонелл. При положительной реакции с одной из сывороток культуру испытывают с каждой О-сывороткой, входящей в состав поливалентной, для определения О-серогруппы. Установив принадлежность культуры к О-группе, определяют ее Н-антигены с сыворотками первой, а затем второй фазы (табл. 35).
Таблица 35. Антигенная структура возбудителей брюшного тифа и паратифов
Культуру сальмонелл тифа испытывают также с Vi-сывороткой. Возбудителибрюшного тифа,содержащиеVi-антиген,испытываютVi-фагами (их 86). Определение фаготипа имеет большое эпидемиологическое значение
(см. рис. 43).
Методика фаготипирования. 1-й метод. В чашки Петри наливают 20-25 мл агара и подсушивают с открытыми крышками в термостате. Дно чашки делят на секторы. На каждом секторе пишут название фага. Изучают 4-6- часовую бульонную культуру, так как она содержит больше Vi-антигена. На поверхность агара наносят 8-10 капель бульонной культуры и стеклянным шпателемрастираютеепоповерхностиагара.Чашкиспосевамиподсушивают с открытыми крышками в термостате. На каждый сектор наносят каплю соответствующего типового фага. После подсыхания капель чашки ставят в термостат на 18-24 ч. Результат учитывают невооруженным глазом или с помощью лупы через дно чашки.
Наличие лизиса культуры одним или несколькими типовыми фагами позволяет определить принадлежность выделенного штамма к определенному фаготипу.
2-й метод. На питательную среду культуру наносят каплями. На каждую каплю после высыхания культуры в термостате наносят каплю типового фага. Ставят в термостат.
Степень лизиса выражают по четырехкрестной системе.
Контрольные вопросы
1. Какой материал исследуют при брюшном тифе, паратифах и токсикоинфекциях?
2.В каком периоде заболевания используют метод выделения гемокультуры?
3.В каком периоде заболевания брюшным тифом и паратифами исследуют испражнения и мочу?
4.На какие дифференциально-диагностические среды производят посев исследуемого материала?
5.Какие среды используют для накопления сальмонелл?
6.Что определяют монорецепторными О-сыворотками и что монорецепторными Н-сыворотками?
Задание
1.Изучите по табл. 32 характер роста сальмонелл на дифференциальных средах. Посмотрите у преподавателя чашки с посевом сальмонелл тифа на средах Эндо, Плоскирева, висмут-сульфитном агаре. Зарисуйте колонии цветными карандашами и покажите преподавателю.
2.Возьмите у преподавателя культуры сальмонелл, О- и Н-монорепторные сыворотки. Поставьте реакцию агглютинации на стекле. Учтите реакцию и покажите преподавателю.
Задача
Выделенная культура дала положительную реакцию агглютинации с О- сывороткой 4. С какими Н-сыворотками надо поставить реакцию агглютинации, если Вы думаете, что это культура сальмонелл паратифа В?
Серологическая диагностика брюшноготифа и паратифов
Реакция Видаля. Со второй недели заболевания в крови больных накапливаются антитела против возбудителя инфекции. Для их выявления исследуют сыворотку крови больного в реакции агглютинации. В качестве антигена используют убитые культуры сальмонелл - диагностикумы.
Для постановки реакции Видаля используют сыворотку больного, набор диагностикумов, изотонический раствор натрия хлорида.
Кровь (2-3 мл) из мякоти пальца или локтевой вены собирают в стерильную пробирку и доставляют в лабораторию. В лаборатории пробирку ставят в термостат на 20-30 мин для образования сгустка, затем пастеровской пипеткой обводят сгусток, чтобы отделить от стенки пробирки, и ставят на 30-40 мин на холод. Отделившуюся сыворотку отсасывают и используют для постановки
Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/
реакции агглютинации с диагностикумами из сальмонелл тифа и паратифов. Для получения сыворотки кровь можно отцентрифугировать.
При возникновении инфекционного процесса - брюшного тифа или паратифов - в организме вырабатываются О- и Н-антитела к одноименным антигенам возбудителя.
О-антитела появляются первыми и исчезают довольно быстро. Н-антитела сохраняются долго. То же самое происходит и при вакцинации, поэтому положительная реакция Видаля с О- и Н-антигенами свидетельствует о наличии заболевания, а реакция только с Н-антигенами может быть и у переболевших (анамнестическая реакция), и у привитых (прививочная). Исходя из этого, реакцию Видаля ставят раздельно с О- и Н-антигенами (диагностикумы).
Так как клинически брюшной тиф и паратифы А и В сходны, то для выявления природы заболевания сыворотку больного испытывают одновременно с диагностикумами из сальмонелл тифа и паратифа А и В.
Реакцию Видаля широко используют, так как она проста и не требует специальных условий.
Поставить реакцию можно двумя способами: капельным и объемным (см. главу 12). В практике чаще используют объемный метод. При постановке линейной реакции агглютинации количество рядов должно соответствовать количеству антигенов (диагностикумы). Возбудителем заболевания считают микроорганизм, диагностикум из которого агглютинировался сывороткой больного. Иногда отмечают групповую агглютинацию, так как возбудители тифа и паратифов обладают общими групповыми антигенами. В этом случае положительным считают результат реакции в ряду, в котором агглютинацию отмечают в большем разведении сыворотки (табл. 36).
Таблица 36. Возможный результат реакции агглютинации
Примечание. В практике реакцию Видаля ставят с четырьмя диагностикумами: брюшного тифа "О" и "Н", а паратифов А и В - с диагностикумами "ОН".
Если агглютинация возникает только в небольших разведениях сыворотки- 1:100, 1:200, то для отличия реакции при заболевании от прививочной или анамнестической прибегают к повторной постановке реакции агглютинации через 5-7 дней. У больного титр антител повышается, а у привитого или переболевшего не изменяется. Таким образом, нарастание титра антител в сыворотке крови служит показателем заболевания.
В ответ на внедрение в организм возбудителей брюшного тифа, обладающих Vi-антигеном, в крови больного появляются Vi-агглютинины. Их определяют со 2-й недели болезни, но титр их обычно не превышает 1:10. Обнаружение Vi-антител связывают с наличием в организме возбудителей брюшного тифа, поэтому определение этих антител имеет большое эпидемиологическое значение, так как позволяет выявить бактерионосителей.
Реакция Vi-гемагглютинации. Это наиболее чувствительная реакция для выявления антител.
Принцип реакции заключается в том, что эритроциты человека (I группы) или барана после специальной обработки могут адсорбировать на своей поверхности Vi-антиген и приобретают при этом способность агглютиниповаться соответствующими Vi-антителами.
Эритроциты с адсорбированными на поверхности антигенами называют эритроцитарными диагностикумами.
Для постановки реакции Vi-гемагглютинации берут:
1) сыворотку крови больного (1-2 мл); 2) эритроцитарный сальмонеллезный Vi-диагностикум; З) Vi-сыворотку; 4) О-сыворотку; 5) изотонический раствор натрия хлорида.
Реакцию ставят в агглютинационных пробирках или в пластмассовых пластинах с лунками.
Кровь у больного берут так же, как для реакции Видаля. Получают сыворотку. Из сыворотки готовят двукратные серийные разведения, начиная с
1:10 до 1:160.
По 0,5 мл каждого разведения вносят в лунку и прибавляют по 0,25 мл эритроцитарного диагностикума. Реакцию ставят в объеме 0,75 мл.
Контролем служат: 1) стандартная агглютинирующая монорецепторная сыворотка + диагностикум - реакция должна быть положительной до титра сыворотки; 2) диагностикум в изотоническом растворе натрия хлорида (контроль) - реакция должна быть отрицательной.
Содержимое лунок тщательно перемешивают, ставят в термостат на 2 ч и оставляют при комнатной температуре до следующего дня (на 18-24 ч).
Рекомендовано к изучению разделом по микробиологии сайта https://meduniver.com/
Учет начинают с контроля. Реакцию оценивают в зависимости от степени агглютинации диагностикума.
Результаты учитывают по четырехкрестной системе:
++++ эритроциты полностью агглютинированыосадок на дне лунки в виде "зонтика";
+++ "зонтик" меньше, не все эритроциты агглютинировались;
++ "зонтик" маленький, на дне лунки имеется осадок из неагглютинированных эритроцитов;
- реакция отрицательная; эритроциты не агглютинировались и осели на дно лунки в виде пуговки.
Контрольные вопросы
1.В какой период заболевания ставят реакцию Видаля?
2.Какие ингредиенты необходимы для постановки реакции Видаля?
3.С какими диагностикумами ставят реакцию Видаля?
4.Какая из серологических реакций является самой чувствительной при диагностике тифопаратифозных инфекций?
5.Каким диагностикумом пользуются при постановке реакции Viгемагглютинации?
6.Какой сывороткой определяют наличие Vi-антигена у исследуемой культуры?
7.Какое значение имеет определение Vi-фаготипа?
Задание
Возьмите у преподавателя О- и Н-диагностикумы из сальмонелл тифа, паратифа А и паратифа В и сыворотку больного. Поставьте реакцию Видаля.
Питательные среды
Среды ЭМС, Плоскирева, висмут-сульфитный агар выпускаются медицинской промышленностью в виде сухого порошка. Их готовят согласно указаниям на этикетке: отвешивают определенное количество порошка, наливают соответствующее количество воды, кипятят и разливают в стерильные чашки Петри.