- •Введение
- •I. Биофизика
- •Лабораторная работа №1 Изучение энергии активации биологических процессов на примере работы Na-, к-атф-азы
- •Влияние температуры на ферментативную активность Na-, к-атф-азы.
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 2 Определение концентрации пигментов в растениях по спектрам поглощения
- •Упражнение 1. Определение концентрации хлорофиллов a и b в экстрактах из зеленых листьев
- •Упражнение 2. Изучение зависимости поглощения от концентрации вещества
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №3 Влияние температуры на скорость биологических реакций
- •Упражнение 1. Определение температурного коэффициента гемолиза эритроцитов крови человека
- •Упражнение 2. Влияние концентрации кислоты на скорость гемолиза
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №4 Влияние уф-облучениия на светопропускание раствора эритроцитов
- •Упражнение 1. Исследование гемолиза эритроцитов под действием освещения в присутствии красителя
- •Упражнение 2. Исследование зависимости гемолиза от времени освещения
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №5 Физико-химические методы в биологии Определение вязкости растворов
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №6 Определение проницаемости кожи лягушки для ионов
- •Упражнение 1. Изучение динамики распределения ионов
- •Упражнение 2. Влияние ингибиторов и блокаторов на проницаемость кожи лягушки
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 7 Изучение электропроводности крови и эритроцитов
- •Упражнение 1. Изучение электропроводности цельной крови, эритроцитов и плазмы
- •Упражнение 2. Изучение влияния гемолиза на электропроводность эритроцитов
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 8 Регистрация потенциала действия нерва лягушки при различных температурах
- •Изготовление препарата изолированного седалищного нерва лягушки
- •Упражнение 1. Наблюдение пд нерва лягушки и расчет скорости проведения возбуждения по нерву
- •Упражнение 2. Расчет энергии активации процесса проведения возбуждения в нерве
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа № 9 Измерение осмотической устойчивости эритроцитов
- •Упражнение 1. Изучение гемолиза с помощью колориметра
- •Упражнение 2. Измерение осмотической устойчивости эритроцитов
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •Лабораторная работа №10 Определение концентрации сахара в растворе поляриметром
- •Упражнение 1. Определение удельного вращения сахара и глюкозы
- •Упражнение 2. Определение концентрации раствора сахара
- •Упражнение 3. Исследование зависимости удельного вращения глюкозы от длины волны
- •Контрольные вопросы:
- •Литература:
- •II. Физиология
- •Лабораторная работа №1 Приготовление нервно-мышечного препарата
- •Лабораторная работа №2 Определение значения реобазы и хронаксии
- •Лабораторная работа №3 Регистрация мышечных сокращений
- •Лабораторная работа №4 Оптимум и пессимум частоты и силы раздражения
- •Лабораторная работа №5 Строение мышечной ткани
- •Лабораторная работа №6 Определение степени развития мышц плеча у человека
- •Лабораторная работа №7 Сила мышц и силовая выносливость
- •Лабораторная работа №8 Изучение утомления скелетных мышц
- •Лабораторная работа №9 Регистрация и анализ электрокардиограммы человека
- •Контрольные вопросы:
Контрольные вопросы:
1. Краткая характеристика потенциалов живой клетки.
2. Потенциал покоя и условия его возникновения.
3. Потенциал действия.
4. Факторы, определяющие скорость проведения потенциала действия.
Литература:
1.Биофизика: Учеб./В.В. Ревин, Г.В. Максимов, О.Р. Кольс. – Саранск: Изд-во Мордов. ун-та, 2002. – 156 с.
2.Рубин А.Б. Биофизика: в 2 т., учеб. для вузов. 2-е изд., испр. И доп. М.: Книжный дом «Университет», 2000. – 486 с.
3. Артюхов В.Г., Ковалева Т.А., Шмелев В.П. Биофизика: Учеб. пособие. Воронеж: Изд-во Воронеж. Ун-та, 1994. – 336 с.
4.Тарусов Б.Н., Кольс О.Р. Биофизика. Москва: изд-во «Высшая школа», 1968. – 468 с.
5. Волькенштейн М.В. Биофизика: Учебное пособие. – 3-е изд. стер. Изд-во: Лань, 2008. – 608 с.
6. Джаксон М.Б. Молекулярная и клеточная биофизика. М.: Мир, Бином. Лаборатория знаний, 2009. - 551 с.
-
7. Антонов В.Ф., Черныш А.М. и др. Биофизика. Учебник для ВУЗов. Изд-во: Владос, 2000. – 287 с.
Лабораторная работа № 9 Измерение осмотической устойчивости эритроцитов
Цель работы: изучение метода светорассеяния и определение осмотической устойчивости эритроцитов.
Приборы и принадлежности:
фотоэлектрический колориметр (ФЭК), пипетка, микропипетка, растворы NаСl различной концентрации, суспензия эритроцитов в фосфатном буфере.
Эритроциты - клетки крови, содержащие гемоглобин, представляют собой двояковогнутые дискоциты. При помещении эритроцита в гипотонический раствор поваренной соли NаСl на его мембране создается градиент осмотического давления, под действием которого вода проникает внутрь клетки. В результате этого эритроцит «разбухает», принимает форму шара. Дальнейшее увеличение объема приводит к нарушению целостности мембраны и разрушению эритроцита - лизису. При этом содержащийся в эритроцитах гемоглобин выходит в окружающую среду. Описанный процесс называется осмотическим гемолизом.
Разрушение каждого отдельного эритроцита имеет вероятностный характер, так как зависит от многих случайных факторов: состояния мембраны, возраста клетки, температуры и т. д. Поэтому для количественной характеристики процесса гемолиза вводят статистический параметр - осмотическую устойчивость эритроцитов (С0,5). Осмотической устойчивостью эритроцитов называется концентрация соли NаСl, при которой лизирует 50% клеток, содержащихся в суспензии.
Для определения осмотической устойчивости в данной работе используется турбидиметрический метод, который основан на явлении светорассеяния (рис.4).
Рис.4. Схема установки
Свет от источника 1 проходит через светофильтр 2 и попадает в кювету 3, содержащую суспензию эритроцитов, где происходит его рассеяние и поглощение.
Коэффициент пропускания Т равен выраженному в процентах отношению интенсивности I света, вышедшего из кюветы, к интенсивности I0 света, входящего в нее
T=
Чем больше нелизированных клеток содержится в суспензии, тем больше интенсивность рассеянного света и, следовательно, меньше интенсивность света, проходящего через кювету, и коэффициент пропускания. При увеличении количества разрушенных эритроцитов рассеяние света уменьшается, а коэффициент пропускания увеличивается. Таким образом, по степени мутности суспензии и величине коэффициента пропускания можно оценить количество лизированных эритроцитов и определить их осмотическую устойчивость.
Для определения осмотической устойчивости строят график зависимости коэффициента пропускания Т от концентрации С раствора NаСl в суспензии эритроцитов (рис.5). Справа от графика проводят еще одну вертикальную ось, на которой откладывают величину
Р= , где т — число нелизированных эритроцитов, содержащихся в суспензии, п — общее число эритроцитов в данной суспензии, Р — вероятность того, что при данной концентрации раствора NаСl не лизировало определенное количество эритроцитов. Считая, что при С = 0 (дистиллированная вода) лизируют все клетки и Р = О, а при С = 0,9% (изотонический раствор) все эритроциты целы и Р = 1, можно проградуировать ось Р и, отложив на ней значение Р = 0,5, определить по графику соответствующую этому значению концентрацию раствора NаСl, т. е. осмотическую устойчивость эритроцитов С 0,5.
Рис.5. Зависимость коэффициента пропускания Т от концентрации С раствора NаСl
Для уменьшения влияния поглощения света измерения производятся при красном светофильтре 670 нм, который соответствует минимуму поглощения гемоглобина