2.8. Патогенность для животных

Патогенны для многих животных (более 300 видов) – грызунов, волков, верблюдов, домашнего скота.

3. Патогенез и эпидемиология

Чума – острая особо опасная зооантропонозная инфекция с природной очаговостью, резервуар инфекции – грызуны, волки, верблюды, домашний скот, переносчики – блохи (трансмиссивный путь), другие пути передачи: контактный, алиментарный, воздушно-капельный, от человека к человеку передается воздушно-капельным путем только от больных легочной формой. Патогенез и клинические формы чумы зависят от входных ворот инфекции: кожа, слизистые оболочки глаза, ротоглотки, дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта. Однако, независимо от входных ворот инфекции, все формы (кожная, бубонная, кожно-бубонная формы (контактный путь), первичная легочная (аэрозольный путь), вторичная легочная (гематогенное осложнение), первичная септическая, вторичная септическая имеют выраженную тенденцию к генерализации процесса и развитию сепсиса. Происходит адгезия возбудителя (капсула, поверхностные структуры клеточной стенки) на эпителиальных клетках разных органов и тканей, затем инвазия и агрессия (подавление фагоцитарной активности макрофагов за счет антигенов, ферментов и токсинов), проникновение в регионарные лимфоузлы с током лимфы, нарушение активации комплемента, появление геморрагий и некрозов в лимфоузлах, а затем занос возбудителей током крови в печень и селезенку и дальнейшая генерализация процесса.

4. Иммунитет

Постинфекционный иммунитет напряженный, практически пожизненный, связан с гуморальными (антителами) и клеточными (фагоцитоз) факторами; поствакцинальный – 6 – 12 мес. Однако известны два случая повторного заражения через 4 и 6 лет после перенесенного заболевания.

5. Лабораторная диагностика(на диагностику отводится 36 часов, как для особо опасной инфекции)

Исследуемый материал:

Зависит от формы инфекции (при бубонной – пунктат из бубона, легочной – мокрота, септической – кровь).

Методы диагностики:

1. Экспресс-диагностика

ПЦР, РИФ, РПГА, РНТФ.

2. Микроскопический метод

Окраска исследуемого материала метиленовым синим. Обнаружение в мазках биполярно окрашенных палочек дает основание для постановки предварительного диагноза.

3. Бактериологический метод

Является основным. Возбудитель неприхотлив, растет на простых питательных средах. Культивирование проводится при 28°С (психрофил).

Iэтап: посев исследуемого материала на простые питательные среды:

МПБ – пленка со свисающими нитями, по типу сталактитов, со временем обрываются, образуя рыхлый осадок;

МПА – мелкие блестящие колонии по типу битого стекла, а затем R-формы колоний, плоские, с неровными краями, напоминающими кружевной батистовый платочек;

агар Мартена (бульон из свиных желудков и 1,5 – 2% агар-агара);

агар Хоттингера (бульон из свиных поджелудочных желез и 1,5 – 2% агар-агара).

IIэтап: изучение выросших колоний по культуральным, морфологическим и тинкториальным свойствам; пересев материала колоний на скошенный агар для выделения чистой культуры.

IIIэтап: идентификация чистой культуры:

• по биохимическим свойствам: определение сахаролитических и протеолитических ферментов (пестрый ряд – среды Гисса), тест на уреазу (не расщепляет мочевину);

• по антигенным свойствам: РА;

• по фаголизабельным свойствам: определение чувствительности к чумному бактериофагу.

4. Биологический метод

Заражение лабораторных животных (чаще морских свинок и мышей) исследуемым материалом, затем воспроизводится микроскопический (мазки-отпечатки с пораженных органов) и бактериологический методы диагностики.

5. Серологический метод

Проводится ретроспективно для подтверждения диагноза (антитела появляются к 5 – 7 суткам). Развернутая РА, развернутая РПГА.