Добавил:
kiopkiopkiop18@yandex.ru Вовсе не секретарь, но почту проверяю Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:

2 курс / Гистология / Введение_в_иммуноцитохимию_Полак_Дж_,_Ван_Норден_С_

.pdf
Скачиваний:
0
Добавлен:
23.03.2024
Размер:
12.42 Mб
Скачать

Приложение

61

ЗФ Ф Р ) при 37°С. Перед употреблением раствора pH доводят до 7,8 щелочью (N aO H ). Длительность протеазной обработки

определяю т эмпирически

(см. рис. 2).

 

П.6. Как сохранить срезы прикрепленными

 

к стеклам

 

 

 

Срезы покрывают

поли-Ь-лизином (мол.

масса 150 000,

S igm a). Это особенно

важно в тех случаях,

когда предстоит

обработка протеазой,

а

такж е при работе с

предварительно

фиксированными криостатными срезами «трудной» ткани.

Н а край чистого стекла осторожно! наносят очень м алень­

кую каплю (около 10

мкл) поли-Ь-лизина (1

мг/мл) и равно­

мерно растираю т ее по

всему стеклу концом

другого стекла

так же, как при приготовлении препарата пленки крови. Слой должен быть ровным и настолько тонким, чтобы были видны цветные полоски, возникающие вследствие интерференции света. Стекло высыхает очень быстро. Партию стекол можно приготовить по крайней мере за неделю до использования. Покрытые стекла нужно пометить, так как тонкая пленка не­ зам етна. Раствор поли-Ь-лизина хранят замороженным.

П.7. Проявление пероксидазы без использования ДАБ

Метод Хэнкера (Hanker et al., 1977)

Реагент Хэнкера—Йейтса1

75

мг

0,1

М трисовый буфер, pH 76,

100

мл

(или

ЗФФР) 30% Н 20 2

100 мкл

Срезы инкубируют до образования темного сине-коричне- вого продукта реакции. Если требуется, обрабатываю т осми­ ем. Д окраш иваю т нейтральным красным или кармалем . П ро­ водят обезвоживание, просветляют и заключают.

Проявление 4-хлор-1 нафтолом (N akane, 1968)

К 4-хлор-1-нафтолу,

30—40

мг

растворенному в 100%-номспирте,

0 ,2 —0,5

мл

при помешивании добавляют 0,05 М

 

 

трисовый буфер, pH 7,6 (или ЗФФР)

100 мл

 

затем 30% Н 20 2

50— 100 мкл

П еред употреблением необходимо удалить белый осадок фильтрованием.

1 Реагент Хэнкера — Иейтса: одна часть /г-фенилендиамина на две части пирокатехола (производят фирмы Polysciences и Fluka).

62Приложение

Для того чтобы усилить окрашивание, инкубационную смесь нужно нагреть до 50°С, быстро профильтровать черезгрубый бумажный фильтр и инкубировать срезы в горячем фильтрате (Р. Буффа, личное сообщение).

Срезы докраш ивают кармалем . Продукт реакции (темно­

синий)

растворим в

спиртах, поэтому срезы следует заклю ­

чать в

водные смеси

(см. фото 2).

Аминоэтилкарбазольный (АЭ К ) метод (Graham et al., 1965)

Срезы замачиваю т в 0,05

М

ацетатном

буфере pH

5,0, за ­

тем инкубируют в растворе АЭК:

 

 

 

 

 

Концентрированный раствор

АЭК1

0,5

мл

 

0,05 М ацетатный буфер,

pH

5 ,0

9,5

мл

 

30%-ный

раствор Н 20 2

 

 

 

10 мкл

 

Непосредственно после фильтрации смесь наносят на срез,

и инкубируют

5— 10 мин. Продукт

реакции красный.

Срезы

докраш иваю т

гематоксилином.

Продукт

реакции растворим

в спиртах, поэтому срезы промывают подкисленной водой к

заключаю т в водную смесь

(см. фото 3).

 

 

П.8. Примечания

 

 

 

 

1. Во всех случаях

ЗФ Ф Р можно заменять

физиологическим:

раствором, забуференным трисом, 0,05 М pH

7,6.

2. Хранение ДАБ. Д ля того

чтобы избеж ать

нежелательного*

контакта с частицами ДА Б

в виде пыли, можно приготовить-

концентрированный

раствор

(1 г вещества

на

40 мл воды) и

разделить его на

порции, содержащ ие по

0,025 г. Раствор1

можно заморозить; одной порции достаточно для приготовле­ ния 100 мл инкубационной смеси.

3.Чтобы очистить стеклянную посуду и т. п. от остатков ДАБ,.

еенужно сполоснуть небольшим объемом гипохлорита нат­ рия (домашнего отбеливателя), в результате чего ДА Б окис­ ляется.

П.9. Окрашивание при помощи антител, меченных золотом (непрямой метод),

после заливки образца для электронной микроскопии

Подготовка ткани

1. Проведите фиксацию глутаральдегидом или смесью глутаральдегида с формалином 2 ч при 4°С с дополнительной

1 Концентрированный раствор АЭК: 0,4%-ный З-амино-9-этилкарбазол’ в диметилформамиде.

Приложение

63

фиксацией тетраокисью осмия или без нее (в зависимости от исследуемого антигена).

2. Проведите обезвоживание спиртами и окисью пропилена, залейте в эпоксидную смолу.

3. Н ареж ьте срезы толщиной 60— 100 нм, поместите их на чистые, ничем не покрытые никелевые или золотые сеточки, 200—300 мешей. Сушите в течение ночи.

Иммуноцитохимия (см. рис. 15).

 

 

 

Инкубацию удобно вести

в

многоячеечных

планшетах.

В каждую ячейку

планш ета

умещается 15

мкл раствора.

Предпочтительно

профильтровать

все буферы

и

растворы,

используемые для промывок через фильтр с диаметром пор *0,45 нм. Сеточки лучше всего промывать каждую отдельно из шприца с микрофильтром; если окраш ивают много сеточек одновременно, их помещают в специальный штатив, который

устанавливаю т в стакане с буфером промывки

так,

чтобы

было возможно слабое перемешивание. Во

время

окраш ива­

ния сеточки

нельзя осушать.

 

 

 

 

1. Обработайте срезы 10%-ным раствором

перекиси

водоро­

да, чтобы сделать смолу проницаемой.

 

 

 

2.

Промойте

профильтрованной

дистиллированной водой.

3.

Удалите

избыток жидкости

с сеточки и

поместите ее на

30 мин в каплю нормальной сыворотки животного, донора вторых антител, разведенной 1/30 ЗФ Ф Р, содержащим 0,1% бычьего сывороточного альбумина (БСА) и 0,01% азида на­ трия.

4. Удалите избыток нормальной сыворотки с сеточки и по­

местите ее в раствор

первых

антител,

приготовленных

на

ЗФ Ф Р

с 0,1%

БСА

и 0,1% азида натрия,

на 1 ч, если инку­

бация

ведется

при

комнатной

температуре, или на

48 ч

при

4°С. Оптимальное разведение

антител определяют

экспери­

ментально-.

 

 

 

 

 

 

 

5. Тщательно

промойте

0,05 М трисовым

буфером,

pH

7,2.

'6. Тщательно промойте тремя порциями 0,05 М трисового бу­ фера pH 7,2, содержащ его 0,2% БСА. В каждой порции буфе­ ра инкубируйте 15 мин с перемешиванием.

7. Поместите сеточку в каплю 0,05 М трисового буфера, pH 8,2,

содержащ его 1 % БСА на пять минут.

 

8. Приготовьте раствор вторых антител, меченных

золотом

(например, козьих антител к IgG

кролика) в 0,05

М трисо-

вом буфере, pH 8,2, содержащем

1 % БСА, и путем центри­

фугирования в течение 20 мин при

2000 g удалите микроагре­

гаты частиц золота, которые образуются при хранении. Оп­ тимальное разведение антител определяют экспериментально.

64 Приложение

9. Поместите сеточку в каплю надосадочной жидкости и ин­ кубируйте 1 ч при комнатной температуре.

10. Тщательно промойте большим объемом 0,05 М трисового

буфера, pH 7,2, содержащ его

0,2% БСА, затем буфером

без^

БСА и дистиллированной водой.

 

11. Осушите сеточки бумагой,

адсорбирующей жидкость.

Д о ­

красьте уранилацетатом или цитратом свинца, как для обыч­ ной электронной микроскопии.

символы

Fc-фрагмент

Fabфрагмент

?(два идентичных антиген* связывающих участка)

Молекула иммуноглобулина

Кролик Коза Мышь Овца

•Символы на Fc-ферменте молекулы иммуноглобулина указывают вид жиiBOTHoro, в котором были получены антитела

Специфические (кроличьи) антитела к Д

Антиген

Срез ткани

Символы на Fc-фрагменте молекулы антител указывают на их специфич­ ность, т. е. субстрат, с которым связываются антитела

Гидрофобное или

Меченые антитела,

электростатическое

связавшиеся с

связывание иммуно­

Fc-рецепторами

глобулинов с тканью

в ткани

Неспецифические реакции

66 Символы

Метки

Флуорохром (или другая метка)

ОПероксидаза

Нерастворимый конечный продукт пероксидазной реакции (с Н20 2 и ДАБ и т. п.)

Щелочная фосфтаза

Нерастворимый конечный продукт реакции со щелочной фосфатазой (например, с нафтолом и солью диазония)

Гаптен (в качестве метки)

Частицы коллоидного золота

уЗерна серебра

ЛИТЕРАТУРА

A vram eas

S., Uriel J.

(1966).

Methode

de m arquage

d’antigenes et d’anti-

corps

avec des

enzymes

et

son

application

en

immunodiffusion,

C. R. Acad. Sci., Paris, Ser. D, 262, 2543—2545.

 

Immunocytochemistry

Baskin E. G., ErlancLsen S. L.,

Parsons J. A. (1979).

with osmium-fixed tissue.

I.

Light

microscope

localizations

of grow th

hormone and prolactin with the unlabeied antibody enzyme

method,

J.

Histochem. Cytochem., 27, 867—872.

 

 

 

 

 

 

-Beauvillain J. C., Tramu G.

(1980). Immunocytochemical

dem onstration

of

LH-RA, som atostatin,

and ACTH-like peptide

in

esmium-postfixed, re­

sin-embedded median

eminence, J. Histochem. Cytochem., 28,

1014— 1017.

Bendayan M. (1982). Doubie immunocytochemical labeling applying the pro­

tein

A — gold

technique,

J.

Histochem.

 

Cytochem.,

30,

81—85.

 

la­

Bendayan М., Zollinger M.

(1982). Protein

A — gold

immunocytochemical

beling

on

osmicated

tissues, J. Histochem. Cytochem., 30,

576.

 

 

 

..Bendayan М., Zollinger M.

(1983).

U ltrastructural

localization

of

antigenic

sites on osmium-fixed

 

tissue

applying

the

protein

A — gold

technique,

J. Histochem. Cytochem., 31, 101 — 109.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Berod A.,

H artm an

В. K.,

 

Pujol J. F. (1981). Importence

of

fixation in

im-

munohistochemistry,

J. Histochem. Cytochem., 29, 844—850.

A

new

uni­

Bishop A., Polak J.

 

М.,

Bloom S. R., Pearse

A. G.

E.

(1978).

versal technique for the immunocytochemical localisation of peptidergic

innervation, J. Endocrinol., 77, 25P—26P.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Bullock

G.,

Petrusz

 

P.

(ed.)

(1983). Techniques

in

 

immunocytochemistry,

Vol. I, Academic Press, London.

 

 

 

 

 

in

 

immunocytochemistry,

Bullock

G.,

Petrusz

 

P.

(ed.)

(1983). Techniques

 

Vol. II, Academic Press, London.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Bu’Lock

A.,

VaillantC., Dockray G. J. (1982). Immunohistochemical localisa­

tion

of

peptidergic nerve cell

bodies

in

the

gut

following

rational im pro­

vements to fixation with parabenzoquinone, Reg. Peptides, 3, 67.

 

 

Childs G.,

Unabia G.

(1982). Application of the

avidin — b io tin — peroxidase

complex

 

(ABC)

 

method to the light microscopic localization of pituitary

hormones, J. Histochem. Cytochem., 30, 713—716.

 

 

 

 

 

 

 

 

Cole G., Polak J. M. (1984). In preparation.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Colman

D. R S c a l i a

F.,

Cabrales

E.

(1976). Light

and

electron

microscopic

observations on

 

the anterograde transport of horseradish

peroxidase

in

the

optic

pathw ay in

the mouse and rat, Brain

Res., 102,

156— 163.

 

 

<Coons A.

FI.,

Creech

 

H. J., Jones R. N. (1941). Immunological properties of

an antibody containing a fruorescent group, Proc. Soc. exp.

Biol. Med.,

47,

200—202.

 

М.

H. (1950). Localization of antigen

in

 

'

cells,

Coons A. H., Kaplan

tissue

J. exp. Med., 91,

 

1— 13.

 

Connolly

J. M.

(1955). Studies

on

antibody

pro­

Coons A. FI., Leduc

 

E. H.,

 

duction.

I. A method

 

for

the

histochemical

dem onstratio

of

specific

an ­

tibody and ist application to a study of the hyperimmune rabbit, J. exp,

 

Med.,

102, 49—59.

 

 

and testing antibodies. In: Immunocytochemistry,

De M ey J.

(1983a). Raising

practical

 

applications

in

pathology

and

biology

(ed. J.

M.

Polak

 

and

S. Van Noorden), pp.

43—52,

John

W right

and

Sons,

Bristol.

 

 

 

68

Литература

 

 

 

De

M ey J. (1983b). Colloidal

gold prodes in

immunocytochemistryfl In: Im ­

 

munocytochemistry, practical applications

in pathology

and biology (ed.

 

J. M. Polak and S. Van

N oorden), pp. 82— 112, John

W right arid Sons*

 

Bristol.

 

 

 

De M ey J., M oeremans М.,

Gevens G., N uydens R., De Brabander

M.

(1981).

High

resolution

light

and

electron microscopic

localization

of

tubulin

with

the IGS

(Immunogold Staining) method,

Cell Biol. int.

Rep., 5r

889—899.

 

 

 

0 ., Terenius L. (1976). Immunohistochemical

Elde R H o k f e l t

Т., Johansson

studies using

antibodies to

leucine — enkephalin:

initial observations on

the nervous system of the rat, Neuroscience, 1, 349—351.

for

the elec­

Faulk W. R.,

Taylor G. M. (1971). An immunocolloid method

tron microscope,

Immunochemistry, 8,

1081— 1083.

/. M.

(1982). Q uan­

Ferri G.-L. Harris A.,

W right N. A.,

Bloom

S. R., Polak

tification

of endocrine cells

in

whole

intestinal

crypts

and villi,

H isto­

chem. J.,

14, 692—695.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Finley J.

C.

W., Petrusz P. (1982). The use of proteolytic

enzymes for im ­

proved localization of tissue antigens with immunocytochemistry. In: Te­

chniques

in immunocytochemistry

(ed. G.

R. Bullock

and

P.

Petrusz) r

Vol. 1, pp. 239—249, Academic Press, London.

 

 

 

receptor sites

Goldsmith

P. C., Cronin

M. J W e i n e r

R. L

(1979). Dopamine

in the anterior pituitary, J. Histochem. Cytochem., 27,

1205— 1207.

 

Graham R. C.,

K am ov sky M. J.

(1966).

The

early

stages

of

absorption of

injected horseradish peroxidase in the proximal tubules of mouse kidney:

ultrastructural cytochemistry

by

a

new

technique,

J.

Histochem.

Cyto­

chem., 14, 291—302.

U., K am ov sky M. J.

(1965).

Cytochemical

demon­

Graham R. G., Ludholm

stration

of peroxidase activity with 3-amino-9-ethylcarbazole, J.

H isto­

chem., 13,

150— 152.

 

 

 

 

 

 

(1981). Sequential use

of the

Си J., de

M ey

J., Moeremans М., Polak J. M.

PAP

and

 

immunogold methods for the light microscopical double stai­

ning of tissue antigens. Its application to the study

of

regulatory

pepti­

des in the

gut, Reg. Peptides,

1, 365—374.

 

 

 

of avidin — biotinr

Guesdon J. L.,

Ternynck Т., A vram eas

S.

(1979). The use

interaction

in immunoenzvmatic techniques, J. Histochem. Cytochem., 27r

1131— 1139.

 

 

С.

B.,

R ustioni A.

(1977). A

new

specific*

Hanker J. S.,

 

Yates P. E., M etz

sensitive

and non-carcinogenic reagent for the

dem onstration

of

horse­

radish peroxidase, Histochem. J., 9, 789—792.

in histopathology: appli­

H eyderman E.

(1979). Immunoperoxidase techniques

cations, methods and controls, J. clin. Pathol., 32, 971—978.

Holgate C. S., Jackson P., Cowen P. N., Bird С. C. (1983a). Immunogold —

 

silver staining — new method

of im m unostaining with

enhanced

sensiti­

 

vity, J. Histochem. Cytochem., 31, 938—944.

Bird

С.C. (1938b). Sur­

H olgate

C. S., Jackson P., Lauder

I., Cowen P. N.,

 

face membrane staining of immunoglobulins in

paraffin sections of non-

 

H odgkin’s lymphomas using

an immunogold — silver

technique,

J. clin.

 

Pothol.,

36, 742—746.

 

 

cytochemical m ar­

Horisberger M. (1979). Evaluation of colloidal gold as a

 

ker

for

transm ission and scanning electron microscopy, Biol. Cellulaire,

H su

36,

253—258.

(1981). Protein A, avidin and

biotin

inimmunocytoche­

S .-М., Raine L.

H su

m istry, J. Histochem. Cytochem., 29, 1349— 1353.

 

 

 

S .-М., Raine L.,

Fanger H. (1981). Use of avidin — biotin — peroxidase

 

complex

(ABC)

in im munoperoxidase techniques, J.

Histochem.

Cyto­

 

chem., 29, 577—580.

 

diam inobenzidine

(DAB)

Hsu S.-М., Soban E.

(1982). Colour modification of

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Литература

69з

precipitation by metallic ions and ist application to double immunohisto-

chemistry, J. Histochem. Cytochem., 30,

 

1079— 1082.

 

 

 

 

 

Huang

S M i n a s s i a n

H.,

More J. D.

(1976). Application of

immunofluores-

cent staining in paraffin sections

improver

by trypsin

digestion,

Lab.

Invest., 35, 383—391.

 

 

 

 

 

 

 

 

(1983). Improver

sec­

Huang

W. М., Gibson S.,

Facer P., Gu J P o l a k

J. M.

tion adhesion for immunocytochemistry using high molecular

w eight po­

lymers of L-lysine as a slide coating, Histochemistry, 77, 275—279.

 

Hudson

P., Penschow J S h i n e J., Ryan

G., Niall H., Coghlan J.

(1981). H yb­

ridization histochemistry: use of recom binant

DNA

as a

“homing

probe’"

for tissue localization of specific mRNA populations, Endocrinology, 108,.

353—356.

M illeit J. A., Granger

J. M.

 

(1980). Use of

polylysine

coa­

Husain

0 . A. N.,

 

ted slides in the preparation of samples for diagnostic

cytology with

special reference to urine samples, Clin. Pathol., 33, 309—311.

 

 

 

International Agency for Research oil

Cancer

(1972). Some

inorganic

sub­

stances, chlorinated hydrocarbons,

arom atic

amines, N -nitroso compounds-

and

natural

products,

M onograph

1,

pp. 80—86,

M onographs

on

the

Evaluation of the Carcinogenic Risk of

Chemicals

to

Humans,

Lyon,

France.

 

 

 

D., Williams E.

D.

(1981). Use

of monoclonal

Jasani B., W ynford Thomas

antihapten antibodies for immunolocalisation of tissue antigens,

J. clin.

Pathol., 34, 1000— 1002.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Johnson

G. D., Davidson R. S .f McNamee

K.

S., Russell G.,

Goodwin

D.,.

Holborow E. J. (1982). Fading of immunofluorescence during microsco­

py: a study

of the

phenomenon and

its

remedy, J. Immunol.

Methods,

55

231__242

 

 

 

 

G. W. (1980). Attempts

to

quantitate

Kraehenbuhl J. P., Racine L., Griffiths

immunocytochemistry

at

the electron

microscope

level,

Histochem.

J.,

12, 317—332.

Kuhar M. J., Uhl G. R. (1979). Histochemical localization of opiate receptors

and the

enkephalins. In: Neurochemical mechanisms of opiaters and

endorphins

(ed. H. H. Loh

and

D. H. Ross), pp. 53—68, Raen Press,

New York.

 

G.,

Reinherz

E. L S c h l o s s m a n S. F.

(1979). Mono­

Kung P. C.,

Goldstein

clonal antibodies defining distinctive human T cell surface

antigens,

Science, 206,

348—349.

 

 

 

 

 

 

Larsson L A .

(1979). Simultaneous ultrastructural demonstration of multiple

peptides

in

endocrine

cells

by

a

novel immunocytochemical

method,

Nature, 282, 743—745.

 

 

 

 

 

 

Larsson L.-I.

(1980). Problems and pitfalls in immunocytochemistry of gut

peptides. In: G astrointestinal hormones (ed. G. B. Jerzy G lass),

pp. 53—

70, Raven Press, New York.

 

 

 

 

 

Larsson L.-I.

(1981). Peptide immunocytochemistry, Prog. Histochem. Cyto­

chem., 13

(4).

T.

W. (1977). Radioimmunocytochemistry — a novel

Larsson L.-I.,

Schw artz

immunocytochemical

principle, J.

Histochem. Cytochem.,

25, 1140— 1148.

M aclver A. G.,

Mepham B. L. (1982).

Immunoperoxidase

techniques in

human renal

biopsy, Histopathology, 6, 249—267.

 

 

Mason D. Y., Abdulaziz Z., Falini B., Stein H. (1983). Double immunoenzy-

matic labeling. In: Immunocytochemistry,

practical

applications in pa­

thology and biology (ed. J. M. Polak and

S. Van

Noorden),

pp. 113—

128, John

W right and

Sons, Bristol.

 

 

 

Mason D. Y.,

Sam mons

R. E. (1978). Alkaline

phosphatase and

peroxidase-

for double immunoenzymatic labelling of cellular constituents, J. clin.. Pathol., 31, 454—460.

70

Литература

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Mason

 

D. L., Sam m ons

R. E.

(1979). The labeled antigen method

of

immu-

noenzymatic staining, J. Histochem. Cytochem.,

27,

832—840.

 

(1969).

Mason Т. C., Phifer R. F., Spicer

S. S .f Sw allow

R. A., Dreskin R. B.

An im munoglobulin—enzyme bridge method

for

localizing

tissue

anti­

gens, J. Histochem. Cytochem., 17, 563—569.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

M cLean

I.

W.,

Nakane

P. K.

(1974). Periodate — lysine — paraformaldehyde

fixative,

A

new fixative for immunoelectron microscopy,

J.

Histochem.

Cytochem.,

22,

1077— 1083

(1974).

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

McM ichael

A. I., Fabre

J. W. (eds.)

(1982).

Monoclonal

antibodies

in

clini­

cal medicine, Academic Press, London.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

M ilstein

 

C.

 

(1980). Monoclonal

antibodies,

Sci.

Amer., 243,

56—64.

 

 

 

M ilstein

 

C.,

Galfre

G.,

Secher

D. S., Springer

I.

(1979). Monoclonal

anti­

bodies

and

cell surface antigens, Cell Biol. int.

Rep., 3,

1 — 16.

 

 

 

 

N akane

P.

K.

(1968).

Sim ultaneous

localization

of

multiple

 

tissue

antigens

using

the

peroxidase-labeled antibody method: a study

on

pituitary

gland of the rat, J. Histochem. Cytochem., 16, 557—560.

 

 

 

 

 

 

 

N akane

P. K.,

Pierce G. B. Jr. (1966). Enzyme-labeled antibodies: prepara­

tion

 

and

application

for

the

localization

of

antigens,

 

J.

Histochem.

Cytochem.,

14, 929—931.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Q'Beirne

A. J.,

Cooper H . R. (1979). Heterogeneous enzyme

immunoassay,

J. Histochem. Cytochem., 27, 1148— 1162.

 

(1981). Four unlabeled

an ­

Ordronneau

 

P.,

Lindstrom P. В. М., Petrusz P.

tibody

bridge

techniques:

a

comparison, J.

Histochem.

 

Cytochem.,

29,

1397— 1404.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

as

vapour

and

Pearse A. G. E,, Polak J. M. (1975). Bifunctional reagents

 

liquid phase fixatives for immunohistochemistry, Histochem. J., 7, 179—

186.

 

Brocas

H., Vassart

G.f Toubeau

G., Seo

H., Refetoff

S.,

Dumont

Pochet

R.,

J. E., Pasteels J. L.

(1981).

Radioautographic

localization

of

prolactin

m essenger

RNA on histological sections by in situ hybridization, Brain

Res., 211, 433—438.

 

 

 

 

 

 

 

of som atostatin

 

content

in

per­

Polak J. М., Bloom S. R. (1980). Decrease

 

sistent neonatal hyperinsulinaemic hypoglycaemia. In: Current views on

hypoglycaemia

 

and

glucagon

(ed.

D.

Andreani,

 

P. J.

Lefebvre,

and

V. M arks),

pp. 367—398, Academic Press, London.

 

 

 

 

 

practical

Polak J. М., Van Noorden S.

(eds.)

(1983).

Immunocytochemistry,

applications in pathology and biology, John

W right

and

Sons,

Bristol.

Ponder

B. A. J. (1983).

Lectin

histochemistry.

In:

Immunocytochemistry,

practical

applications

in

pathology

and

biology

(ed. J.

 

M.

Polak

and

S. Van

 

Noorden),

pp. 129— 142,

John W right and

Sons,

 

Bristol.

 

 

 

Ravazzola

М.,

Orci

L.

(1980). A pancreatic

polypeptide

(PP)-like

immuno-

reactant is present in the glicentin-containing cells of the cat intestine,

Histochemistry, 67, 221—224.

 

 

 

(4th

edn),

Blackwell

Scientific

R oitt

L

 

M.

(1980).

Essential

immunology

Publications, Oxford.

C.,

 

Hughes-Jones

N. S.

(1974).

An

antiglobulin

Romano

 

E.

 

L.,

Stolinski

 

reagent labelled with colloidal gold for use in electron microscopy, Im-

munochemistry,

11, 521—522.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Roth J. (1978). The

lectins — molecular

probes in cell biology

 

and membrane

research, Exp. Path. Suppl., 3.

 

U ltrastructural localization

of intra ­

Roth J., Bendayan М., Orci L. (1978).

cellular

 

by the

use

of

the

Protein

A — gold

complex,

 

J.

Histochem.

Cytochem .,'26,

1074— 1081.

 

H.

G.

(1979).

Stability

of

hormone

recep­

Salih

H.,

M urthy

G. S.,

Friesen

tors

with fixation:

im plications

for

immunocytochemical

localization

of

repressors, Endocrinology,

105, 21—26.

R.t Dean

В. М., B ottazzo

G. F.

Scherbaum

W. A.,

Mirakian R., Pujol-Borrell