Добавил:
Upload Опубликованный материал нарушает ваши авторские права? Сообщите нам.
Вуз: Предмет: Файл:
abf_bio_biologiya_uch_pos_sultangazina.doc
Скачиваний:
43
Добавлен:
18.02.2016
Размер:
1.26 Mб
Скачать

Тема 7 Проницаемость живой и мертвой цитоплазмы для веществ клеточного сока

Цель:

- ознакомить с проницаемостью живой и мертвой цитоплазмы для веществ клеточного сока

План:

1 Скорость окрашивания

Методические рекомендации по подготовке к занятию

Растительная клетка состоит из твердой клеточной; стен­ки и протопласта — цитоплазмы с расположенными в ней; ядром и другими органоидами. В цитоплазме находятся так­же вакуоли, заполненные клеточным соком, причем в.-зре­лых клетках содержится одна большая вакуоль, занимаю­щая всю центральную часть клетки. Клеточный сок пред­ставляет собой водный раствор минеральных и органических веществ; в вакуолях некоторых клеток содержатся во­дорастворимые пигменты, чаще всего антоцианы.

Клеточная стенка имеет ультрамикроскопические поры диаметром до 10 нм, через которые свободно диффундируют любые растворенные вещества, тогда как цитоплазматические мембраны (наружная — плазмалемма и вакуолярная —тонопласт) по своим свойствам приближаются к полупро­ницаемым перепонкам, легко пропуская воду и очень медленно — большинство растворенных веществ. Полупроницаемость мембран — важное свойство живых неповрежден­ных клеток, позволяющее сохранять постоянство внутрикле­точной среды.

Ход работы. Вырезать из очищенного корнеплода красной свеклы четыре одинаковых брусочка длиной около 2 см и шириной 0,5 см (корнеплод должен быть свежим, т. е. иметь хороший тургор, так как с подвядшим материалом опыт не дает четких результатов). Положить брусочки в фар­форовую чашку и многократно промыть водопроводной водой до тех пор, пока не прекратится выделение окрашенного сока из перерезанных клеток. Поместить брусочки в 4 пробирки. Налить в две пробирки воду (до 1/2 объема) и про­кипятить одну из них в течение 1—2 мин. В третью пробир­ку палить воду и 5 капель хлороформа, в четвертую — 30%-ную уксусную кислоту.

Наблюдать в течение 1—2 ч за изменением окраски жидкости в пробирках, время от времени взбалтывая их содержимое. Результаты записать в форме таблицы:

Вариант опыта

Скорость окрашивания жидкости

Вода комнатной температуры Кипячение

Вода + хлороформ

30%- ная уксусная кислота

Литература 6, с 14-15

Контрольные вопросы:

1 Пропускают ли мембраны живой неповрежденной клетки вещества клеточного сока?

2 Как влияют на проницаемость мембран кипячение и ядовитые вещества?

3 Кик объяснить разную скорость окрашивания жидкости в разных вариантах опыта?

Тема 8 Определение жизнеспособности семян методом окрашивания

(по Д. Н. Нелюбову)

Цель:

- ознакомить с определением жизнеспособности семян методом окрашивания

План:

1 Скорость окрашивания

2 Методы окрашивания

Методические рекомендации по подготовке к занятию

Метод окрашивания семян для определения их всхоже­сти основан на непроницаемости живой цитоплазмы для некоторых красок (индигокармин, кислый фуксин), тогда как Мертвая цитоплазма легко прокрашивается. Бывают случаи,. Когда зародыш мертвый и тем не менее при погружении семени и раствор краски оно не окрашивается из-за того, что Окружающие зародыш части семени непропускают краску. В связи с этим необходимо предварительно обнажить зародыш: у семян с эндоспермом извлечь зародыш или разрезать семя вдоль, а у семян без эндосперма удалить семен­ные покровы.

Подготовленные описанным способом семена выдерживают в растворе краски от 1 до 3 ч (в зависимости от вида растения) и оценивают жизнеспособность семян: семена с Полностью окрашенными зародышами или с окрашенными Корешками считают невсхожими, семена неокрашенные или частично окрашенными семядолями относят к числу жизнеспособных.

Данный метод используют для быстрой оценки всхожести семян гороха, фасоли, люпина, льна, конопли, тыквенных.

Ход работы. Отсчитать, не выбирая, две порции по 10 набухших семян гороха. Одну порцию поместить в стакан водой и прокипятить в течение 5 мин (контроль). Осторожно, не повреждая семядоли, очистить препаровальной иглой семена обеих порций от кожуры, поместить в фарфоровые чашки, залить раствором индигокармина и выдержать 1 ч, после чего слить краску обратно в бутылочку, а семена смыть водой от избытка красителя.

Отметить окраску семян, убитых кипячением. В опытной порции подсчитать количество окрашенных, частично окрашенных и неокрашенных семян. Для проверки всхожести высадить все 10 семян в стакан с влажными опилками (перед набивкой стакана отжать из опилок избыток воды) поставить в темный шкаф и ежедневно поливать. Через несколько дней подсчитать количество проросших семян.

Результаты записать в таблицу:

Объект

Количество взятых

сомни, шт.

Количество семян, шт.

окра­шенных пол­ностью

окра­шенных частично

неокра­шенных

проросших

непро-росших

Литература 6, с 20-21

Контрольные вопросы:

1 На чем основан метод окрашивания семян?

2 Как объяснить окраску семян убитым кипячением?

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]